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Articolo metodologico

Saggio Dell'organoide Prostatico: una tecnica di coltura ex vivo basata su anello su gel matrice per studiare la capacità di differenziazione delle cellule epiteliali della prostata

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⸱

30 aprile 2023

In questo articolo

Abstract

Fonte: Crowell, P. D. et al. Valutazione della capacità di differenziazione delle cellule epiteliali della prostata di topo utilizzando la coltura di organoidi. J. Vis. Exp. (2019)

In questo video, dimostriamo la coltura di cellule epiteliali prostatiche isolate di topo utilizzando una tecnica di coltura basata su anello di gel a matrice. Questo approccio può fornire informazioni complementari sulla capacità di differenziazione delle cellule epiteliali della prostata per formare strutture ghiandolari 3D in risposta a manipolazioni genetiche o farmacologiche.

Protocollo

1. Placcatura di cellule epiteliali prostatiche selezionate in coltura primaria di organoidi di topo — Tempistica: 2-3 ore (esclusa la preparazione della piastra rivestita in poli-HEMA)

NOTA: Le piastre sono rivestite con Poly-HEMA per prevenire la formazione di colonie 2D sulla superficie del pozzetto sotto il gel della matrice. Preparare le piastre rivestite in Poly-HEMA 1 giorno prima di placcare le cellule epiteliali della prostata basali o luminali selezionate in coltura di organoidi di topo. Scongelare 1 mL di aliquote di gel di matrice a ridotto fattore di crescita, di seguito denominato gel di matrice, su ghiaccio 2 ore prima del passaggio 1.1. L'Y-27632 (inibitore ROCK) deve essere aggiunto ai terreni organoidi di topo immediatamente prima della fase 1.1. Eseguire i passaggi 1.1-1.8 sul ghiaccio.

  1. Pellettare le cellule in provette a fondo tondo da 5 mL mediante centrifugazione a 800 x g per 5 minuti a 4 °C e aspirare il surnatante.
  2. Lavare il pellet cellulare in 500 μl di terreno organoidrico di topo (Tabella 1).
  3. Pellettare le celle per centrifugazione a 800 x g per 5 min a 4 °C e aspirare il surnatante.
  4. Risospensione in terreni organoidi di topo a una densità cellulare di 1.000 cellule/μL.
  5. Per preparare le master mix, mescolare le cellule epiteliali sospese in terreni organoidi di topo con il gel della matrice per generare una miscela finale che contiene il 25% di cellule/terreni e il 75% di gel della matrice. Le celle basali sono tipicamente piastrate a una concentrazione di 100-2.000 cellule/80 μL, mentre le celle luminali sono tipicamente piastrate a una concentrazione di 2.000-10.000 cellule/80 μL. La densità delle celle placcate varia a seconda del giorno di raccolta del materiale previsto e dell'applicazione a valle desiderata.
    NOTA: Raffreddare le provette di dimensioni adeguate per il volume previsto della miscela master 5 minuti prima della preparazione della miscela master. Per garantire che il gel della matrice non si indurisca durante la manipolazione, è fondamentale raffreddare il puntale della pipetta pipettando il gel della matrice 3-4 volte prima di trasferirlo in una nuova provetta.
  6. Aggiungere 80 μl della miscela di gel/cellule della matrice per pozzetto di una piastra a 24 pozzetti. Si consiglia di pipettare una goccia sulla metà inferiore della parete del pozzetto, evitando il contatto diretto con il rivestimento Poly-HEMA. Dopo aver aggiunto il gel della matrice, agitare la piastra per consentire alla miscela di gel della matrice/cellula di formare un anello attorno al bordo del pozzetto.
  7. Posizionare la piastra a 24 pozzetti in un incubatore a 37 °C con il lato destro rivolto verso l'alto per 10 minuti per consentire al gel della matrice di indurirsi parzialmente.
    NOTA: Iniziare a riscaldare i terreni organoidi di topo a 37 °C subito dopo aver posizionato la piastra a 24 pozzetti nell'incubatore.
  8. Dopo l'incubazione per 10 minuti, capovolgere la piastra a 24 pozzetti e incubare per altri 50 minuti per consentire al gel della matrice di indurirsi completamente.
  9. Aggiungere 350 μl di terreno organoide di topo preriscaldato goccia a goccia al centro di ciascun pozzetto.
    NOTA: Per mantenere l'integrità del gel della matrice, è fondamentale evitare l'anello di gel della matrice durante l'aggiunta del terreno.
  10. Dopo aver aggiunto il terreno, rimettere la piastra a 24 pozzetti nell'incubatore a 37 °C al 5% di CO2
  11. .

2. Rifornimento di terreni organoidi di topo - TEMPISTICA: 10-15 minuti per piastra da 24 pozzetti

NOTA: I supporti esistenti dovrebbero essere sostituiti con nuovi supporti ogni 48 ore. Prima di ogni cambio di terreno, preriscaldare i terreni organoidi di topo. Non è necessario aggiungere l'inibitore ROCK al terreno utilizzato per il rifornimento.

  1. Inclinare la piastra a 24 pozzetti con un angolo di 45° e rimuovere delicatamente il terreno esistente dal centro di ciascun pozzetto utilizzando una pipetta P1000 evitando l'anello di gel della matrice.
  2. Aggiungere 350 μl di terreno organoidrico di topo preriscaldato come al punto 1.9. Si raccomanda di aggiungere un volume maggiore di terreno (fino a 1 mL) agli organoidi coltivati per più di 5 giorni per prevenire il rapido esaurimento dei nutrienti chiave e dei fattori di crescita.

Tabella 1: Istruzioni per la preparazione di terreni organoidi di topo

componente

concentrazione

B-271x (diluire da 50x concentrato)
GlutaMAX1x (diluire da 100x concentrato)
N-acetil-L-cisteina1,25 mM
Normocin50 μg/mL
EGF umano ricombinante, senza animali50 ng/mL
Noggin umana ricombinante100 ng/mL
Mezzi condizionati con R-spondina 110% di terreni condizionati
A83-01200 nM
DHT1 nM
Y-27632 dicloridrato (inibitore ROCK)10 μM
DMEM/F-12 avanzatoSupporti di base
R-spondina 1-terreno condizionato viene generato come descritto in Drost et al. Dopo l'aggiunta di tutti i componenti, filtrare sterilizzare i terreni organoidi di topo utilizzando un filtro da 0,22 μm. L'inibitore ROCK viene aggiunto solo durante l'instaurazione della coltura e il passaggio degli organoidi.

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Siero fetale bovino (FBS) sigma F8667
Integratore di B-27 (50x), senza siero Thermo Fisher Scientifico 17504044
DMEM/F-12 avanzato Thermo Fisher Scientifico 12634010
μ piatto 35 mm, alto IbidiCodice 81156
Matrice a membrana Matrigel GFR CorningCB-40230C
Penicillina-Streptomicina (10.000 U/mL) Thermo Fisher Scientifico 15-140-122
Poli(2-idrossietilmetacrilato) (Poli-HEMA) sigma P3932-25G
Y-27632 dicloridrato (inibitore ROCK) Selleck Chemical S1049-50MG
A83-01 Tocris Codice: 2939
(DiHydro)testosterone (5αAndrostan-17β-ol-3-one) sigma A-8380
GlutaMAXThermo Fisher Scientifico 35050061
Normocin Thermo Fisher Scientifico formica-nr-1
EGF umano ricombinante, senza animaliPeproTech AF-100-15
Noggin umana ricombinantePeproTech 120-10C
RPMI 1640 Medio, HEPES (cs di 10)Thermo Fisher Scientifico22400105
Fermare l'inibitore della fosfatasiThermo Fisher ScientificoCodice: 78428
Cocktail completo di inibitori della proteasisigma 11836145001
Triton X-100sigmaX100-5ML
Sonic DismembratorThermo Fisher ScientificoFB120

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