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Generazione di un modello murino di malaria cerebrale sperimentale utilizzando sporozoiti derivati da zanzare ospiti

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

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Fonte: Hoffmann, A. et al., Monitoraggio in vivo dello sviluppo dell'edema e della patologia microvascolare in un modello di malaria cerebrale sperimentale utilizzando la risonanza magnetica.J. Vis. Exp.(2017)

Questo video dimostra la generazione di un modello murino sperimentale di malaria cerebrale. Gli sporozoiti isolati da zanzare femmine infette da Plasmodium berghei vengono iniettati nelle vene della coda di un topo trattenuto, causando l'interruzione della barriera emato-encefalica e l'infiammazione cerebrale, causando la malaria cerebrale. Questo modello murino infetto offre uno strumento prezioso per studiare in vivo la patologia microvascolare associata alla malaria cerebrale.

Protocol

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Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Infezione

  1. Infettare le zanzare Anopheles stephensi con Plasmodium berghei ANKA nutrendole per 15 minuti su un topo gametocitemico. Mantenere le zanzare infette all'80% di umidità e a 21 °C.
  2. Raccogli le zanzare femmine dalla loro gabbia da 17 a 22 giorni dopo il pasto di sangue. Mettetele sul ghiaccio per anestetizzarle.
  3. Usando una pinza, posiziona tre o quattro zanzare su un vetrino coperto con una goccia di terreno RPMI freddo. Posizionare il vetrino sotto un microscopio.
  4. Usando il forcipe, allunga con cura la zanzara tra la testa e il corpo. Isolare la ghiandola salivare usando una siringa e un ago. Ripeti questa procedura con le zanzare rimanenti.
  5. Raccogliere le ghiandole salivari dal vetrino aspirandole con una pipetta di vetro e raccogliendole in una provetta da centrifuga da 1,5 mL.
    nota: A seconda dei tassi di infezione, di solito si possono ottenere da 8.000 a 15.000 sporozoiti infettivi per ghiandola salivare.
  6. Per circa 3 minuti, schiacciare le ghiandole salivari isolate all'interno della provetta da centrifuga con un piccolo bastoncino di plastica per isolare gli sporozoiti dal tessuto delle ghiandole salivari.
  7. Centrifugare per 3 minuti a 1.000 x g e 4 °C per purificare gli sporozoiti dal tessuto rimanente.
  8. Pipettare il surnatante, che contiene gli sporozoiti (SPZ), in una nuova provetta da centrifuga e contare gli sporozoiti purificati in un emocitometro Neubauer.
  9. Regolare la concentrazione di sporozoiti purificati a 10.000/mL aggiungendo soluzione salina tamponata con fosfato.
  10. Iniettare un totale di 1.000 sporozoiti (0,1 ml) nelle vene della coda di topi consanguinei C57BL/6 per avviare l'infezione. Per facilitare le iniezioni, mettere i topi C57BL/6 in un sistema di contenzione e mettere le code in acqua calda (circa 37 °C) per facilitare la visualizzazione delle vene della coda.
    nota: L'iniezione stessa è una procedura breve che può essere eseguita in pochi secondi.
  11. Una volta al giorno, controllare la parassitemia allo stadio ematico sugli strisci di sangue dal giorno 3 in poi dopo l'infezione da SPZ.
  12. Valutare i topi una volta al giorno con il punteggio RMCBS (Rapid Murine Coma and Behavior Scale), a partire dal giorno 5 dopo l'iniezione di sporozoiti.
  13. Valutare i topi con la risonanza magnetica (MRI) in base al punteggio RMCBS (Rapid Murine Coma and Behavior Scale) e alla domanda di ricerca da affrontare.

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Disclosures

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
IsofluranoBaxter1001747per anestesia
DotaremGuebert1086923Mezzo di contrasto Gd-DTPA; 0,5 mmol/ml
Amira (Programma di elaborazione delle immagini)Gruppo FEIVersione Amira 5.3.2
MATLABLa MathWorks, Inc.,Versione 2012b
Cassetta degli attrezzi FDTLibreria software di FMRIB

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Tags

Experimental Cerebral MalariaSporozoite IsolationMouse Model GenerationPlasmodium bergheiSalivary Gland DissectionTail Vein InjectionBlood Brain BarrierMicrovascular PathologySporozoite PurificationHemocytometer Counting

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