È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Isolamento e purificazione di cellule B da sangue periferico umano

1.4K visualizzazioni

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Tzeng, S. J. L'isolamento, la differenziazione e la quantificazione delle cellule B che secernono anticorpi umani dal sangue: ELISpot come lettura funzionale dell'immunità umorale. (2016)

In questo video, dimostriamo l'isolamento delle cellule B dal sangue periferico umano utilizzando anticorpi biotinilati specifici per le cellule non B e microsfere magnetiche coniugate con streptavidina.

Protocollo

Tutte le procedure che coinvolgono partecipanti umani sono state eseguite in conformità con le linee guida istituzionali, nazionali e internazionali per il benessere umano e sono state esaminate dal comitato di revisione istituzionale locale

1. Isolamento e purificazione delle cellule B del sangue periferico umano

  1. Aspirare ~ 10 ml di sangue dalla vena cubitale mediana (nella fossa cubitale anteriore al gomito) in una provetta da 15 ml contenente K2EDTA (da 1,5 a 2,0 mg/ml di sangue) e capovolgere immediatamente la provetta più volte per prevenire la formazione di coaguli.
  2. Aggiungere 35 mL di tampone per lisi dei globuli rossi (RBC) autoclavato (121 °C, 15 min) (150 mM NH4Cl, 10 mM KHCO3 e 1 mM EDTA; pH 7,4) alla provetta contenente il campione di sangue fresco (≥ 3:1 vol/vol) e incubare a temperatura ambiente (RT) per non più di 5 min.
    nota: La comparsa della trasmissione della luce attraverso il tubo indica il completamento della lisi dei globuli rossi.
  3. Centrifugare a 600 x g a RT per 5 min. Assicurarsi che il pellet sia di colore bianco.
  4. Risospendere il pellet con 10 mL di soluzione salina tamponata con fosfato autoclavato (PBS, 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 4,3 mM Na2HPO4 e 1,47 mM KH2PO4; pH 7,4) e centrifugare come al punto 1.3.
  5. Scartare il surnatante, risospendere il pellet con 10 mL di terreno RPMI 1640 (integratori: 10% di siero fetale di vitello, 100 U/mL di penicillina/streptomicina, 0,25 μg/mL di amfotericina B e 2 mM di L-glutammina), quindi piastrare le cellule in una piastra di coltura di 10 cm (10 mL di sangue per piastra). Mettere la capsula in un'incubatrice a 37 °C con il 5% di CO2 per 30 minuti.
  6. Agitare delicatamente il piatto di coltura alcune volte e posizionare il terreno di coltura (cellule in sospensione) in provette coniche di plastica da 15 ml. Scartare le cellule aderenti (per lo più macrofagi) sui piatti di coltura.
  7. Centrifugare a 600 x g a RT per 5 min. Scartare il surnatante.
  8. Risospendere il pellet con 1 mL di terreno RPMI 1640. Contare il numero di cellule con un emocitometro o un contatore automatico di cellule.
    nota: La vitalità dei leucociti isolati è normalmente superiore al 90% per esclusione del blu di tripano.
  9. Centrifugare come al punto 1.7 e risospendere le cellule in ~ 200 μL di tampone PBS freddo (0,5% albumina sierica bovina (BSA) e 2 mM EDTA) alla concentrazione di 5 - 10 x 106 cellule/mL.
  10. Aggiungere 5 μL di cocktail di anticorpi umani biotinilati specifici per le cellule del sangue (per la selezione negativa delle cellule B) per 10-6 cellule e incubare su ghiaccio per 30 min.
    nota: Il cocktail anti-Ab umano dovrebbe includere almeno Abs specifici per CD2 (o CD3), CD14 e CD16.
  11. Aggiungere un volume in eccesso di 10 volte di PBS sterile alle cellule, centrifugare a 600 x g per 5 minuti ed eliminare il surnatante.
  12. Aggiungere quantità uguali di microsfere coniugate con streptavidina (5 μl per 10-6 cellule) al pellet e mescolare accuratamente.
  13. Incubare con ghiaccio per 30 minuti in una provetta conica di plastica da 15 mL.
  14. Aggiungere 2 mL di tampone PBS nella provetta.
  15. Posizionare la provetta in un supporto magnetico e incubare a RT per 8 minuti. Le microsfere marroni si attaccheranno gradualmente alla parete del tubo accanto al magnete.
  16. Con la provetta rimasta nel supporto magnetico, trasferire con cura il surnatante in una nuova provetta sterile da 15 ml.
  17. Ripetere i passaggi da 1.14 a 1.16 e combinare i due surnatanti che contengono le cellule B intatte. Scartare le microsfere.
  18. Centrifugare a 600 x g a RT per 5 min. Scartare il surnatante.
  19. Risospendere il pellet nel mezzo RPMI 1640 per esperimenti a valle.
    nota: Tipicamente, è possibile isolare da 1 - 5 x 105 cellule B con una purezza superiore al 95% da 10 mL di sangue periferico.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
BD Vacutainer K2EBD Bioscienze367525Tubo da 10 ml
Ficoll-Paque PlusGE SanitàCodice 17-1440-02Senza endotossine
Soluzione di blu di tripano 0,5%Industrie Biologiche03-102-1Btingere
Set per l'arricchimento dei linfociti B umani IMagBD Bioscienze558007Reagente
Microsfere magnetiche di streptavidinaBD Bioscienze9000810Reagente
Tubi Falcon da 15 mlFalco BD352196Articoli in plastica
mAb biotinilato CD27Bioleggenda302804Clone O323
Biotinilato anti-umano CD27Bioleggenda302804Clone O323
Biotinilato anti-umano CD27eBioscienceCodice 13-0279-80Clone O323

Tag

Isolamento dei linfociti Bseparazione immunomagneticalisi dei globuli rossianticorpi biotinilatimicrosfere magnetiche di streptavidinaselezione negativaaderenza della coltura cellulareseparazione magneticacitometria a flusso