1. Coltura primaria di HCF (fibroblasti corneali umani) e assemblaggio di costrutti 3D
- Assemblare costrutti 3D da espianti precedentemente coltivati in EMEM 10% FBS 1% Antibiotico/Antimicotico, passaggio e conteggio HCFs.
- Seminare circa 1 x 106 cellule/pozzetto di HCF primari su inserti di membrana in policarbonato con pori da 0,4 μm dai costrutti 3D, insieme a 1,5 mL di EMEM 10% FBS 1% antibiotico/antimicotico fresco nella parte superiore del costrutto. Aggiungere altri 1,5 ml dello stesso terreno alla base di ciascun costrutto.
- Dopo 24 ore di semina cellulare, coltivare le cellule con EMEM 10% FBS 1% antibiotico/antimicotico, stimolato con 0,5 mM di acido 2-O-α-D-glucopiranosil-L-ascorbico (vitamina C) aggiungendo 1,5 mL sulla parte superiore e 1,5 mL sul fondo di ciascun costrutto.
- Mantenere le colture in un incubatore a 37 °C, 5 % di CO2 per 3 settimane e fornire terreni freschi a giorni alterni durante l'intero periodo di studio. Non è necessario alcun ulteriore passaggio.
2. Differenziazione cellulare e co-colture
- Dopo 3 settimane, aggiungere 8 x 103 cellule/pozzetto di cellule di neuroblastoma umano SH-SY5Y sopra i costrutti 3D precedentemente assemblati contenenti 1,5 mL di EMEM contenente il 10% di FBS, l'1% di antibiotico/antimicotico e 0,5 mM di acido 2-O-α-D-glucopiranosil-L-ascorbico (vitamina C).
- Lasciare che le cellule del neuroblastoma SH-SY5Y crescano sopra le cellule stromali della cornea per almeno 24 ore prima di iniziare la differenziazione cellulare.
- Avviare la differenziazione cellulare SH-SY5Y stimolando le cellule con EMEM contenenti l'1% di FBS e 1,5 mL di acido retinoico 10 μM sopra il costrutto. Aggiungere 1,5 mL di EMEM 10% FBS 1% Antibiotico/Antimicotico 0,5 mM 2-O-α-D-glucopiranosil-L-acido ascorbico (Vitamina C) sul fondo del costrutto. Si noti che la fase dell'acido retinoico deve essere eseguita al buio.
- Continuare a coltivare le cellule in questo mezzo di differenziazione per 5 giorni.
- Quando le cellule raggiungono la fase di differenziazione, passare a 1,5 ml di terreno privo di siero contenente 2 nM di fattore neurotrofico derivato dal cervello (BDNF) e l'1% di antibiotico/antimicotico aggiunto all'EMEM, aggiungendo alla parte superiore del costrutto. Aggiungere 1,5 mL di EMEM 10% FBS 1% Antibiotico/Antimicotico 0,5 mM 2-O-α-D-glucopiranosil-L-acido ascorbico (Vitamina C) sul fondo del costrutto. Si noti che il passaggio BDNF deve essere eseguito al buio.
- Coltivare le cellule per altri 2 giorni prima di elaborarle per ulteriori analisi.