Articolo metodologico

Colorazione delle cellule batteriche e preparazione per studi immunologici

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Yang, J. et al., Rilevamento automatizzato e ad alto rendimento dell'aderenza batterica alle cellule ospiti.J. Vis. Exp. (2021)

Questo video mostra la colorazione e la preparazione di cellule batteriche per studi immunologici utilizzando un colorante fluorescente rosso. I batteri colorati vengono diluiti e risospesi in un mezzo di crescita per ottenere la concentrazione batterica desiderata per l'infezione della cellula ospite, che rappresenta la molteplicità dell'infezione.

Protocollo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Crescita batterica e colorazione

  1. Eseguire tutto il lavoro batterico in una cabina di biosicurezza, laboratorio di biosicurezza di livello 2.
  2. Inoculare tutte le colture batteriche, tra cui Pseudomonas aeruginosa (PAO1), Escherichia coli, Listeria monocytogenes, Bacillus subtilis, ecc., dal brodo di glicerolo congelato e coltivarle in brodo di soia triptico (TSB, 3 mL) in un incubatore agitato a 37 °C durante la notte mantenuto a 250 giri/min.
  3. Il giorno successivo, utilizzare una diluizione 1:100 della coltura notturna per inoculare una sottocoltura e farla crescere in TSB (1 mL) per 3 ore fino alla fase esponenziale, misurare la densità ottica, OD a 600 nm (OD600) per confermare. Assicurarsi che l'OD600 sia compreso tra 0,4 e 0,6.
  4. Prima di eseguire il saggio di aderenza batterio-ospite, le diluizioni seriali della sospensione batterica su piastre di TSB-agar, incubarle per una notte a 37 °C e quindi stabilire le unità formanti colonie batteriche, CFU dal numero di colonie. Per P. aeruginosa, una OD600 di 1,0 corrisponde a 2 x 108 cellule batteriche vitali/mL, e per L. monocytogenes, una OD600 di 1,0 corrisponde a 9 x 108 cellule batteriche vitali/mL.
  5. Raccogliere le colture batteriche in fase esponenziale mediante centrifugazione a 13.000 x g per 2 minuti a temperatura ambiente (RT), quindi lavarle una volta utilizzando 1 soluzione salina tamponata con fosfato (PBS 1 mL). Risospendere i pellet batterici in 1 mL di 1x PBS e determinare le concentrazioni misurando OD600 di sospensioni batteriche. Ad esempio, P. aeruginosa con OD600 di 0,5 rappresenta una concentrazione di 1 x 108 cellule batteriche/mL.
  6. Colorare la sospensione batterica utilizzando un colorante fluorescente verde o rosso a RT per 30 minuti con una leggera rotazione al buio. A tal fine, aggiungere 2 μl di colorante colorante concentrato 500 volte in 1 mL di sospensione batterica per diluire il colorante di 1 volta. Per lavare via il colorante colorante, centrifugare i batteri colorati a 13.000 x g per 2 minuti e risospendere il pellet in 1 mL di 1x PBS tre volte.
    nota: Se nell'esperimento vengono utilizzati batteri marcati con fluorescenza (proteina fluorescente verde (GFP-), proteina fluorescente rossa (RFP-), mCherry-, ecc.), saltare questa fase di colorazione batterica. In questo protocollo sono stati utilizzati P. aeruginosa marcato con GFP e L. monocytogenes colorato con colorante fluorescente rosso.
  7. Raccogliere le cellule batteriche colorate o i batteri marcati con GFP mediante centrifugazione a 13.000 x g per 2 minuti. Risospendere in terreno F-12K fresco (1 mL) e misurare il diametro esternodi 600 di ciascuna coltura. Diluire successivamente le colture alle concentrazioni desiderate in base alla molteplicità dell'infezione (MOI) e alla concentrazione della cellula ospite. Il volume finale utilizzato in questo esperimento è di 500 μL.
    nota: Ad esempio, se la concentrazione di cellule ospiti contata utilizzando la colorazione con Trypan Blue è 1 x 105 cellule/mL, la concentrazione desiderata di cellule batteriche con un MOI di 100 sarà 1 x 107 cellule/mL. La concentrazione di P. aeruginosa a 0,5 OD600 è 1 x 108/mL. Per ottenere la concentrazione desiderata, diluire la coltura di P. aeruginosa 10 volte e aggiungere 50 μl di coltura risospesa a 450 μl di terreno F-12K fresco.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
10x PBSVWR45001-130
BactoView Live RossoBiozioNumero 40101Colorante antibatterico
centrifugaEppendorf5810R
ColiStock da laboratorio
F-12k medioATCC 302004Terreno di coltura cellulare A549
Siero fetale bovinoCorning35-016-CV
L. monocytogenesCollezioni NIST
OD600 DiluPhotometroIMPLEN
P. aeruginosaScorte di laboratorio della dottoressa Lori Burrows
P. aeruginosa ΔpilAScorte di laboratorio della dottoressa Lori Burrows
S. agalactiaeCollezioni NIST
S. aureusBEINR-46543
S. aureus ΔsaeRBEINR-48164
S. rubidaeaCollezioni NIST
Brodo di soia tipicoCellule di crescitaMBPE-4040

Ristampe e permessi

Richiedi il permesso di riutilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi permesso

Tag

Colorazione battericacolorante fluorescentedensit otticacentrifugazioneconcentrazione battericamolteplicit di infezioneinfezione delle cellule ospititerreno di colturafotometrolavaggio con PBS

Articoli correlati