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Articolo metodologico

Registrazione delle correnti sinaptiche alla giunzione neuromuscolare larvale di Drosophila

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8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Vasin, A., et al. Registrazioni focali di macropatch di correnti sinaptiche dalla giunzione neuromuscolare larvale di Drosophila. J. Vis. Exp. (2017)

Questo video dimostra la tecnica per registrare le correnti sinaptiche da un bottone sinaptico alla giunzione neuromuscolare della larva di Drosophila. Questa tecnica consente di monitorare l'attività di un singolo bottone sinaptico, che è importante per lo studio di linee di mosca mutanti con maggiore attività sinaptica spontanea o asincrona.

Protocollo

1. Fabbricazione di elettrodi di registrazione

  1. Estrazione degli elettrodi di vetro
    1. Utilizzare il seguente protocollo per l'estrattore di microelettrodi (vedi Tabella dei materiali):
      1. Linea 1: Heat 510 Pull - Velocità 30 Tempo 250; Linea 2: Heat 490 Pull - Velocità 30 Tempo 250.
        nota: Le unità di tempo corrispondono a 0,5 ms per unità; le altre unità sono relative. Il valore del calore deve essere regolato per ogni filamento dopo aver eseguito il test di rampa.
    2. Utilizzare un microscopio (ingrandimento 35x) per assicurarsi che il diametro interno dell'elettrodo estratto sia compreso tra 7 e 10 μm (Figura 1A). Conservare i capillari in contenitori ben chiusi per evitare l'accumulo di polvere.
  2. Lucidatura a fuoco
    1. Lucidare a fuoco i capillari (80 - 90% del valore calorifico massimo per 1 - 2 s) utilizzando una microforgia (vedi Tabella dei materiali). Assicurarsi che il diametro interno finale dell'elettrodo lucidato sia di 5 μm (Figura 1A).
  3. Curvatura
    NOTA:
    Vengono praticate due curve per posizionare l'elettrodo sulla parte superiore del muscolo sotto un obiettivo ad alto ingrandimento.
    1. Utilizzare l'apparecchio mostrato nella Figura 1B. Fissare l'elettrodo nel manipolatore e posizionare la punta sopra il filamento, senza toccarlo.
    2. Impostare il valore di calore al 60 - 70% del massimo e premere il pedale della microforgia per 1 - 2 s (vedi Tabella dei materiali) per riscaldare il filamento. Utilizzare un ago a forma di L per tirare delicatamente verso il basso la punta dell'elettrodo (Figura 1B ingrandita). Eseguire la curva a circa 90° (Figura 1C).
    3. Tenere l'elettrodo sulla fiamma della torcia con la mano con una pinza ed eseguire la seconda curva a una distanza di 7 - 10 mm dalla prima curva e con un angolo di circa 120o (Figura 1C).

2. Passaggi preparatori aggiuntivi

  1. Preparare una soluzione emolinfatica (HL3) (in mM): 70 cloruro di sodio (NaCl), 5 cloruro di potassio (KCl), 20 cloruro di magnesio (MgCl2), 10 carbonato acido di sodio (NaHCO3), 5 trealosio, 115 saccarosio, 5 acido N-2-idrossietilpiperazina-N'-2-etansolfonico (HEPES) e 1 mM di cloruro di calcio (CaCl2); regolare il pH a 7,3 - 7,4. Conservate la soluzione in frigorifero e fatela fresca ogni settimana.
  2. Realizzare le pipette di stimolazione allo stesso modo delle pipette di vetro per la registrazione, tranne per il fatto che non è necessario piegarle.
    nota: La preparazione degli elettrodi di stimolazione è descritta in dettaglio in 28 e 27. Il diametro finale dopo la lucidatura a fuoco deve essere compreso tra 5 e 7 μm.
  3. Inserire una pipetta di stimolazione in un portamicroelettrodi collegato a una siringa.

3. Registrazioni elettriche di correnti giunzionali eccitatorie (EJC)

  1. registrazione
    1. Posizionare la capsula di Petri con la preparazione sul tavolino del microscopio (Figura 2). Inserire l'elettrodo di riferimento nella vasca.
    2. Riempire l'elettrodo di registrazione con la soluzione HL3. Con l'obiettivo 10x (vedi Tabella dei materiali), immergere l'elettrodo nella vasca e posizionarlo sui muscoli 6 e 7 dei segmenti addominali 2, 3 o 4 utilizzando il micromanipolatore (vedi Tabella dei materiali) (Figura 3 A.1 e A.2).
    3. Cambia l'obiettivo a 60x (vedi Tabella dei materiali). Focalizza l'area di interesse utilizzando l'ottica a epifluorescenza o DIC. Posizionare la punta dell'elettrodo sopra il bottone sinaptico (Figura 3 B.1-3).
    4. Premere l'elettrodo molto delicatamente sul muscolo. Una pressione eccessiva può danneggiare la giunzione neuromuscolare (NMJ) o indurre un aumento dell'attività sinaptica spontanea. Assicurarsi che la punta dell'elettrodo non sia ostruita: in tal caso, sostituirla.
    5. Accendere l'amplificatore, la scheda A/D e il computer.
    6. Scegli la modalità di clamp di tensione sull'amplificatore.
    7. Avvia il software di acquisizione e scegli la modalità "senza interruzioni".
    8. Osservare la comparsa di correnti giunzionali eccitatorie in miniatura (mEJC) sullo schermo del computer.
    9. Assicurarsi che l'ampiezza delle mEJC sia compresa tra 0,2 e 0,7 nA.
      nota: EJC più piccole indicano che l'elettrodo di registrazione presenta difetti o che non è posizionato correttamente.
  2. stimolazione
    1. Utilizzando un micromanipolatore, sotto controllo visivo, posizionare l'elettrodo di stimolazione vicino all'assone innervando i segmenti addominali 2 - 4.
    2. Applicare una pressione negativa tirando il pistone della siringa collegata al portaelettrodo in modo che l'assone venga tirato all'interno dell'elettrodo (Figura 2).
    3. Accendi lo stimolatore. Ruotare la manopola sull'unità di isolamento (vedere Tabella dei materiali) per impostare una corrente zero, quindi aumentarla delicatamente fino a quando non compaiono le EJC (o fino al raggiungimento della soglia).
    4. Eseguire la stimolazione in un regime soprasoglia, con la corrente di stimolazione aumentata di circa il doppio, rispetto alla soglia per l'osservazione delle EJC.
      nota: Nella nostra esperienza, tale intensità di stimolazione è ottimale per evitare fallimenti del potenziale d'azione e l'attivazione del potenziale d'azione. Ad esempio, se le EJC compaiono con una corrente di stimolazione di 0,2 mA, utilizzare una corrente di 0,4 mA durante l'esperimento.

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Risultati

figure-results-1
Figura 1. Fasi finali della fabbricazione delle micropipette. (A) Punte degli elettrodi dopo la trazione e la lucidatura a fuoco. (B.1) La configurazione per la piegatura della punta. (B.2) L'area del riquadro viene mostrata ingrandita a destra. L'elettrodo e il filamento sono fissati in modo che la punta dell'elettrodo sia posizionata leggermente so...

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Microtorcia 1WG61Granulatore1WG61Microtorcia
Olympus BX61WIOlimpoBX61WIMicroscopio dritto
Olympus Lumplan FL N 60xOlimpoUPLFLN 60XObiettivo per microscopio 60X
Olympus UPlan FL N 10xOlimpoUplanfl N 10XObiettivo per microscopio 10X
Micromanipolatore NarishigeNarishigeMHW-3Micromanipolatore idraulico ad acqua a tre assi
npi Electronic GmbH ELC-03XSnpi Electronic GmbHELC-03XSAmplificatore elettrofisiologico
A.M.P.I Master 8A.M.P.I.Maestro 8Elettrostimolatore
A.M.P.I Iso-FlexA.M.P.I.Iso-FlexIsolatore di stimolo
Tavolo antivibrante TMCCatalogo TMC63-9090Tavolo antivibrante
Gabbia di Faraday TMCCatalogo TMC81-333-90gabbia di Faraday
Digidata 1322AStrumenti AxonDigidata 1322ADigidata
computervallettaDell Dimension 5150Computer con sistema operativo Win XP
Porta elettrodoWPIMEH3SWPorta elettrodo
Filtro otticoOttico OmegaXF 115-2Cubo filtrante per la rilevazione di proteine fluorescenti verdi (GFP)
pCLAMP 8Strumenti Axon8.0.0.81Software per la registrazione del segnale
QuantanSoftware interno-Software per l'elaborazione del segnale
Canton-S (tipo selvaggio)Centro azionario di BloomingtonCodice 64349Controllare la linea di mosca
cpx SH1Generoso dono di J.T. Littleton-Complexin knock-out fly line con aumento dell'esocitosi spontanea
CD8-GFPCentro azionario di BloomingtonCodice: 5137Lenza volante con etichetta fluorescente neuronale (GFP)

Tag

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