Articolo metodologico

Imaging di una singola molecola per visualizzare l'assemblaggio di condensati di proteine di fusione su tende di DNA

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Zuo, L. et al., Imaging a singola molecola di condensati EWS-FLI1 che si assemblano sul DNA. (2021)

Questo video descrive un metodo per visualizzare l'assemblaggio di condensati di proteine di fusione su molecole di DNA in loci specifici utilizzando l'imaging a singola molecola. Questi condensati si formano a causa delle interazioni LCD-LCD e LCD-DBD, che consentono il reclutamento della RNA polimerasi II e una migliore trascrizione genica.

Protocollo

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1. Imaging della formazione di condensa EWS-FLI1 su tende di DNA

  1. Aprire il software di imaging, trovare e contrassegnare le posizioni dei 3 × 3 modelli a zig-zag sotto il campo luminoso.
  2. Attivare il flusso a 0,2 ml/min per colorare il DNA con il colorante DNA a doppio filamento per 10 minuti.
  3. Diluire mCherry-EWS-FLI1 con il tampone di imaging alla concentrazione di 100 nM in 100 μL nella provetta.
  4. Caricare il campione di proteine attraverso la valvola con una siringa di vetro da 100 μL e modificare la velocità di flusso a 0,4 mL/min.
  5. Accendi il laser a 488 nm e pre-scansiona ogni regione per controllare lo stato di distribuzione del DNA; seleziona la regione in cui le molecole di DNA si distribuiscono uniformemente. Impostare la potenza del laser al 10% per il laser a 488 nm e al 20% per il laser a 561 nm. Utilizzare il misuratore di potenza per misurare la potenza reale del laser vicino al prisma: 4,5 mW per il laser a 488 nm e 16,0 mW per il laser a 561 nm.
  6. Acquisizione delle immagini
    1. Inizia ad acquisire immagini a intervalli di 2 s con laser a 488 nm e 561 nm contemporaneamente.
    2. Cambiare la valvola dalla modalità manuale a quella di iniezione per consentire al tampone di imaging di lavare il campione proteico nella cella di flusso dopo 60 s.
      nota: Questo processo richiederà ~30 s e il campo visivo sarà coperto da segnali mCherry non appena le proteine EWS-FLI1 raggiungeranno la cella di flusso.
    3. Per rimuovere l'EWS-FLI1 libero, continuare a lavare la cella di flusso con il tampone di imaging per 5 minuti con solo il laser a 561 nm acceso. Interrompere il flusso e incubare a 37 °C per 10 minuti.
    4. Attivare il flusso a 0,4 mL/min per consentire l'estensione del DNA e acquisire immagini a intervalli di 2 s tra diversi frame per ottenere dati ad alto rendimento della formazione di condensa EWS-FLI1.

2. Analisi dell'intensità per mCherry-EWS-FLI1

  1. Importa i dati come sequenze di immagini nel software ImageJ, seleziona i puncta in 25× siti GGAA in un quadrato di 8×8 pixel e salva l'immagine in formato .tif.
  2. Calcola l'intensità come somma dell'intensità nel quadrato di 8×8 pixel, incluso l'intero puncta, e rimuovi lo sfondo sottraendo l'intensità dello sfondo in un'area della stessa dimensione vicino al quadrato di 8x8 pixel.

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Laser a stato solido pompato a diodi da 488 nmcoerenteOBIS488LS
Laser a stato solido pompato a diodi da 561 nmcoerenteOBIS561LS
Microscopio invertito NikonNikonEclipse Ti
in PMMAin PMMAPrime95B

Ristampe e permessi

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Tag

Proteine di fusionemicroscopia a fluorescenzasistema microfluidicocella a flussolegame al DNAimaging laserassemblaggio di condensati

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