Articolo metodologico

Determinazione dell'interruzione della barriera emato-encefalica utilizzando coloranti fluorescenti in un modello murino EAE

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Tietz, S. M., et al., Visualizzazione della compromissione delle barriere endoteliali e gliali dell'unità neurovascolare durante l'encefalomielite autoimmune sperimentale in vivo. (2019).

Questo video mostra una procedura per valutare l'interruzione della barriera emato-encefalica in un modello murino EAE. Coloranti fluorescenti di diverse dimensioni vengono iniettati per via retro-orbitale e circolano attraverso i vasi sanguigni del cervello. Il colorante più piccolo fuoriesce attraverso le fessure nel tessuto cerebrale, mentre il colorante più grande entra solo se l'interruzione è grave, correlata all'entità del danno alla barriera.

Protocollo

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Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Saggio di permeabilità in vivo

  1. Preparazione delle soluzioni:
    1. Per le soluzioni madre di destrano, sciogliere 10 mg di destrano da 10 kDa Alexa Fluor 488 e 3 kDa di destrano Texas Red in 500 μl di soluzione di cloruro di sodio allo 0,9% (20 mg/mL).
    2. Per la soluzione di lavoro del destrano, poco prima dell'iniezione pipettare 55 μL di 10 kDa di destrano Alexa Fluor 488 soluzione madre (20 mg/mL) su un pezzo di pellicola sigillante e aggiungere 55 μL di 3 kDa destrano Texas Red soluzione madre (20 mg/mL). Mescolare e raccogliere 100 μl in una siringa fine monouso (concentrazione finale 2 mg/100 μl).
    3. Per la soluzione madre di formaldeide al 10% (Paraformaldeide o PFA), combinare 10 g di polvere extra pura di PFA, 100 ml di PBS e 200 μl di idrossido di sodio 1N (NaOH) in un becher di vetro pulito e riscaldare a 56 °C esatti sotto agitazione utilizzando un agitatore magnetico. Mantenere a 56 °C per 30 minuti fino a quando il PFA non si è completamente sciolto. Raffreddare a temperatura ambiente, regolare il pH a 7,4 e filtrare con un filtro di carta. Conservare a—20 °C. La soluzione madre può essere ulteriormente diluita utilizzando soluzione salina tamponata con fosfato o PBS.
  2. Anestetizzare brevemente topi sani C57BL/6 o topi C57BL/6 affetti da encefalomielite autoimmune sperimentale, o EAE con isoflurano (il topo sarà sedato per circa 1 minuto). Utilizzare un sistema automatizzato (i topi saranno esposti al 4,5% di isoflurano in ossigeno in una camera di induzione e poi trasferiti in una maschera facciale con isoflurano al 2,1%).
  3. Posizionare il topo anestetizzato in posizione laterale sul tavolo, quindi iniettare per via endovenosa (ad es. retro-orbitale) 100 μL di traccianti fluorescenti nel topo prima che il topo si svegli
  4. .
  5. Rimuovere immediatamente la maschera facciale e assicurarsi che il topo sia completamente sveglio e mobile dopo la breve anestesia. Lasciare circolare il tracciante per 15 minuti.

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Destrano Alexa Fluor 488 (10.000 MW)ad es. sonde molecolariD22910Conservare a -20 °C; proteggere dalla luce
Destrano Texas Rosso (3000 MW)InvitrogenD3328Conservare a -20 °C; proteggere dalla luce
Alimenti di mantenimentoad es. PROVIMI KLIBA SATelefono 3436
ParaformaldeideMerckCodice 30525-89-4
NaCl 0,9 %B. Braun3535789
Pellicola sigillante, ad es. Parafilm Mad esempio Sigma-AldrichP7793
siringa 1 mles. PRIMO62.1002

Ristampe e permessi

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Traccianti al destranoIniezione retro orbitaleGiunzioni serrateSoluzioni stock di destranoTraccianti fluorescentiUnit neurovascolare

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