1. Biotinilazione della superficie cellulare BCG
- Coltivare BCG in brodo Middlebrook 7H9 con il 10% di OADC (soluzione di acido oleico, albumina e destrosio) e lo 0,05% di Tween 80 a 37 °C su una piattaforma shaker a 50 giri/min fino a OD = 0,5-1,
NOTA: Il BCG è un agente patogeno di livello 2 di biosicurezza e tutti gli esperimenti relativi al BCG devono essere eseguiti in una cabina di biosicurezza con adeguati dispositivi di protezione individuale.
- Lavare 10,9 BCG 3 volte con 500 μL di PBS ghiacciato privo di endotossine più lo 0,1% di Tween80 (PBST) (pH 8,0). Sospendi il pellet BCG in PBS sterile privo di endotossine.
- Immediatamente prima dell'uso, preparare 1 mL di 10 mM di biotina Sulfo-NHS SS in acqua filtrata sterile.
- Incubare i batteri con 1 mL di 0,5 mM di biotina Sulfo-NHS SS a temperatura ambiente per 30 minuti.
- Lavare i batteri marcati 3 volte con 500 μL di PBST freddo ghiacciato per rimuovere il reagente di biotinilazione non reagito.
- Risospendere il pellet in 1 mL di PBST.
2. Legame della proteina monomerica di fusione dell'avidina alla superficie biotinilata del BCG
- Miscelare 5 x 108 BCG biotinilato con la proteina Avi (10 μg/mL finale in PBS-T) per 1 ora a temperatura ambiente sulla piattaforma dell'agitatore.
- Lavare i batteri 3 volte con 500 μL di PBST freddo ghiacciato.