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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Fonte: Shetty, M. S. et al., Indagine sull'etichettatura/cattura sinaptica e la cattura incrociata utilizzando fette acute di ippocampo da roditori.J. Vis. Exp. (2015).
Questo video mostra un metodo per registrare le risposte sinaptiche CA3-CA1 in una fetta di ippocampo di ratto. Delinea i passaggi necessari per posizionare gli elettrodi stimolanti e di registrazione sulla fetta ippocampale e misurare il potenziale postsinaptico eccitatorio di campo (fEPSP) per valutare la forza della risposta sinaptica.
Tutte le procedure che coinvolgono campioni di animali sono state esaminate e approvate dal comitato di revisione etica degli animali appropriato.
1. Registrazione delle risposte sinaptiche CA3-CA1
NOTA: La configurazione elettrofisiologica utilizzata per la registrazione del potenziale di campo è mostrata nella Figura 1A. Una gabbia di Faraday è fortemente consigliata se l'interferenza elettrica è al di fuori del controllo dopo la corretta messa a terra delle impostazioni elettriche. In commercio sono disponibili diversi tipi di camere sommerse e di interfaccia. Tuttavia, le camere di interfaccia sono preferite in quanto le fette mostrano risposte sinaptiche più robuste in esse.

Figura 1.Impianto di elettrofisiologia per registrazioni di potenziale di campo costituito da (A) stimolatori (b) un amplificatore differenziale (c) un convertitore analogico-digitale (d) Oscilloscopio (e) computer con software di acquisizione (f) Microscopio da tavolo resistente alle vibrazioni (g) con ingrandimento >4x (h) Interfaccia camera a fetta cerebrale (i) un sistema di perfusione per ACSF e alimentazione di carbogeno (j) Regolatore di temperatura (k) Una sorgente di illuminazione (l) Manipolatori con portaelettrodi. (B) Camera di interfaccia del cervello. (C) e (D) Fette di ippocampo nella camera di interfaccia. (E) Elettrodo di acciaio inossidabile sigillato in un capillare di vetro.

Figura 2.(A) Rappresentazione schematica di una fetta ippocampale trasversale e della posizione dell'elettrodo per la registrazione del potenziale di campo: in questa rappresentazione, due elettrodi stimolanti (S1 e S2) sono posizionati nello strato radiato della regione CA1 per stimolare due input sinaptici indipendenti ma sovrapposti sui neuroni piramidali CA1. Due elettrodi di registrazione extracellulari, uno per registrare l'EPSP di campo (potenziale post-sinaptico eccitatorio) dal compartimento dendritico apicale e un altro per registrare il picco di popolazione somatica dai corpi cellulari piramidali, si trovano rispettivamente nello strato radiato e nello strato piramidale. CA1- regione 1 dell'ammonide del cornu, CA3- regione 3 dell'ammonide del cornu, DG- giro dentato, SC- fibre collaterali di Schaffer, elettrodo stimolante 1 S1, elettrodo 2 stimolante S2. (B) Paradigma debole prima forte per studiare STC: la tetanizzazione debole (WTET) viene applicata a S1 (cerchi aperti) per indurre l'LTP precoce seguita da una tetanizzazione forte (STET) di S2 (cerchi pieni) a 30 minuti per indurre l'LTP tardivo. L'LTP precoce in S1 viene rinforzato a LTP tardivo mostrando l'interazione di marcatura e cattura (n = 6). (C) Paradigma debole prima forte per studiare il cross-tagging: L'LTP precoce è indotto dal WTET in S1 (cerchi aperti) seguito dall'induzione di LTD tardivo in S2 (cerchi pieni) utilizzando SLFS dopo 30 minuti. In S1, l'LTP precoce viene trasformato in LTP tardivo della durata di 6 ore, mostrando il cross-tagging e l'acquisizione (n = 6). La freccia singola rappresenta la tetanizzazione debole applicata per indurre l'LTP precoce. La tripletta di frecce rappresenta una forte tetanizzazione per indurre la tardiva LTP. La freccia spezzata rappresenta il punto temporale in cui SLFS è stato applicato all'input sinaptico rappresentativo per indurre la LTD tardiva. Le barre di errore indicano il SEM.
| I. Prodotti chimici componenti ACSF | |||
| 1. Cloruro di sodio (NaCl) | Sigma-Aldrich | S5886 | |
| 2. Cloruro di potassio (KCl) | Sigma-Aldrich | P9541 | |
| 3. Solfato di magnesio eptaidrato (MgSO4.7H20) | Sigma-Aldrich | Motore M1880 | |
| 4. Cloruro di calcio diidrato (CaCl2.2H2O) | Sigma-Aldrich | Visualizzazione del materiale C3881 | |
| 5. Fosfato di potassio monobasico (KH2PO4) | Sigma-Aldrich | P9791 | |
| 6. Bicarbonato di sodio (NaHCO3) | Sigma-Aldrich | Episodio 5761 | |
| 7. D-glucosio anidro (C6H12O6) | Sigma-Aldrich | G7021 | |
| II. Strumenti di elettrofisiologia | |||
| 1. Microscopio | Olimpo, Giappone | Modello SZ61 | |
| 2. Regolatore di temperatura | Progettazione di sistemi scientifici, Inc., Canada | PTC03 | |
| 3. Amplificatore CA differenziale | Sistemi AM, Stati Uniti | Modello 1700 | |
| 4. Stimolatore a impulsi isolato | Sistemi AM, Stati Uniti | Modello 2100 | |
| 5. Oscilloscopio | Rhode & Schwarz | HM0722 | |
| 6. Convertitore digitale-analogico | Cambridge Electronic Design Ltd. Cambridge, Regno Unito | CED-Potenza 1401-3 | |
| 7. Interfaccia Camera a fette cerebrali | Progettazione di sistemi scientifici, Inc., Canada | BSC01 | |
| 8. Pompa per tubi | Ismatec, Idex Health & Science, Germania | REGLO-Analogico | |
| 9. Misuratore di portata Carbogen | Cole-Parmer | Codice 03220-44 | |
| 10. Illuminatore a fibra ottica | Industrie Dolan-Jenner | Fibra Lite MI-150 | |
| 11. Micromanipolatori | Marzhauser Wetzlar, Germania | 00-42-101-0000 (MM-33) | |
| 00-42-102-0000 (MM-32) | |||
| 12. Elettrodi | Sistemi AM, Stati Uniti | 571000 (Acciaio inossidabile; 0,010, 5MΩ, 8 gradi) |