Articolo metodologico

Imaging time-lapse della migrazione radiale dei neuroni corticali in fette di cervello embrionale di topo trasdotto

29 maggio 2025

In questo articolo

Abstract

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Source: Wiegreffe, C., et. al., Time-lapse Imaging confocale di neuroni in migrazione in una coltura di fette organotipiche del cervello embrionale di topo utilizzando In Utero Elettroporazione. J. Vis. Exp. (2017)

Questo video mostra la microscopia confocale time-lapse per osservare la migrazione radiale del neurone corticale dalla zona subventricolare alla placca corticale tramite scaffold gliali radiali in fette di cervello embrionale di topo trasdotte.

Protocollo

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Tutte le procedure che coinvolgono campioni di animali sono state esaminate e approvate dal comitato di revisione etica degli animali appropriato.

1. Imaging time-lapse

  1. Setup del microscopio
    1. Impostare una camera climatica posizionata sul tavolino di un microscopio confocale invertito a 37 °C e 5% di atmosfera di anidride carbonica. Utilizzare un rivelatore ibrido per ridurre l'intensità del laser e migliorare la vitalità cellulare. Per un'analisi dettagliata, utilizzare un obiettivo a secco 40X a distanza di lavoro extra lunga con un'apertura numerica di 0,6 o superiore.
      Nota: Tutti i componenti del microscopio devono essere preriscaldati a 37 °C per 2 - 3 ore prima dell'imaging per fornire una messa a fuoco stabile durante il processo di imaging.
  2. Imaging a fette
    1. Seleziona una fetta di cervello per l'imaging dalla piastra a 6 pozzetti contenente gli inserti della membrana utilizzando un microscopio a fluorescenza invertita.
      Attenzione: Evitare il tempo di esposizione prolungato alla luce ultravioletta in quanto ciò potrebbe causare fotodanni cellulari.
      NOTA: Seleziona una fetta con singoli neuroni luminosi nella SVZ superiore (zona subventricolare) che migrano radialmente verso la superficie pial della fetta. I processi fluorescenti fini delle cellule gliali radiali che si estendono sull'intera CP (piastra corticale) indicano un'impalcatura gliale radiale intatta, che viene utilizzata dai neuroni corticali che migrano radialmente.
    2. Trasferire l'inserto della membrana con la fetta, che è stata selezionata per l'imaging time-lapse, in una piastra con fondo di vetro di 50 mm di diametro contenente 2 ml di terreno di coltura per fette con l'aiuto di una pinza. Posizionare il piatto nella camera climatica del microscopio confocale.
    3. Impostare la risoluzione su 512 x 512 pixel e aumentare la velocità di scansione da 400 Hz a 700 Hz per aumentare la frequenza dei fotogrammi da circa 1,4 a circa 2,5 fotogrammi al secondo, rispettivamente. Utilizzare non più di due volte la media. Definisci uno z-stack attraverso la regione elettroporata (di solito 400-100 μm) con una dimensione del passo di 1,5 μm. Collettivamente, queste impostazioni consentono una risoluzione e una luminosità sufficienti dell'immagine, mantenendo al contempo basso il fotodanneggiamento durante l'acquisizione. Inizia la serie di time-lapse prendendo uno z-stack ogni 30 minuti.
      NOTA: L'esposizione prolungata della fetta alla luce laser indurrà fotodanneggiamento riducendo la vitalità delle cellule. Regolare di conseguenza il tempo di esposizione alla luce laser.
    4. Analizza le serie time-lapse utilizzando il software ImageJ (https://imagej.nih.gov/iij/) o equivalente.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo Nome Azienda Numero di catalogo Commenti piastra a 6 pozzetti<td style='overflow:nascosto;padding:0px 3px;vertical-align:bottom;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>Corning351146 Microscopio per coltura tissutale a fluorescenza invertitaLeicaDM IL LED Microscopio a scansione laser confocaleLeicaTCS SP5II Hybrid detectorLeicaHyD Objective, 40x/0.60 NALeica11506201 Sistema di controllo della temperatura del microscopioLife Imaging ServicesCubo, Mattone & Box Inserto per colture cellulariMilliporePICM0RG50 MicrogrinderNarishigeEG-45Usa un angolo di 38° per la smussaturaMicroinjectorParker Hannifin052-0500-900Picospritzer IIIPinzette con elettrodi a disco di platino da 5 mmSonidelCUY650P5 Micropipette pullerSutter InstrumentP-97 Box filamentSutter InstrumentFB255B2.5 mm x 2.5 mmMicro-spoon spatulaVWR231-0191185 mm x 5 mmPiatto inferiore in vetro, 50 mmWorld Precision InstrumentsFD5040-100

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Migrazione dei neuroni corticaliMicroscopia confocaleImpalcatura gliale radialeMicroscopia a fluorescenzaAcquisizione di Z stackElettroporazione in uteroZona subventricolarePlacca corticale

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