Articolo metodologico

Immunoistochimica per l'identificazione della regione del locus coeruleus nelle sezioni cerebrali di topo

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Schmidt, K. et al., Localizzazione del locus coeruleus nel cervello del topo. J. Vis. Exp. (2019)

Questo protocollo delinea l'uso dell'immunoistochimica per identificare le regioni del locus coeruleus nelle sezioni del cervello del topo. Prendendo di mira la dopamina β-idrossilasi con anticorpi marcati con fluoroforo verde, i neuroni produttori di noradrenalina vengono visualizzati al microscopio come fluorescenza verde.

Protocollo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutte le procedure che coinvolgono campioni di animali sono state esaminate e approvate dal comitato di revisione etica degli animali appropriato.

1. Affettatura del cervello

  1. Per immobilizzare e anestetizzare i topi mediante l'applicazione di isoflurano al 3%.
    1. Immergere un batuffolo di cotone con gocce di isoflurano e metterlo in una provetta da microcentrifuga da 15 ml. Metti il naso dell'animale nel tubo e lascialo inalare l'isoflurano. Controllare la profondità dell'anestesia in base alla mancanza di risposta al pizzicamento delle dita.
  2. Posiziona l'animale sulla schiena e immobilizzalo bloccando le sue estremità con uno spillo a T mentre ha accesso al suo addome.
  3. Taglia l'animale con le forbici chirurgiche, tagliando la pelle addominale e tagliando la pelle nella regione del torace. Appunta la pelle verso il basso usando i perni a T. Quindi, rompere la membrana peritoneale fino al torace. Esporre il cuore rompendo la cavità toracica e tagliando il diaframma.
  4. Taglia l'atrio destro per consentire al sangue di defluire dall'animale. Inserire una siringa da 10 ml con un ago calibro 25 nel ventricolo sinistro e perfondere con 10 ml di soluzione fisiologica tamponata con fosfato (PBS).
    NOTA: Ciò consente alla soluzione di fluire attraverso la circolazione sistemica e di uscire attraverso l'atrio destro.
  5. Rimuovere la siringa da 10 ml e inserire un ago calibro 25 collegato alla siringa da 60 ml. Perfondere attraverso il ventricolo sinistro con 50 ml di paraformaldeide (PFA) al 4% ghiacciata.
    1. Preparare una soluzione ghiacciata di PFA al 4% diluendo la soluzione di PFA al 10% in H2O e raffreddando la soluzione finale di PFA al 4% a 4 °C.
  6. Isolare la testa del topo e rimuovere il cervello dal cranio.
    1. Taglia la pelle dal collo, quindi taglia verso gli occhi per esporre il cranio. Rompi il cranio dal collo al naso e poi da un bulbo oculare all'altro. Staccare il cranio e asportare l'intero cervello.
  7. Incubare il cervello in PFA al 4% per 24 ore a 4 °C.
  8. Trasferire il cervello con una pinza in una provetta conica da 50 mL riempita con 25 mL di soluzione di saccarosio al 30%. Tenerlo a 4 °C per 48-72 ore fino a quando il cervello affonda sul fondo del tubo.
  9. Tagliare il cervello con una matrice di affettatore cerebrale di topo adulto coronale attraverso il mesencefalo (~3 mm dietro il bregma). Conserva la sezione cerebrale contenente il tronco encefalico.
    NOTA: Questo si tradurrà in due sezioni cerebrali - una contenente la maggior parte della corteccia (anteriore del taglio) e una contenente il tronco encefalico/cervelletto (posteriore del taglio). Utilizzare la sezione del tronco encefalico per i seguenti passaggi.
  10. Incorporare la sezione del tronco encefalico con la superficie di taglio posizionata sul fondo di uno stampo da inclusione, circondata da un composto a temperatura di taglio ottimale (OCT); Spostare il cervello incorporato in un congelatore a -80 °C e congelare per almeno 12 ore, fino a nuovo utilizzo.
  11. Taglio al criostato: posizionare lo stampo di inclusione contenente il cervello in OCT nel criostato; Incubarlo nel criostato per diverse ore per regolare la temperatura del blocco cerebrale a quella del criostato.
  12. Staccare lo stampo di inclusione per esporre il blocco OCT contenente il cervello.
  13. Usa le lame di rasoio per rimuovere l'OCT in eccesso dalla superficie del blocco senza toccare il cervello.
  14. Montare il blocco OCT sul mandrino del criostato, esponendo la superficie di taglio del cervello verso la parte anteriore.
  15. Regolare la superficie di taglio del cervello in modo che sia orientata parallelamente alle lame di rasoio del criostato.
  16. Tagliare il cervello iniziando dal midollo, tagliando sezioni di 100 μm rostralmente.
  17. Tagliare rostralmente fino a quando il cervelletto e il tronco encefalico sono tagliati come una fetta continua. Iniziare a raccogliere fette a 50 μm di spessore.
    NOTA: Quando si taglia rostralmente dal midollo, il tronco encefalico e il cervelletto saranno tagliati in due sezioni separate. Nelle sezioni rostrali, il tronco encefalico e il cervelletto finiranno per fondersi a livello del 4° ventricolo. Una volta che i bordi laterali del 4° ventricolo sono ben formati, il cervelletto e il tronco encefalico usciranno come un'unica fetta continua.
    1. Raccogli una fetta di cervello circondata da OCT con una pinza e mettila in un pozzetto di una piastra a 24 pozzetti riempita di PBS (Figura 1a). Il locus coeruleus (LC) sarà più prominente quando il cervelletto e il collicolo inferiore si incontrano a ~-5,52 mm dietro la bregma (Figura 2b).
      NOTA: La parte più anteriore del LC scomparirà una volta che il cervelletto sarà stato completamente sezionato e non circonderà più il collicolo inferiore a ~-5,34 mm posteriormente alla bregma (Figura 2c).

2. Immunoistochimica della dopamina β-idrossilasi (DBH) o della tirosina idrossilasi (TH) (Figura 1)

  1. Giorno 1
    1. Lavare le fette selezionate tre volte per 5 minuti in PBS.
    2. Permeabilizzare per 24 ore in soluzione salina tamponata con fosfato allo 0,5% con detergente (PBSD) a 4 °C.
      1. Diluire 125 μL di detergente in 25 mL di PBS.
  2. Giorno 2
    1. Lavare le fette tre volte per 5 minuti allo 0,5% di PBSD.
    2. Aggiungere l'anticorpo primario, anti-DBH o anti-TH, per 18 ore a una diluizione di 1:500 in PBSD allo 0,5% a 4 °C.
  3. Giorno 3
    1. Lavare le fette tre volte per 10 minuti allo 0,5% di PBSD.
    2. Aggiungere l'anticorpo secondario desiderato (488 asino anti-coniglio per fluorescenza verde) alla diluizione di 1:1000 in PBSD allo 0,5% per 16 ore.
    3. Avvolgere la piastra a 24 pozzetti in alluminio e posizionarla a 4 °C.
    4. Lavare le fette tre volte per 5 minuti allo 0,5% di PBSD.
    5. Lavare per 5 minuti in PBS.
    6. Trasferisci le fette con un pennello a matita in un contenitore per l'acqua.
    7. Monta fette che galleggiano nell'acqua su scivoli carichi.
    8. Sezioni di vetrino coprioggetti con terreno di montaggio rigido Dopamina beta-idrossilasi
    9. Asciugare le sezioni cerebrali montate per 30 minuti a temperatura ambiente.
    10. Immagini di sezioni cerebrali su un microscopio confocale o fluorescente con impostazioni per rilevare i segnali dalla lunghezza d'onda appropriata del fluoroforo dell'anticorpo secondario.
    11. Regolare il microscopio sul piano focale della fetta cerebrale e scattare una singola immagine con un ingrandimento 10X.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Figura 1: Rilevamento di LC mediante immunocolorazione di fette di cervello per DBH o TH. (a) Un cervello di topo è stato sezionato in fette di 50 μm attorno al tronco encefalico e raccolto in due piastre da 24 pozzetti. Ogni 5-8a fetta di cervello raccolta è stata montata su un vetrino coprioggetto coperto di pellicola per l'imaging tramite XFM. Queste fette sono etichettate con numeri blu tra i po...

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Matrice di affettatrice del cervello di topo adultoStrumenti ZivicBSMAS001-1
Anticorpo secondario anti-coniglio, Alexa Fluor 488 (fonte - asino)Thermo Fisher ScientificA-21206
Vetrini carichiGenesee 29-107
Microscopio confocaleZeissLSM 800
CriostatoMicrom GmbHHM 505E
Lame da taglio per criostatiThermo Fisher ScientificMX35
Forbici Mini, 9,5cmAntech Diagnostcs503241
DAPI (4',6-diamidino-2-fenilindo)Sigma-AldrichD9542-10MG
Anticorpo della dopamina β-idrossilasi (DBH) - produzione propria (fonte - coniglio)B. Eipper-
Anticorpo della dopamina β-idrossilasi (DBH) - disponibile in commercio (fonte - coniglio)Segnalazione cellulare8586
Falcon tubi, 50mlStati Uniti d'America339652
Forano (isofluorano)BaxterNDC 1019-360-60
Forcipe Micro AdsonAntech Diagnostcs501245
Supporti di montaggio rigidiScienze EM17984-24
MicroscopioPascalLSM 5
Piastre multipozzetto, 24 pozzettiThermo Fisher Scientific930186
Composto per la temperatura di taglio ottimale (OCT)VWR/ tecnologia tissutale102094-106
Paraformaldeide (PFA)/ formalina 10%Fisher ScientificSF98-4
Stampi per inclusione monouso Peel-A-WayPolysciences Inc.18646A
Pennello a matita
Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)Tecnologia della vita14190250
Lamette da barbaAmazzoniaASIN: B000CMFJZ2
SpatoleAntech Diagnostcs14374
T pinsDeposito uffici344615
Il cervello del topo in coordinate stereotassiche, Paxinos e Franklin, 3a edizioneAmazonCodice ISBN: 978-0123694607
Triton-X 100 (per preparare PBSD)Sigma-AldrichT8787
Interpolazione 20Sigma-AldrichP7949-500ml
Anticorpo tirosina idrossilasi (TH) (fonte - coniglio)EMD MilliporeAB152
Microscopio fluorescente a campo largoZeissAxio Zoom.V16

Ristampe e permessi

Richiedi il permesso di riutilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi permesso

Tag

Dopamina beta idrossilasineuroni noradrenergicimicroscopia a fluorescenzaanticorpi primarianticorpi secondarimicroscopia confocalesezioni del tronco encefalico

Articoli correlati