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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Fonte: Manseau, F., et al. Tuning in the Hippocampal Theta Band In Vitro: Metodologie per la Registrazione dal Circuito Setteippocampale Isolato per Roditori. J. Vis. Exp. (2017)
Questo video dimostra il metodo per utilizzare l'optogenetica per modulare la dinamica della rete ippocampale attivando interneuroni sensibili alla luce geneticamente modificati in una fetta di cervello di topo, migliorando la sincronizzazione dell'oscillazione theta e studiando il comportamento dei circuiti neurali.
Tutte le procedure che coinvolgono campioni di animali sono state esaminate e approvate dal comitato di revisione etica degli animali appropriato.

Figura 1: Potenziale di campo locale e registrazioni simultanee di patch clamp da singoli neuroni piramidali CA1/SUB e PV durante oscillazioni theta spontanee e optogeneticamente guidate nell'ippocampo isolato.
(a) Diagramma che mostra i siti di registrazione dell'elettrodo LFP e patch con il posizionamento della guida della fibra luminosa sopra la regione CA1/SUB che esprime un'opsina sensibile alla luce blu (ChETA accoppiato con il fluoroforo eYFP). (b) Caratterizzazione di un neurone piramidale che mostra le tipiche proprietà di Regular-Spiking (RS) (in alto) e l'immagine ad alto ingrandimento (40X) della cellula registrata (in basso). (c) Registrazione del campione di current-clamp della stessa cella al potenziale di membrana depolarizzato (nero) insieme al segnale LFP (grigio) e che mostra IPSP ritmici sincronizzati durante l'oscillazione spontanea (a sinistra) e durante la stimolazione alla luce a frequenza theta (6 Hz) (a destra). Il modello di stimolazione della luce (ombreggiatura blu) è raffigurato sopra le tracce di tensione. (d) Spettrogramma e spettri di potenza della forma d'onda LFP prima, durante e dopo una stimolazione luminosa a 6 Hz (basale, stim, post). (e) Immagini in campo chiaro e a fluorescenza a basso ingrandimento della preparazione ippocampale isolata che mostrano la fluorescenza eYFP (in verde) localizzata nella regione CA1/SUB. (f) Caratterizzazione delle fasi correnti che mostra il comportamento Fast-Spiking (FS) di un interneurone PV-TOM registrato (immagine a fluorescenza 40X sotto). (g) Registrazione del potenziale di membrana che mostra grandi EPSP e l'accensione ritmica della cella PV registrata sincronizzata con il segnale LFP durante l'oscillazione di campo spontaneo (a sinistra) e durante la stimolazione luminosa (a destra) a 3 Hz. (h) Media attivata dal campo (FTA) dei picchi della cella PV sul segnale CA1/SUB LFP. La scarica della cella fotovoltaica in più prove (centrate sui picchi LFP) è stata convertita in un FTA di picchi registrati durante l'oscillazione spontanea (basale) e durante la stimolazione luminosa (stim). I grafici centrale e inferiore mostrano i grafici raster dei picchi e gli istogrammi di probabilità dei picchi (la probabilità media è mostrata in rosso). I grafici più in alto mostrano i grafici del segnale LFP medio, che è aumentato di potenza durante la stimolazione luminosa in parallelo con l'accensione altamente sincronizzata della cella fotovoltaica ad aggancio di fase al picco dell'oscillazione LFP.
| Reagenti | |||
| cloruro di sodio | Sigma Aldrich | S9625 | |
| saccarosio | Sigma Aldrich | S9378 | |
| bicarbonato di sodio | Sigma Aldrich | Episodio 5761 | |
| NaH2PO4 - sodio fosfato monobasico | Sigma Aldrich | S8282 | |
| Solfato di magnesio | Sigma Aldrich | Visualizzazione del materiale M7506 | |
| cloruro di potassio | Sigma Aldrich | P3911 | |
| D-(+)-glucosio | Sigma Aldrich | G7528 | |
| Cloruro di calcio diidrato | Sigma Aldrich | C5080 | |
| Ascorbato di sodio | Sigma Aldrich | Codice A7631-25G | |
| attrezzatura | |||
| Miscela di gas 95% O2/5% CO2 (carbogeno) | Vitalaire | SG466204A | sistema di perfusione |
| Bottiglie/fiaschi di vetro (4 x 1 L) | n.d. | n.d. | sistema di perfusione |
| Camera di registrazione sommersa | design personalizzato (FM) | n.d. | Può essere utilizzata un'alternativa commerciale |
| Amplificatore patch-clamp Multiclamp 700B | Dispositivi molecolari | MULTICLAMP | elettrofisiologia |
| Programma Multiclamp 700B Commander | Dispositivi molecolari | MULTICLAMP | elettrofisiologia |
| Convertitore digitale/analogico | Dispositivi molecolari | DDI440 | elettrofisiologia |
| Micromanipolatori (ad azionamento manuale) | Siskiyou | MX130 | elettrofisiologia (LFP) |
| Micromanipolatori (automatizzati) | Siskiyou | MC1000e | Elettrofisiologia (cerotto) |
| Monitor audio | Sistemi A-M | Modello 3300 | elettrofisiologia |
| Microscopio a fluorescenza verticale su misura | Siskiyou | n.d. | Imaging |
| Videocamera analogica | COHU | 4912-2000/0000 | Imaging |
| Cattura fotogrammi digitale con software di imaging | EPIX, Inc | PIXCI-SV7 | Imaging |
| Obiettivo Olympus 2.5x | Olimpo | MPLFLN | Imaging |
| Obiettivo ad immersione in acqua Olympus 40x | Olimpo | UIS2 LUMPLFLN | Imaging |
| Sistema a diodi emettitori di luce (LED) su misura | costume | n.d. | stimolazione optogenetica (Amhilon et al., 2015) |
| animali | |||
| PV::Cre (KI) mouse | Laboratorio Jackson | Codice 008069 | Consentire l'espressione genica diretta da Cre negli interneuroni PV |
| Topi Ai9 costitutivo-condizionali (R26-lox-stop-lox-tdTomato (KI)) | Laboratorio Jackson | Codice 007905 | Express TdTomato a seguito di ricombinazione mediata da Cre |
| Topi Ai32 (R26-lox-stop-lox-ChR2(H134R)-EYFP | Laboratorio Jackson | Numero di 012569 | Esprimere la proteina di fusione canalerodopsina-2/EYFP migliorata in seguito all'esposizione alla Cre ricombinasi |
| Topi in PVChY | Allevamento in casa | n.d. | Prole ottenuta dall'incrocio della linea PV-Cre con topi Ai32 (R26-lox-stop-lox-ChR2(H134R)-EYFP |