Articolo metodologico

Differenziazione delle cellule staminali embrionali umane in progenitori neurali

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Jeon, K. et al., Differenziazione neurale efficiente utilizzando la coltura di cellule staminali embrionali umane a singola cellula. (2020)

Questo video dimostra la differenziazione delle cellule staminali embrionali umane, o hESC, direttamente in cellule progenitrici neurali senza l'utilizzo di cellule feeder o passaggi intermedi. L'inibizione selettiva della proteina morfogenetica ossea o BMP e le vie di segnalazione del fattore di crescita trasformante-beta, o TGF-β, portano alla differenziazione delle hESC in cellule progenitrici neurali, o NPC.

Protocollo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Preparazione di piastre rivestite di matrice di membrana basale qualificate per cellule staminali embrionali umane (hESC)

  1. Scongelare lentamente la soluzione di matrice di membrana basale qualificata hESC (vedere la Tabella dei materiali) a 4 °C per almeno 2-3 ore o durante la notte per evitare la formazione di gel.
  2. Per preparare le piastre rivestite di matrice a membrana basale, diluire la matrice nel Dulbecco's Modified Eagle Medium a freddo con F12 (DMEM+F12) a una concentrazione finale del 2%. Mescolare bene e rivestire ogni pozzetto di una piastra a 6 pozzetti con 1 mL della soluzione di matrice diluita.
  3. Incubare le piastre rivestite di matrice di membrana basale a temperatura ambiente (RT) per almeno 3 ore o a 4 °C durante la notte.
    nota: Le piastre con matrice a membrana basale possono essere conservate a 4 °C per 1 settimana prima che la soluzione della matrice venga rimossa e le piastre vengano utilizzate.

2. Adattamento delle hESC di tipo colonica alla coltura di hESC a singola cellula

  1. Per far passare le colture prive di feeder-free di hESC della colonia di tipo H9 (WA09) coltivate sulla matrice della membrana basale, aspirare il terreno dai pozzetti (Figura 1A).
  2. Lavare 1 volta con 1 mL di DPBS. Aggiungere 1 mL di soluzione di dispase (1 U/mL) per pozzetto e incubare a 37 °C per 20 min.
  3. Rimuovere la dispasi, lavare delicatamente le cellule 1 volta con 2 mL di DMEM/F12, rimuovere il terreno e aggiungere 2 mL di DMEM/F12 a ciascuna piastra.
  4. Staccare delicatamente le colonie pipettandole delicatamente su e giù e trasferirle in una provetta da 15 ml.
  5. Centrifugare i pellet per 2 minuti a 370 x g e aspirare il terreno.
  6. Per dissociare i pellet cellulari in singole cellule, aggiungere 2 mL di soluzione di distacco cellulare (concentrazione 1x, vedere la Tabella dei materiali) e incubare a 37 °C per 10 minuti.
  7. Centrifugare le celle per 2 minuti a 370 x g e rimuovere la soluzione di distacco.
  8. Aggiungere il terreno ESC umano mTeSR1 fresco e dissociare le cellule in singole cellule mediante pipettaggio delicato su e giù.
  9. Per adattare le hESC di tipo colonica a una coltura di tipo a singola cellula, piastra circa 1,5-2,0 x 106 hESC in ciascun pozzetto della piastra a 6 pozzetti rivestita con matrice di membrana basale in 2 mL di mTeSR1 contenente 10 μM di inibitore ROCK per 24 ore (Figura 1A).
  10. Dopo 24 ore, sostituire il terreno hESC con mTeSR1 fresco senza inibitore ROCK e lasciare che le hESC crescano come tipo a cellula singola per 3 giorni. Cambia il mezzo ogni giorno.
  11. Il giorno 4, quando le colture raggiungono quasi il 100% di confluenza, dissociare le cellule in soluzione di distacco, quindi riplaccare come descritto al punto 2.6.
    nota: L'inibitore ROCK migliora la sopravvivenza cellulare durante le prime 24 ore di coltura di hESC di tipo a cellula singola.

3. Differenziazione delle hESC di tipo a cellula singola in NPC (Figura 2)

  1. Per indurre il differenziamento delle NPC, dissociare le hESC di tipo a cellula singola con 1 mL di soluzione di distacco (1x) e incubare per 10 minuti a 37 °C.
  2. Centrifugare le cellule per 2 minuti a 370 x g e rimuovere la soluzione di distacco surnatante. Aggiungere 1 mL di DMEM/F12 e risospendere le cellule mediante pipettaggio delicato.
  3. Piastre su una piastra a 6 pozzetti rivestita con matrice di membrana basale a una densità di 2 x 105 cellule/pozzetto in 2 mL di mTeSR1 contenente 10 μM di inibitore ROCK.
  4. Dopo 24 ore, sostituire il terreno di coltura con un mezzo di induzione neurale (DMEM con 1% di B27 meno vitamina A) integrato con 1 μM di dorsomorfina e 5 μM di SB431542.
  5. Cambiare il mezzo a giorni alterni durante i primi 4 giorni di induzione neurale, poi ogni giorno fino a raggiungere la confluenza al giorno 7 (Figura 2B).
    NOTA: (1) La dorsomorfina inibisce la via BMP prendendo di mira i recettori ALK2,3,6 e inibisce anche l'AMPK; SB431542 è un inibitore della via TGFβ/Activina prendendo di mira ALK5,7. (2) Lo stesso protocollo è stato testato con un'altra linea ESC (WA01), che ha prodotto risultati simili a WA09. (3) Abbiamo generalmente utilizzato Matrigel per la matrice della membrana basale; tuttavia, le cellule possono essere coltivate su Geltrex e quindi differenziate in NPC con risultati molto simili, come indicato dall'espressione di diversi marcatori NPC (Figura 3D, E). Maneggiare Geltrex nello stesso modo di Matrigel (vedere paragrafo 1).

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Figura 1: Adattamento delle hESC di tipo colonico a colture di tipo a singola cellula.(A) Immagini rappresentative a contrasto di fase di singole colture cellulari di H9 hESC in momenti diversi dopo la piastratura su piastre rivestite con matrice di membrana basale al 2%. Ingrandimento basso (a sinistra) e alto (a destra). Pannello superiore: immagine rappresentativa delle hESC di ti...

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Piastre a 6 pozzettiCorning3516
AccutaseTecnologie cellulari innovativeAT104-500Soluzione per il distacco delle cellule
Activin ASistema di ricerca e sviluppo338-AC-050
Supplemento B27 (-Vit A)Thermo Fisher12587010
centrifugaDAMON/GHIACCIO428-6759
Incubatore a CO2Thermo Fisher4110
Matrice Corning hESC-qulified (Magrigel)Corning354277Matrice della membrana basale (utilizzata per la maggior parte del protocollo qui)
DispaseTecnologie delle cellule staminaliCodice: 7923
DMEMThermo FisherCodice 10569-010
DMEM/F12Thermo FisherCodice 10565-018
DorsomorfinaTocris3093
Siero fetale bovinoFisher ScientificoSH3007003HI
Matrice di GeltrexThermo FisherA1569601Matrice della membrana basale
GlutaMaxThermo Fisher35050061Integratore di glutammina, 100X
Linea di cellule staminali embrionali umane H9 (WA09)WiCellWA09
LamininaSigma AldrichL2020
mTeSR1Tecnologie delle cellule staminaliCodice 85850terreno di coltura hESC
NEAAThermo Fisher11140050
Inibitore di ROCKTocrisOre 1254
SB431542TocrisAnno 1614

Ristampe e permessi

Richiedi il permesso di riutilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi permesso

Tag

Cellule progenitrici neuraliinibizione delle BMPsegnalazione del TGF betaterreno di induzione neuraleinibitore di ROCKmatrice di membrana basalecoltura di singole celluletrattamento con dorsomorfinaapplicazione di SB431542

Articoli correlati