Tutte le procedure che coinvolgono campioni di animali sono state esaminate e approvate dal comitato di revisione etica degli animali appropriato.
1. Imaging del calcio
- Sciacquare rapidamente le colture (5 - 7 giorni in vitro) con HBS normale, quindi caricare le colture con 5 μM di Fluo-4 Ca2+ indicatore (estere AM) e 0,02% di Pluronic F-127 in HBS (2 ml) per 30 minuti a 37 °C e 5% di CO2.
- Lavare la soluzione di Fluo-4 con HBS (3 volte/5 min). Rimettere le colture nell'incubatore (37 °C / 5% CO2) per almeno 30 minuti.
- Conservare le colture (5 - 7 giorni in vitro) in una camera di imaging e montare la camera su un microscopio confocale a disco rotante. Perfondere in continuo (1 ml/min) con il cocktail HBS a RT.
- Raccogli immagini in fluorescenza Fluo-4 di proiezioni assonali dalle micro-fette vHipp con un obiettivo Plan-Apochromat (acqua 60X con 1.4 NA, eccitazione 488 nm, emissione 530 nm) e una telecamera CCD.
- Raccogli le immagini di fluorescenza Fluo-4 di base (ogni 10 secondi per 2 minuti) come controllo pre-nicotina. Applicare nicotina (1 μM) per perfusione rapida (2 ml/min) per 1 minuto, quindi lavare la nicotina con un cocktail HBS. Continua a catturare immagini time-lapse prima, durante e dopo l'applicazione di nicotina ogni 10 secondi per 30 minuti.
- Salva tutti i fotogrammi delle immagini grezze in fluorescenza fluo-4 ed esportali come una serie di immagini TIFF per ulteriori analisi.
- Raccogliere l'intensità integrata della fluorescenza fluo-4 lungo gli assoni vHipp prima e dopo l'applicazione di nicotina.
- Normalizzare l'intensità della fluorescenza integrata con la seguente equazione: ΔF/F0 = (F-F0)/F0, dove F0 è l'intensità della fluorescenza integrata pre-nicotina corretta per lo sfondo e F è l'intensità della fluorescenza integrata lungo gli assoni vHipp in ogni punto temporale dopo l'applicazione della nicotina. Analizza e traccia l'intensità della fluorescenza integrata normalizzata.