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Articolo metodologico

Analisi della riattivazione delle cellule staminali neurali negli espianti cerebrali di Drosophila in coltura

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8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Naomi Keliinui, C., et al. Riattivazione delle cellule staminali neurali negli espianti cerebrali di Drosophila in coltura. J. Vis. Exp. (2022).

Questo video dimostra un protocollo per identificare i fattori esogeni che avviano la riattivazione delle cellule staminali neurali cerebrali di Drosophila dal loro stato quiescente. Le larve appena nate vengono sezionate per isolare il loro cervello, che viene poi coltivato in terreni con o senza un ormone di prova per valutare il potenziale dell'ormone di indurre la riattivazione e la proliferazione delle cellule staminali neurali.

Protocollo

1. Terreni di coltura e preparazione degli strumenti

  1. Spruzzare il banco e l'area di lavoro con etanolo al 70% e lasciare asciugare.
  2. Spruzzare gli strumenti di dissezione, le pinze e due piatti di vetro dell'orologio, con il 70% di etanolo e lasciarli asciugare sul banco.
  3. Preparare il terreno di Schneider integrato (SSM, Tabella 1) e metterlo sul ghiaccio.
  4. Pipettare 1 mL di SSM in ciascuno dei piatti di vetro.
  5. Utilizzando una micropipetta con punta sterile, trasferire le larve appena schiuse dalla piastra di PBS all'SSM nel primo piatto di vetro dell'orologio. Utilizzando una micropipetta con punta sterile, trasferire le larve appena schiuse nell'SSM nel secondo piatto di vetro.

2. Dissezioni e colture cerebrali

  1. Una volta che le larve sono nel secondo piatto di vetro con SSM, sezionare il cervello dalle larve usando una pinza e un microscopio da dissezione. Regolare l'ingrandimento secondo necessità.
  2. Usa una pinza per afferrare i ganci della bocca e con l'altra, afferra delicatamente il corpo a metà e tira nella direzione opposta (Figura 1) per dividere la larva in due pezzi.
    nota: Il cervello si troverà proprio dietro i ganci della bocca. Si noti che potrebbero esserci altri tessuti che circondano il cervello. Fai molta attenzione quando rimuovi questi tessuti in quanto può danneggiare il cervello.
  3. Una volta sezionati 15-20 cervelli, aggiungere 1 mL di SSM in un pozzetto di un vassoio di coltura sterile da 12 pozzetti. Trasferire i cervelli appena sezionati nell'SSM utilizzando una micropipetta e una punta sterile (Figura 2A).
  4. Collocare i cervelli nel terreno SSM nel vassoio di coltura a 12 pozzetti in un incubatore a 25 °C per 24 ore (Figura 2A).

Tabella 1: Ricetta per realizzare i media di Schneider integrati (SSM). La tabella elenca il volume di tutti gli ingredienti necessari per preparare 5 ml di SSM.

Ingrediente (concentrazione iniziale)Per fare 5 mlConcentrazione finale
Media sulla Drosophila di Schneider3,89 ml
Siero fetale bovino (100%)500 μl<10%
Glutammina (200 mM)500 μl20 mM
Penicillina (5000 unità/mL), Streptomicina (50.000 μg/mL)100 μl1000 U/mL Pen, 1 mg/mL Streptococco
Insulina (10 mg/mL)10 μl0,02 mg/mL
glutatione (50 mg/mL)5 μl0,05 mg/mL
In una cappa sterile, utilizzando la tecnica sterile, aggiungi tutti gli ingredienti insieme in una provetta conica da 14 ml. Mettilo sul ghiaccio fino al momento dell'uso.

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Risultati

figure-results-1
Figura 1: Larve di Drosophila in un piatto di vetro con SSM. Le pinze sono posizionate correttamente per la dissezione. La posizione del cervello larvale (grigio scuro) è posteriore agli uncini della bocca (nero), ed entrambi sono mostrati all'interno della larva.

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Puntali per pipette da 10 μlDenville SciP2102
Puntali per pipette da 1000 μlDenville SciP2103-N
Pipettatore da 1000 μlGilsonP1000
Piastre di coltura multipozzetto a 24 pozzettiFisher Scientifico50-197-4477
Piastre di Petri da 35 mmFisher Scientifico08-757-100AIngredienti del piatto d'uva
Microscopio da dissezioneZeissStemi 2000
Etanolo 200 proof (100%), Decon Labs, bottiglia da 1 galloneFisher ScientificoCodice: 2701Utilizzato per lavare via le larve prima della tenuta di 24 ore nel terreno di coltura
Siero fetale bovino (10%)sigmaF4135-100MLIntegratore per terreni di coltura cellulare.
Pinze fini per la dissezioneStrumenti per la scienzaCodice 11295-20Forcepts utilizzati nelle dissezioni. Funzionano meglio se affilati.
Piatto di dissezione in vetro (3 pozzetti)Questi non sono più disponibili
glutationesigmaG6013Fornisce protezione ossidativa durante la coltura cellulare.
incubatriceThermo Fisher ScientificoAssicura che la temperatura, l'umidità e l'esposizione alla luce siano esattamente le stesse durante l'esperimento.
insulinasigmaI0516Variabile indipendente dell'esperimento
Cappa a flusso laminarePer l'aliquotazione di terreni di coltura
L-GlutamminasigmaG7513Fornisce supporto durante la coltura cellulare
Penna-StreptococcosigmaP4458-100 mlAntibiologici utilizzati per prevenire la contaminazione batterica delle cellule durante la coltura.
tampone fosfato, pH7.4Fatto in casaFatto in casaSolvente utilizzato per lavare il cervello dopo le fasi di fissaggio e colorazione
scegliereStrumenti per la scienzaCodice 10140-01Usato per raccogliere le larve dal piatto d'uva
Terreno di coltura SchneidersTecnologia della vita21720024Contiene sostanze nutritive che aiutano le cellule a crescere e proliferare
Acqua sterileAutoclave Milli-Q acqua fatta in casaNecessario per le soluzioni

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Dissezione del cervellotrattamento ormonaleanalisi della proliferazione cellulareuscita dallo stato di quiescenzaincubazione in terreni di colturavie di segnalazione a vallelegame recettoriale delle NSCcoltura sterile in piastra a 24 pozzetti