Method Article

Visualizzazione di Caenorhabditis Elegans Strutture cuticola Utilizzando il Dye lipofili Vital, Dii

DOI:

10.3791/3362

January 30th, 2012

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Vi presentiamo un metodo per visualizzare in vivo cuticola C. elegans Con il colorante rosso fluorescente lipofile DII (1,1 '-dioctadecyl-3, 3,3', 3'-tetramethylindocarbocyanine perclorato), che viene comunemente usato in C. elegans Per visualizzare l'ambiente neuroni esposti. Con questo protocollo ottimizzato, le strutture e le ali anulare cuticolare sono macchiati da DII e osservate al microscopio composto.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La cuticola di C. elegans è una struttura molto resistente che circonda l'esterno dell'animale 1-4. La cuticola non solo protegge l'animale dall'ambiente, ma determina anche la forma del corpo e svolge un ruolo nella motilità 4-6. Diversi strati secreto dalle cellule epidermiche comprendono la cuticola, tra cui una strato lipidico esterno 7.

Creste circonferenziale nella cuticola chiamato modello annuli la lunghezza dell'animale e sono presenti in tutte le fasi di sviluppo 8. Ali sono creste longitudinali che sono presenti durante le fasi specifiche di sviluppo, tra cui L1, dauer, e le fasi adulti 2,9. Le mutazioni nei geni che influenzano l'organizzazione cuticolare collagene possono alterare la struttura cuticolare e morfologia del corpo animale 5,6,10,11. Mentre l'imaging cuticolare usando la microscopia composto con ottica DIC è possibile, gli attuali metodi che mettono in risalto le strutture cuticolare comprendono fluorescenticento transgene espressione 12, colorazione anticorpale 13, e la microscopia elettronica 1. Etichettati germe di grano agglutinina (WGA) è stato utilizzato anche per visualizzare glicoproteine ​​cuticolare, ma è limitato nella risoluzione dei più fini strutture cuticolare 14. La colorazione della superficie cuticolare con colorante fluorescente è stato osservato, ma mai caratterizzato in dettaglio 15. Vi presentiamo un metodo per visualizzare in vivo cuticola C. elegans con il colorante rosso fluorescente lipofile DII (1,1 '-dioctadecyl-3, 3,3', 3'-tetramethylindocarbocyanine perclorato), che è comunemente usato in C. elegans per visualizzare l'ambiente neuroni esposti. Questo protocollo ottimizzato per la colorazione DII è un metodo semplice e robusto per la visualizzazione ad alta risoluzione fluorescenti di annuli, alae, vulva, coda di sesso maschile e ermafrodita coda picco di C. elegans.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Preparazione del Dii macchia

  1. Preparare una soluzione madre di 20 mg / mL DII (Biotium, Inc., Hayward, CA) in DMF. DII è sensibile alla luce, in modo da proteggere i Dii dalla luce, avvolgendo in un foglio.
  2. Creare una diluizione di lavoro di Dii con l'aggiunta di 0,6 microlitri magazzino DII a 399,4 microlitri M9 per ogni popolazione. Questo dovrebbe dare una diluizione finale di lavoro di 30 mcg / ml Dii a M9. Questo può essere scalata per la colorazione popolazioni contemporaneamente. Dii scudo dalla luce, avvolgendo il tubo (s) in un foglio.

2. Preparazione dei nematodi

  1. Utilizzare una piastra di ....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Il metodo di colorazione DII qui presentata permette un modo relativamente veloce e conveniente per visualizzare la cuticola in C. elegans. Da riproporre e ottimizzare un metodo comunemente usato per l'immagine dell'ambiente neuroni sensoriali esposti 15,17, DII può essere usato per macchiare fluorescente sia ali e le strutture anulare (Figure 1 e 2), così come la vulva, la coda di sesso maschile e ermafrodita coda picco (Figura 3). Abbiamo trovato che la soluzione di incubazione e l'infl.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Non abbiamo nulla da rivelare.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ringraziamo S. Taneja-Bageshwar, K. Beifuss, S. Kedroske, e HC. Hsiao per le discussioni utili. Questo lavoro è stato finanziato da fondi di start-up del Dipartimento TAMHSC di Medicina Molecolare e Cellulare. L'ambito complesso e disco rotante sono stati acquistati con i fondi messi a disposizione dal Dipartimento e l'Ufficio TAMHSC del Decano. Alcuni ceppi sono stati forniti dalla genetica Caenorhabditis Center, che è finanziato dal National Center for Research Resources. pRF4 (rol-6 (su1006)) era un dono del Fuoco A..

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Reagenti Sinonimi Azienda Numero di catalogo Commenti
Dii 1,1 '-Dioctadecyl-3, 3,3', 3'-tetramethylindocarbocyanine perclorato Biotium, Inc. 60010 Magazzino di diluizione:
20 mg / mL in DMF
diluizione di lavoro: 30 mg / mL
DMF Dimetilformammide Sigma-Aldrich, Inc. D4551
Tritone
X-100
Octylphenoxypolyethoxyethanol VWR International, LLC. EM-9410
M9 22mm KH 2 PO 4, 42mm Na 2 HPO 4, 86 mm di NaCl, 1 mM MgSO 4
NGM Nematode crescita medio IPM Scientific, Inc. 11006-501 Può essere preparato seguendo il protocollo NGM agar 18
Agar-agar EMD Chemicals, Inc. 1,01614 4% in acqua
Levamisolo Levamisolo cloridrato Sigma-Aldrich, Inc. 31742 100 mM - 1 levamisolo mM come richiesto
Microscopio diapositive VWR International, LLC. 16005-106
Microscopio copertura occhiali VWR International, LLC. 16004-302
Composto portata Carl Zeiss, Inc. A1M Utilizzare gli obiettivi per soddisfare le esigenze della sperimentazione
TRITC o altri filtro compatibile   Chroma Technology Corp. 49005 ET - DsRed (TRITC/Cy3) atomizzate set di filtri

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cox, G. N., Kusch, M., Edgar, R. S. Cuticle of Caenorhabditis elegans: its isolation and partial characterization. The Journal of Cell Biology. 90, 7-17 (1981).
  2. Cox, G. N., Staprans, S., Edgar, R. S.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

C elegans CuticleDiI StainingFluorescent DyeCuticle VisualizationNematode StainingAnnuli AlaeFluorescence MicroscopyLipophilic DyeCuticle StructureLive Imaging

Related Articles