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Articolo metodologico

Una tecnica zWEDGI per visualizzare le larve di pesce zebra infettate da agenti patogeni fungini

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⸱

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Thrikawala, S. et al., Infezione di larve di pesce zebra con spore di Aspergillus per l'analisi delle interazioni ospite-patogeno.J. Vis. Exp.(2020)

Il video mostra una tecnica di ferimento e intrappolamento del pesce zebra per osservare l'infezione da patogeni fungini marcati in modo fluorescente nelle larve di pesce zebra. L'infezione iniziale attira i macrofagi e, man mano che l'infezione persiste, il reclutamento dei neutrofili progredisce nel sito di iniezione.

Protocollo

1. Preparazione delle spore di Aspergillus per l'iniezione

  1. Da una sospensione di spore di Aspergillus, calcolare il volume necessario per ottenere 1 x 106 spore. Il volume dovrebbe essere di 20-100 μl; in caso contrario, produrre una diluizione 10x in Tween-20 sterile allo 0,01% (v/v) (Tween-water; Tabella dei materiali). Ad esempio, se il volume calcolato è 5 μl, produrre una diluizione 10x e utilizzare 50 μl della soluzione diluita.
    nota: Due piastre/ceppi possono essere preparati per raccogliere più spore o come riserva in caso di contaminazione.
  2. Distribuire....

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Pinza di Dumont #5Roboz Surgical Instrument Co.RS-5045
Reticolo oculareMondo MicroscopioRETR10Per la calibrazione degli aghi, utilizzato nello stereomicroscopio
Configurazione del microiniettore: Unità di contropressioneStrumentazione Scientifica ApplicataBPU
Interruttore a pedaleStrumentazione Scientifica ApplicataFTSW
Kit porta micropipetteStrumentazione Scientifica ApplicataM-Pip
Iniettore di pressioneStrumentazione Scientifica ApplicataMPPI-3
Configurazione del micromanipolatore: MicromanipolatoreNarashige (Tritech)M-152
Supporto magnetico e piastraTritechMINJ-HBMB
Estrattore dell'agoStrumento SutterP-97
StereomicroscopioNikonSMZ-745
Tissuelyser IIQiagenCodice 85300Per omogeneizzare le larve
materiale
agarosiopescatoreBP160-500
Sale sodico di ampicillinapescatoreAAJ6380706
BSA, frazione VVWRAAJ65855-22
Kanamicina solfatopescatoreAAJ1792406
Spandiconcime a LpescatoreCodice: 14 665 230
Aghi microcapillari (senza filamento)Strumenti di precisione mondiali (WPI)TW100-3
Puntali per pipette MicroloaderVWR89009-310Per caricare l'ago con la sospensione di Aspergillus
Panno MiratoVWREM475855-1RPer filtrare la sospensione di Aspergillus
N-feniltioureapescatoreAAL0669009Per prevenire la pigmentazione
Rosso fenolo, soluzione all'1%pescatoreCodice: 57254
Tricaina (3-amminobenzoato di etile, sale dell'acido metansolfonico)pescatoreAC118000500Per anestetizzare le larve
Interpolazione-20pescatoreBP337-500
Media e SoluzioniComponenti/Ricetta
Supporti E3: 60x E317,2 g NaCl, 0,76 g KCl, 2,9 g CaCl2, 4,9 g MgSO4 · 7H2O, fino a 1 L con H2O
1x E316,7 ml 60x brodo, 430 ul 0,05 M NaOH, a 1 L con H2O (opzionale: + 3 ml 0,01% blu di metilene)
Soluzione madre di tricaina2 g di tricaina, 5 g di Na2HPO4 · 7H2O, 4,2 ml di 60X E3, fino a 500 ml con H2O, pH fino a 7,0-7,5 con NaOH
Terreno di coltura con glucosio minimo (GMM): agar GMM10 g di glucosio (destrosio), 50 ml 20x sali di nitrato, 1 ml di TE, fino a 1 L con H2O, pH fino a 6,5 con NaOH, + 16 g di Agar, autoclave
20x Sali di nitrato120 g NaNO3, 10,4 g KCl, 10,4 g, MgSO4 · 7H2O, 30,4 g, KH2PO4, fino a 1 L con H2O, autoclave
Oligoelementi (TE)2,20 g di ZnSO4 · 7H2O, 1,10 g di H3BO3, 0,50 g di MnCl2 · 4H2O, 0,16 g di FeSO4 · 7H2O, 0,16 g di CoCl2 · 6H2O, 0,16 g di CuSO4 · 5H2O, 0,11 g (NH4)6Mo7O24 · 4H2O, 5,00 g di Na2EDTA, fino a 100 ml con H2O, sciogliere agitando per una notte, in autoclave

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