Tutte le procedure che coinvolgono partecipanti umani sono state eseguite in conformità con le linee guida istituzionali, nazionali e internazionali per il benessere umano e sono state esaminate dal comitato di revisione istituzionale locale
1. Isolamento e purificazione delle cellule B del sangue periferico umano
- Aspirare ~ 10 ml di sangue dalla vena cubitale mediana (nella fossa cubitale anteriore al gomito) in una provetta da 15 ml contenente K2EDTA (da 1,5 a 2,0 mg/ml di sangue) e capovolgere immediatamente la provetta più volte per prevenire la formazione di coaguli.
- Aggiungere 35 mL di tampone per lisi dei globuli rossi (RBC) autoclavato (121 °C, 15 min) (150 mM NH4Cl, 10 mM KHCO3 e 1 mM EDTA; pH 7,4) alla provetta contenente il campione di sangue fresco (≥ 3:1 vol/vol) e incubare a temperatura ambiente (RT) per non più di 5 min.
nota: La comparsa della trasmissione della luce attraverso il tubo indica il completamento della lisi dei globuli rossi.
- Centrifugare a 600 x g a RT per 5 min. Assicurarsi che il pellet sia di colore bianco.
- Risospendere il pellet con 10 mL di soluzione salina tamponata con fosfato autoclavato (PBS, 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 4,3 mM Na2HPO4 e 1,47 mM KH2PO4; pH 7,4) e centrifugare come al punto 1.3.
- Scartare il surnatante, risospendere il pellet con 10 mL di terreno RPMI 1640 (integratori: 10% di siero fetale di vitello, 100 U/mL di penicillina/streptomicina, 0,25 μg/mL di amfotericina B e 2 mM di L-glutammina), quindi piastrare le cellule in una piastra di coltura di 10 cm (10 mL di sangue per piastra). Mettere la capsula in un'incubatrice a 37 °C con il 5% di CO2 per 30 minuti.
- Agitare delicatamente il piatto di coltura alcune volte e posizionare il terreno di coltura (cellule in sospensione) in provette coniche di plastica da 15 ml. Scartare le cellule aderenti (per lo più macrofagi) sui piatti di coltura.
- Centrifugare a 600 x g a RT per 5 min. Scartare il surnatante.
- Risospendere il pellet con 1 mL di terreno RPMI 1640. Contare il numero di cellule con un emocitometro o un contatore automatico di cellule.
nota: La vitalità dei leucociti isolati è normalmente superiore al 90% per esclusione del blu di tripano.
- Centrifugare come al punto 1.7 e risospendere le cellule in ~ 200 μL di tampone PBS freddo (0,5% albumina sierica bovina (BSA) e 2 mM EDTA) alla concentrazione di 5 - 10 x 106 cellule/mL.
- Aggiungere 5 μL di cocktail di anticorpi umani biotinilati specifici per le cellule del sangue (per la selezione negativa delle cellule B) per 10-6 cellule e incubare su ghiaccio per 30 min.
nota: Il cocktail anti-Ab umano dovrebbe includere almeno Abs specifici per CD2 (o CD3), CD14 e CD16.
- Aggiungere un volume in eccesso di 10 volte di PBS sterile alle cellule, centrifugare a 600 x g per 5 minuti ed eliminare il surnatante.
- Aggiungere quantità uguali di microsfere coniugate con streptavidina (5 μl per 10-6 cellule) al pellet e mescolare accuratamente.
- Incubare con ghiaccio per 30 minuti in una provetta conica di plastica da 15 mL.
- Aggiungere 2 mL di tampone PBS nella provetta.
- Posizionare la provetta in un supporto magnetico e incubare a RT per 8 minuti. Le microsfere marroni si attaccheranno gradualmente alla parete del tubo accanto al magnete.
- Con la provetta rimasta nel supporto magnetico, trasferire con cura il surnatante in una nuova provetta sterile da 15 ml.
- Ripetere i passaggi da 1.14 a 1.16 e combinare i due surnatanti che contengono le cellule B intatte. Scartare le microsfere.
- Centrifugare a 600 x g a RT per 5 min. Scartare il surnatante.
- Risospendere il pellet nel mezzo RPMI 1640 per esperimenti a valle.
nota: Tipicamente, è possibile isolare da 1 - 5 x 105 cellule B con una purezza superiore al 95% da 10 mL di sangue periferico.