$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Misurazione della citometria a flusso delle subunità del complesso MRC (catena respiratoria mitocondriale) e TFAM (fattore di trascrizione mitocondriale A) in cellule fissate
- Al termine del periodo di coltura, staccare le cellule (~106) aggiungendo il reagente di dissociazione cellulare; quindi, pellettare e raccogliere le cellule in una provetta da 15 mL. Lavare le celle mediante centrifugazione con soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) (1x) due volte centrifugando a 300 × g per 5 minuti.
- Fissare le cellule in paraformaldeide (PFA) all'1,6% (1 mL di PFA all'1,6% in una provetta da 15 mL) a temperatura ambiente (RT) per 10 min. Lavare le cellule mediante centrifugazione con PBS (1x) due volte centrifugando a 300 × g per 5 min.
- Permeabilizzare le cellule con metanolo ghiacciato al 90% (1 mL di metanolo al 90% in una provetta da 15 mL) a -20 °C per 20 min.
- Bloccare i campioni nel tampone bloccante contenente 0,3 M di glicina, 5% di siero di capra e 1% di albumina sierica bovina (BSA) - Frazione V in PBS (1x) (1 mL di tampone bloccante in una provetta da 15 mL). Lavare le celle mediante centrifugazione con PBS (1x) due volte.
- Incubare le cellule con i seguenti anticorpi primari per 30 minuti: anti-NDUFB10 (1:1.000) per la misurazione della subunità del complesso I, subunità A della flavoproteina del complesso anti-succinato deidrogenasi (SDHA, 1:1.000) per la misurazione della subunità del complesso II e anti-COX IV (1:1.000) per la misurazione della subunità del complesso IV e anticorpo anti-TFAM (fattore di trascrizione mitocondriale A) coniugato con Alexa Fluor 488 (1:400). Colorare separatamente lo stesso numero di cellule con l'anticorpo anti-TOMM20 (translocasi della membrana mitocondriale esterna 20) coniugato con Alexa Fluor 488 (1:400) per 30 minuti (1 ml di soluzione di anticorpi primari in una provetta da 15 ml; vedere la Tabella dei materiali per i dettagli sugli anticorpi).
- Lavare le cellule con PBS (1x) una volta con centrifugazione a 300 × g per 5 minuti. Aggiungere l'anticorpo secondario (1:400) in provette di NDUFB10, SDHA e COX IV e incubare le cellule con queste soluzioni per 30 minuti.
- Lavare le cellule con PBS (1x) una volta centrifugando a 300 × g per 5 minuti. Aspirare i surnatanti, lasciando circa 100 μl nelle provette. Risospendere i pellet di cella in 300 μL di PBS (1x). Trasferire le cellule in provette da microcentrifuga da 1,5 mL tenute al buio su ghiaccio.
- Analizzare le cellule sul citometro a flusso (con una configurazione laser a 3 blu e 1 rosso). Rileva i segnali nel filtro 1 (FL1) utilizzando un filtro passa-banda 530/30.