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Articolo metodologico

Coltura e mantenimento di neuroni dopaminergici da tessuto cerebrale embrionale di topo

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8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Weinert, M. et al., Isolamento, coltura e mantenimento a lungo termine di neuroni dopaminergici primari mesencefalici da cervelli di roditori embrionali. J. Vis. Exp. (2015)

Questo video delinea un metodo per coltivare neuroni dopaminergici da tessuto cerebrale embrionale di topo. Il processo include il trattamento del mesencefalo con un enzima proteolitico, il distacco delle cellule e la loro coltura su vetrini coprioggetti rivestiti di polimero in un mezzo ricco di sostanze nutritive con antibiotici per la loro crescita e vitalità a lungo termine.

Protocollo

Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Dissociazione delle cellule ventrali del mesencefalo

  1. Trasferire i pezzi del mesencefalo ventrale sotto una cappa a flusso laminare. Rimuovere la soluzione salina bilanciata di Hanks (HBSS) e aggiungere 1 ml di acido preriscaldato (37 ºC) allo 0,05% di tripsin-etilendiamminotetraacetico (tripsina-EDTA) nel tubo conico (volumi sufficienti per un massimo di 12 pezzi di mesencefalo ventrale). Incubare il tessuto a 37 ºC per 5-10 minuti.
  2. Rimuovere la tripsina-EDTA sotto il cappuccio e aggiungere 1 ml di terreno di disattivazione (il siero disattiva la tripsina) al tessuto.
  3. Rimuovere il mezzo di disattivazione e lavare il fazzoletto in 1 ml del mezzo completo due volte.
    nota: Per evitare di scartare le cellule dissociate, evitare di rimuovere tutto il terreno dal tubo e di pipettare il tessuto.
  4. Aggiungere 1 ml di terreno completo e triturare il fazzoletto con una pipetta di vetro lucidata a fuoco. Evitare la formazione di bolle e continuare la triturazione fino a ottenere una sospensione a cella singola.
    NOTA: Di solito, sono necessari 8-10 passaggi attraverso la punta ristretta per la dissociazione completa.
  5. Centrifugare le celle a 400 x g per 5 minuti a temperatura ambiente (RT) e rimuovere il terreno.
  6. Risospendere il pellet in 1 ml di terreno completo pipettandolo lentamente verso l'alto e verso il basso fino a quattro volte.

2. Placcatura delle cellule del mesencefalo ventrale

  1. Mescolare 10 μl della sospensione cellulare con 90 μl di soluzione di blu di tripano e contare il numero di cellule con un emocitometro.
    nota: In questa fase è possibile verificare anche la vitalità delle cellule.
  2. Posizionare i tappi delle provette sterilizzate per microcentrifuga in piastre di Petri da 100 mm e trasferire i vetrini coprioggetti rivestiti di poli-L-ornitina/laminina, utilizzando una pinza, uno alla volta sopra i tappi.
    nota: Non lavare i vetrini coprioggetti ed evitare di asciugare la laminina, poiché ciò potrebbe causare colture irregolari e ridurre la sopravvivenza delle cellule.
  3. Regolare il volume a 1.500 cellule per 1 μl aggiungendo un terreno completo e 100 μl (totale di 150.000 cellule) di sospensione cellulare sopra ogni vetrino coprioggetti (il volume è ottimale per coprire la superficie del vetrino coprioggetti senza fuoriuscite). Chiudere le piastre di Petri e incubarle per 1 ora in un incubatore di coltura tissutale umidificato (37 °C, 5% CO2).
    nota: FASE CRITICA: Questa fase è necessaria per migliorare l'attaccamento e la vitalità delle cellule e per aumentare il numero di vetrini coprioggetti per embrione. In alternativa, le cellule possono essere trasferite direttamente nei pozzetti (contenenti vetrini), ma il numero di cellule dovrebbe essere aumentato a 350.000 per pozzetto (invece di 150.000). In altre parole, utilizzando questo metodo, è possibile acquisire 8-10 vetrini coprioggetti, mentre il trasferimento diretto produce circa 3-4 vetrini coprioggetti a causa delle cellule che si attaccano alle piastre (accanto o sotto i vetrini). La vitalità media delle colture che utilizzavano questo metodo era di circa il 90%.

3. Crescita e mantenimento della cultura

  1. Dopo 1 ora di incubazione, trasferire con cura i vetrini, compreso il terreno, in piastre a 24 pozzetti contenenti 400 μl di terreno completo preriscaldato (a 37 ºC) (volume totale: 500 μl). Incubare le cellule per una notte (O/N) a 37 ºC.
  2. Entro 24 ore dall'incubazione dei pozzetti, aggiungere delicatamente 500 μl di terreno completo in ciascun pozzetto.
    NOTA: Le prime ore sono la fase più critica per la sopravvivenza dei neuroni dopaminergici e il numero di cellule sopravvissute non cambia significativamente oltre questo punto.
  3. Non aggiungere altri terreni alle colture per le prime due settimane o fino a quando il terreno non diventa giallo. Se la coltura dura più di due settimane o il colore del terreno diventa giallo, sostituire metà del terreno (500 μl) con un terreno fresco e preriscaldato completo (in genere ogni due settimane).
    nota: I neuroni dopaminergici all'interno delle colture sopravviverebbero per più di sei settimane in queste condizioni.

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Miscela di nutrienti medi F-12 Eagle modificata di DulbeccoInvitrogenCodice: 11330
Soluzione salina bilanciata di Hanks (HBSS) (1X), liquidaInvitrogenCodice 24020-117
Siero fetale bovino, termoinattivato (FBS)InvitrogenCodice: 16140
Integratore di N2 (100X), liquidoInvitrogenCodice 17502-048
Soluzione di D-(+)-glucosio (45% (wt/vol) in acquasigmaG8769
Albumina sierica bovina BSA sigmaCodice: A9430
Laminina da Engelbreth-HolmMembrana basale del sarcoma murino dello sciame sigmaL2020
Penicillina/streptomicinaInvitrogenCodice: 15070
Tripsina (0,05% (peso/vol)InvitrogenCodice 25300
Coltura cellulare di albumina sierica bovina (BSA) testatasigmaCodice: A9418
Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)sigmaP3813
Poli-L-ornitina, soluzione allo 0,01%sigmaP4957
Soluzione di blu di tripano (0,4% (peso/vol))Biowhittaker17-942E

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