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Articolo metodologico

Aumentare le rese cDNA da singola cellula quantità di mRNA nelle reazioni standard di laboratorio della trascrittasi inversa utilizzando Microstreaming acustico

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DOI:

10.3791/3144

11 luglio 2011

In questo articolo

Sommario

Descriviamo un nuovo metodo per aumentare la resa cDNA da singole cellule quantità di mRNA nelle reazioni inverso altrimenti standard di laboratorio trascrizione. La novità risiede nell'utilizzo di un micromixer, che utilizza il fenomeno della microstreaming acustico, di mescolare i fluidi a scale microlitro più efficacemente di agitazione, vortex o triturazione.

Abstract

L'espressione genica correlazione con il comportamento delle cellule è idealmente fatto a livello di singola cellula. Tuttavia, questo non è facilmente ottenibile, perché la piccola quantità di mRNA labili presenti in una singola cella (1-5% di 1-50pg RNA totale, o 0,01 2.5pg mRNA, per cella 1) degrada soprattutto prima di poter essere trascrizione inversa in una copia stabile cDNA. Ad esempio, utilizzando reagenti di laboratorio e hardware standard, solo un piccolo numero di geni possono essere qualitativamente valutati per cella 2. Un modo per aumentare l'efficienza dello standard di laboratorio della trascrittasi inversa (RT) reazioni (reagenti standard, cioè in volumi microlitri) comprendente cella singola quantità di mRNA potrebbe essere quella di mescolare più rapidamente i reagenti in modo che il mRNA può essere convertito in cDNA prima che degrada. Tuttavia questo non è banale perché a scale microlitro flusso del liquido è laminare, cioè i metodi attualmente disponibili di miscelazione (es. agitazione, vortex e triturazione) non riescono a produrre sufficiente moto caotico di mescolare in modo efficace i reagenti. Per risolvere questo problema, le tecniche di miscelazione micro-scala devono essere utilizzati 3,4. Un certo numero di tecnologie di miscelazione microfluidica a base sono state sviluppate con successo che aumentare le rese di reazione RT 5-8. Tuttavia, le tecnologie microfluidica richiedono hardware specializzato che è relativamente costoso e non ancora ampiamente disponibili. Una soluzione più economica, più conveniente è auspicabile. L'obiettivo principale di questo studio è di dimostrare come l'applicazione di una nuova tecnica "micromixing" per standard di laboratorio reazioni RT composto da singole cellule quantità di mRNA aumenta significativamente il loro rendimento cDNA. Troviamo rendimenti cDNA aumentare di circa 10 100 volte, che consente: (1) maggior numero di geni da analizzare per cella, (2) un'analisi più quantitativa di espressione genica, e (3) rilevazione migliore di bassa abbondanza geni in singole cellule. Il micromixing si basa su acustica microstreaming 9-12, un fenomeno in cui le onde sonore di propagazione intorno ad un piccolo ostacolo creare un flusso medio vicino l'ostacolo. Abbiamo sviluppato un acustico microstreaming dispositivo basato su ("micromixer") con una semplificazione chiave; microstreaming acustico può essere ottenuto a frequenze audio, garantendo che il sistema è un liquido-aria con un piccolo raggio di curvatura 13. Il menisco di un volume microlitri di soluzione in un tubo fornisce un adeguato raggio di curvatura piccolo. L'uso delle frequenze audio significa che l'hardware può essere poco costoso e versatile 13, e gli acidi nucleici e di altri reagenti biochimici non sono danneggiati come possono essere con sonicatori standard di laboratorio.

Protocollo

1. Micromixing una reazione RT

  1. Prima di eseguire una reazione RT con micromixing, equilibrare la micromixer alla temperatura desiderata della reazione RT.
    1. Posizionare il micromixer all'interno di un 37 ° C (o la temperatura consigliata dal fornitore RT) incubatore per almeno 1 ora prima dell'inizio della reazione RT.
  2. Impostare il mix RT secondo il fornitore di trascrittasi inversa (ad esempio MMTV-RT da Promega, Omniscript da Qiagen) le istruzioni, tranne l'uso di singole cellule quantità di RNA totale di ingresso (per esempio 0.1-1pg/μl), invece del-ng mg quantità raccomandate dai fornitori.
    1. Noi uso standard sterile, ....

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Discussione

Il metodo di applicazione della micromixing a standard di laboratorio reazioni RT qui descritto può, ovviamente, coinvolgere mRNA raccolte attraverso qualsiasi mezzo (ad esempio la lisi cellulare, microdissezione laser cattura). Si può altresì comprendere qualsiasi marca o tipi di reagenti RT, qualsiasi temperatura (entro la tolleranza dei materiali della micromixer), e qualsiasi periodo di tempo. Per esempio, abbiamo osservato una migliore resa del DNA da reazioni di RT che comprende casuale esamero o oligo-dT primer. .......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo studio è stato sostenuto dal National Health and Medical Research Council of Australia (progetto non concede. 6.288.480) e il Scobie e Chiara MacKinnon Trust.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Nome del reagente Azienda Numero di catalogo Commenti (opzionale)
RNA totale è stato isolato da scatto fette surgelati del mouse acutamente preparato adulti mesencefalo
PicoPure RNA Isolation Kit Arturo, CA, USA KIT0204 Il kit è ora disponibile da Applied Biosystems
DNA-free DNasi trattamento e reagenti di rimozione Ambion AM1906M
Casuale esamero primer Promega C1181
AMV-RT Promega M5101
dNTP set Promega U1240
RNasin Inibitore di ribonucleasi Promega N2111
Acqua priva di nucleasi Promega P1193
SYBR Verde PCR Master Mix Applied Biosystems 4309155
HPRT in avanti (20mer): CTT TGC TGA CCT GCT GGA TT
Hprt inversa (20mer): TAT GTC CCC CGT TGA CTG A
Nurr1 avanti (23mer): CAG CTC CGA CTT TTT AAC TCC AG
Nurr1 inversa (23mer): GGT GAG GTC CGT CAT AAA CTT GA
NanoDrop 1000 Spettrofotometro. Thermo Scientific
Corbett Rotor Gene RG-6000 Corbett Life Science Corbett Life Science è stata acquisita da QIAGEN nel luglio 2008

Riferimenti

  1. Livesey, F. J. Brief Funct Genomic Proteomic. 2 (1), 31-31 (2003).
  2. Aumann, T. D., Gantois, I., Egan, K. Exp Neurol. 213 (2), 419-419 (2008).
  3. Ottino, J. M., Wiggins, S. Philos Transact A Math Phys Eng Sci. 362 (1818), 923-923 (2004).
  4. Losey, M. W., Jackman, R. J., Firebaugh, S. L. J Microelectromech. Syst. 11, 709-709 (2002).
  5. Bontoux, N., Dauphinot, L., Vitalis, T. Lab Chip. 8 (3), 443-443 (2008....

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Ristampe e permessi

Tag

mRNA a singola cellulatecnica di micromiscelazionePCR quantitativamiscelazione microfluidicareagenti di laboratoriodegradazione dell RNAanalisi dell espressione genica