1. Immunoistochimica proteica: per etichettare la/e proteina/e di interesse
- Decantare il PBS (soluzione salina fosfato-tampone) e aggiungere 200 µL di buffer bloccante (1% p/v BSA (albumina sierica bovina), 10% v/v FBS (siero fetale bovino) in PBS con 0,1% v/v Tween-20 (PBST) sul coverslip. Incubare per 1 h a temperatura ambiente (RT).
- Decantare il buffer bloccante e applicare 200 µL di anticorpo primario diluito in PBST + 1% p/v BSA. Incubare per 1 h a temperatura ambiente (RT).
- Lavare il vetrino due volte con PBST per 10 min a temperatura ambiente (RT) con agitazione.
- Applicare un anticorpo secondario a scelta per 1 h a temperatura ambiente (RT) in PBST + 1% p/v BSA.
- Lavare il vetrino con PBST per 10 min a temperatura ambiente (RT) con agitazione.
2. Colorazione nucleare: controcolorare i nuclei a seguito della immunocolorazione
- Rimuovere delicatamente il PBST e aggiungere DAPI (4',6-diamidino-2-fenilindolo) o un colorante nucleare a scelta per 1 min a temperatura ambiente (RT).
- Lavare il vetrino due volte con PBS per 10 min a temperatura ambiente con agitazione.