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Arricchimento di fosfopeptidi a base di biossido di titanio: un metodo per l'isolamento selettivo di fosfopeptidi dalla libreria di peptidi

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

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Fonte: Cheng, L. C. et al. Arricchimento di fosfopeptide accoppiato con spettrometria di massa quantitativa senza etichetta per studiare il fosfoproteoma nel cancro alla prostata. J. Vis. Exp. (2018)

Questo video dimostra l'arricchimento a base di biossido di titanio di fosfopeptidi estratti dal tessuto tumorale della prostata. Questi fosfopeptidi arricchiti possono essere utilizzati per applicazioni a valle, come la caratterizzazione delle proteine, per comprendere le vie di segnalazione cellulare coinvolte nella progressione del cancro alla prostata.

Protocol

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1. Arricchimento di peptidi pY con biossido di titanio

  1. Risospendere i fosfopeptidi essiccati in 200 μL di ACN al 50%, TFA allo 0,1%. Agitare e centrifugare a 10.000 x g per 30 s. Ripeti l'operazione 1 volta per risospenderli bene.
  2. Preparazione delle perle di TiO2 contenute in puntali con una capacità di 200 μL di campioni.
    1. Picchiettare delicatamente sul lato piccolo della punta per spostare il materiale verso quell'estremità. Sciacquare il puntale aggiungendo 200 μl di ACN al 100%, quindi capovolgere il puntale e muovere l'estremità più piccola per spostare il liquido verso il tappo.
    2. Usando una lama di rasoio, taglia l'estremità piccola della punta e posizionala su un tubo a basso legame proteico. (Evitare l'uso di tubi di polistirolo poiché il TiO2 si attaccherà ai lati del tubo.) Rimuovere il tappo e inserire una micropipetta per estrarre l'ACN rimanente. Ripetere il lavaggio con 200 μL di ACN al 100%. Le perle di TiO2 si trovano ora nel tubo a basso legame proteico per i passaggi successivi.
    3. Precondizionare TiO2 con 500 μL di 100% ACN 2x. Pipetlo per miscelare le perle con il solvente. Centrifugatele a 100 x g per 1 min.
    4. Condizione: TiO2 con 500 μL di tampone fosfato di sodio 0,2 M (pH ~7) 2x. Lavare le perle con 300 μL di tampone di equilibrazione 3x. Poiché il TiO2 è molto denso, le perle si depositeranno rapidamente.
  3. Aggiungere 400 μl di ACN al 50%, TFA allo 0,1% nella provetta a basso legame proteico, quindi aggiungere 84 μl di acido lattico. Trasferire i fosfopeptidi risospesi nella provetta a basso legame proteico e incubarli per 1 ora a temperatura ambiente utilizzando un rotatore end-over-end.
  4. Centrifugare le perle a 100 x g per 1 minuto per pellettizzarle. Lavarli con 300 μL di tampone di equilibrazione (Tabella 1) 2 volte e centrifugarli a 100 x g per 1 minuto.
  5. Sciacquare le perle con 300 μL di tampone di risciacquo 2 volte. Trasferirle in un filtro centrifugo da 0,2 μm. Centrifugarli a 1.500 x g per 1 minuto.
  6. Trasferire l'unità filtro in una provetta pulita da 1,5 ml a basso contenuto proteico. Eluire il contenuto 2 volte con 200 μL di 0,9% di NH₃ in H₂O. Misurare il pH con strisce di pH, che dovrebbe essere compreso tra 10 e 11. Concentrare sotto vuoto l'eluato per farlo asciugare durante la notte per far evaporare l'ammoniaca.

Tabella 1: Tamponi e soluzioni.Questa tabella mostra le composizioni dei tamponi e delle soluzioni utilizzate in questo protocollo.

buffervolumecomposizione
Tampone di lisi del cloruro di guanidinio 6 M50 ml6 M di guanidinio cloruro, 100 mM tris pH 8,5, 10 mM di tris (2-carbossietil) fosfina, 40 mM di cloroacetammide, 2 mM di ortovanadato di sodio, 2,5 mM di pirofosfato di sodio, 1 mM di β-glicerofosfato, 500 mg di n-ottil-glicoside, acqua ultrapura a volume
100 mM di pirofosfato di sodio50 ml2,23 g di pirofosfato di sodio decaidrato, acqua ultrapura in volume
1M β-glicerofosfato50 ml15,31 g β-glicerofosfato, acqua ultrapura a volume
5% di acido trifluoroacetico20 mlAggiungere 1 mL di acido trifluoroacetico al 100% in 19 mL di acqua ultrapura
Acido trifluoroacetico 0,1%250 mlAggiungere 5 mL di acido trifluoroacetico al 5% a 245 mL di acqua ultrapura
tampone di eluizione pY250 ml0,1% acido trifluoroacetico, 40% acetonitrile, acqua ultrapura a volume
tampone di eluizione pST250 ml0,1% acido trifluoroacetico, 50% acetonitrile, acqua ultrapura a volume
Buffer di binding IP200 ml50 mM tris pH 7,4, 50 mM di cloruro di sodio, acqua ultrapura a volume
25 mM di bicarbonato di ammonio, pH 7,510 mlSciogliere 19,7 mg in 10 mL di acqua sterile ultrapura, pH a 7,5 con acido cloridrico 1 N (~10-15 μL/10 ml di soluzione), preparare fresco
1M tampone fosfato, pH 71.000 ml423 mL di sodio diidrogeno fosfato 1 M, 577 mL di sodio 1 M idrogeno fosfato
Tampone di equilibratura14 ml6,3 mL di acetonitrile, 280 μL di acido trifluoroacetico al 5%, 1740 μL di acido lattico, 5,68 mL di acqua ultrapura
Tampone di risciacquo20 ml9 mL di acetonitrile, 400 μL di acido trifluoroacetico al 5%, 10,6 mL di acqua ultrapura
Soluzione per spettrometria di massa10 ml500 μL di acetonitrile, 200 μL di acido trifluoroacetico al 5%, 9,3 mL di acqua ultrapura
Buffer A250 ml5 mM di fosfato monopotassico (pH 2,65), 30% di acetonitrile, 5 mM di cloruro di potassio, acqua ultrapura a volume
Buffer B250 ml5 mM di fosfato monopotassico (pH 2,65), 30% di acetonitrile, 350 mM di cloruro di potassio, acqua ultrapura a volume
0,9% idrossido di ammonio10 ml300 μl di idrossido di ammonio al 29,42%, 9,7 ml di acqua ultrapura

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Disclosures

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Collettore vuotoRestekCodice 26080
LiofilizzanteLabconco7420020
Concentratore a vuoto da banco CentriVapLabconco7810010
Rotatore end-over-endThermoFisher Scientifico415110Q
lamettaFisher Scientifico620177
Unità filtranti centrifughe Amicon Ultra-15Millipore SigmaUFC901024
Provette coniche Nunc 15 mLThermoFisher Scientifico12-565-268
Filtro rotante Millipore da 0,2 μmMillipore SigmaUFC30GVNB
Provette Eppendorf a basso legame proteicoEppendorf22431081
anti-Fosfotirosina, Agarosio, Clone: 4G10Millipore SigmaCodice: 16101
Kit di analisi di peptidiTermo ScientificoCodice 23275
Acido trifluoracetico (TFA)Fisher ScientificoCodice: PI-28904
Acetonitrile (ACN)Fisher ScientificoA21-1
acido latticoSigma-Aldrich69785-250ML
Idrossido di ammonioFisher ScientificoA669S-500
Fosfato di potassio monobasicoFisher ScientificoBP362-500
cloruro di potassioFisher ScientificoBP366-500
Cloruro di calcio diidratoFisher ScientificoBP510-500
Tris BaseFisher ScientificoBP152-5
MonoTipPolyLC IncTT200TIO.96

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Titanium DioxidePhosphopeptide EnrichmentPeptide LibraryBinding BufferCentrifugationSpin FilterAmmonia ElutionPhosphopeptide IsolationProstate CancerMass Spectrometry

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