È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Protocolli di colorazione di isole pancreatiche umane

27.4K visualizzazioni

DOI:

10.3791/4068

23 maggio 2012

In questo articolo

Sommario

Questo video mostra le procedure per la caratterizzazione di isole pancreatiche umane utilizzando ematossilina ed eosina (H & E) e di immunoistochimica (IHC). Sezioni del pancreas di testa, corpo, e le regioni di coda sono macchiati sia da H & E e IHC per determinare la composizione delle isole endocrine (insulina, glucagone e polipeptide pancreatico), la replicazione cellulare (Ki67), e infiltrati infiammatori (H & E, CD3). La regione uncinato è localizzato usando IHC per il polipeptide pancreatico.

Abstract

Le stime di superficie delle isole e dei numeri e la composizione delle cellule endocrine nel pancreas umano adulto varia da alcune centinaia di migliaia di intervalli di massa diversi milioni di beta e da 500 a 1-3 mg 1500. Con questa eterogeneità noto, un trattamento standard e procedura di colorazione è stato sviluppato in modo che le regioni del pancreas sono stati chiaramente definiti e isolotti caratterizzate con rigorosa istopatologia ed esami immunolocalizzazione.

Procedure standardizzate per l'elaborazione di pancreas umano recuperati da donatori di organi sono descritte nella parte 1 di questa serie. Il pancreas è trasformato in 3 regioni principali (testa, corpo, coda) seguiti da sezioni trasversali. Sezioni trasversali della testa del pancreas sono ulteriormente suddivise, come indicato in base alle dimensioni, e numerati in ordine alfabetico per indicare sottosezioni. Questa standardizzazione permette una completa analisi sezione trasversale della regione della testa, compresa la regione uncinato che contiene composti isolottiprincipalmente da cellule pancreatiche polipeptide regione della coda.

La presente relazione comprende parte 2 di questa serie e descrive le procedure utilizzate per il sezionamento seriale e caratterizzazione istopatologica delle sezioni di paraffina del pancreas con un'enfasi sulle cellule endocrine insulari, la replica e T-cellule si infiltra. Patologia delle sezioni pancreatiche è destinata a caratterizzare sia esocrina, dei dotti, e componenti endocrine. Il vano esocrina viene valutato per la presenza di pancreatite (attivo o cronica), atrofia, fibrosi, e grasso, così come il sistema di condotto, in particolare in relazione alla presenza di neoplasia pancreatica intraduttale 4. Le isole vengono valutati per la morfologia, le dimensioni e densità, cellule endocrine, infiammazione, fibrosi, amiloide, e la presenza di cellule replica o apoptotici con H & E e le macchie IHC.

Il componente finale descritta nella parte 2 è la fornitura della diapositiva macchiatas come immagini delle diapositive digitalizzate intere. Le diapositive digitalizzate sono organizzati per caso e regione pancreas in un database online patologia la creazione di una biobanca virtuale. L'accesso a questa raccolta online è attualmente previsto a oltre 200 medici e scienziati coinvolti nella ricerca sul diabete di tipo 1. Il database online fornisce un mezzo per la rapida e completa condivisione dei dati e per i ricercatori per selezionare i blocchi di paraffina o congelati sezioni seriali.

Protocollo

1. Microtomia per sezioni non macchiate

  1. Impostare bagnomaria e microtomo come per microtomia paraffina standard. Utilizzare vetrini con carica positiva e pre-etichetta con il numero di casi, regione pancreas (campione) e il numero di diapositiva. Posto blocco di paraffina nel mandrino microtomo con l'etichetta cassetta sul lato sinistro.
  2. Seguire le procedure Microtomia normali, sezione nel blocco finché il tessuto è uniformemente incontrato. Produrre un nastro di sezioni seriali (4 micron di spessore, 3-6 a seconda del numero di macchie iniziali richiesti (vedi Modulo per l'invio Case, appendice 1)). Sezioni distinte nell....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Discussione

Standardizzazione delle procedure IHC è fondamentale per l'analisi delle immagini, in particolare quando si utilizzano computer basati su algoritmi in un gran numero di diapositive nel corso del tempo. La procedura di colorazione IHC descritto nella presente relazione permetterà un'analisi lotto di campioni di un donatore data, utilizzando uno Autostainer all'interno di una giornata di 8 ore di lavoro e vengono modificati da una relazione precedente 5. Immagini delle diapositive digitalizzate inte.......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Non ci sono conflitti di interesse dichiarati.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano le famiglie dei donatori e le Organizzazioni Organ Procurement coinvolti in questa ricerca e Emily Montgomery, Robert Pietras, Ann Fu, Mitali Agarwal, Roshan e Agarwal per la loro assistenza di un esperto. Questo lavoro è stato finanziato dalla Juvenile Diabetes Research Foundation (MC-T.) a sostegno della rete per i donatori di organi del pancreas con diabete.

....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Nome del reattivo Azienda Numero di catalogo Comments
30% perossido di idrogeno (H 2 O 2) FisherScientific H325-500 Perossidasi endogena blocco
ABC-fosfatasi alcalina (AP) Vettore AK-5000 AP coniugato
Anticorpo Diluente Invitrogen 003218 Anticorpo primario
Avidina blocker Vettore SP-2001 Blocca biotina endogena
Biotinilato di capra anti-cavia Vettore BA-7000 Anticorpo secondario
Reagente blu FisherScientific 7301 Leica autostainer
Tampone citrato, pH 6,0 BioGenex HK086-9K Antigen recupero
Chiarificatore 1 FisherScientific 7401 Leica Autostainer
Cytoseal XYL FisherScientific 8312-4 Coverslip mezzo di montaggio
DAB Vettore SK-4100 HRP cromogeno
Deeb DAKO S2003 Endogena AP blocco reattivo
Eosina alcolica Y FisherScientific 71204 Leica Autostainer
Etanoli-100%, 95%, 90%, 70% FisherScientific Vario Deparaffinizzazione e coprioggetto
Ematossilina DAKO S3301 Dako Autostainer
Ematossilina 7211 FisherScientific 7211 Leica Autostainer
IgG (tutte le specie di accoglienza per gli anticorpi primari) Vario Vario I controlli negativi per le primarie
Liquid Permanent Red (LPR) DAKO K0640 AP cromogeno
Mach2 AP Biocare Medical MALP521L Capra anti-topo coniugato AP
Mach2 HRP Biocare Medical MHRP520L Capra anti-topo coniugato HRP
Mach2 HRP Biocare Medical RHRP520L Capra anti-topo coniugato HRP
Metanolo FisherScientific Vario H 2 O 2 diluente
Siero di capra normale Vettore S-1000 IHC blocco reattivo
Cecchino Biocare Medical BS966M IHC blocco reattivo
TBST 20X ThermoScientific TA-999-TT IHC tampone
Triology 20x Cella Marque 920P-06 Antigen Retrieval
Xilene FisherScientific Vario Deparaffinizzazione e coprioggetto

Tabella 1. Reagenti specifici.

Anticorpo primario Host specie Venditore Cat. # Commenti e recupero Antigen
Paraffina
Amilasi Mouse Santa Cruz SC-46657 Citrato
Amylin Mouse Serotec MCA11267 Citrato
L'anidrasi carbonica 19,9 Mouse Abcam ab15146
Caspasi-3, scisso Coniglio Segnalazione cellulare 9961 Citrato o Trilogy
CD20 Mouse DAKO M0755 Citrato o Trilogy
CD3 Coniglio DAKO A0452 Citrato
CD34 Mouse Segnalazione cellulare 3569 Citrato
CD4 Mouse DAKO M7310 Citrato
CD45 Mouse DAKO M0754 Citrato
CD68 Mouse DAKO M0876 Citrato
CD8 Mouse DAKO M7103 Citrato
Cromogranina A Coniglio DAKO A0430 Citrato
CK17 Mouse DAKO M7046 Citrato
CK19 Mouse DAKO M0772 Citrato
CK7 Mouse DAKO M7018 Citrato
C-peptide Coniglio Segnalazione cellulare 4593 Citrato
Foxp3 Ratto e Bioscience 14-4776-80 Citrato
Grelina Capra Santa Cruz SC-10386
Grelina Coniglio Abcam ab85104
Glucagone Coniglio DAKO A0565
Glucagone Mouse Abcam ab10988 Citrato
Glucagone Cavia Bachem T-5037 Citrato
GLUT-1 Mouse Abcam ab40084 Trilogia
GLUT-2 Coniglio Santa Cruz SC-9117 Non espresso in isole umane
Insulina Cavia DAKO A0564
Ki-67 Mouse DAKO M7240 Citrato
CFP Coniglio Novus biologica NB400-137A Trilogia
Polipeptide pancreatico Coniglio Invitrogen 18-0043 Citrato
PDX-1 Cavia Abcam ab47308 Citrato o Trilogy
Proinsulina Mouse Novocastra NCL-proin-1G4
Proinsulina Mouse Developmental Studies ibridoma Bank GS-9A8 Citrato
Secretagogin Coniglio Sigma HPA 006641 Citrato
Actina del muscolo liscio Coniglio Abcam ab5694
Somatostatina Coniglio DAKO A0566
Sinaptofisina Mouse DAKO M0776 Citrato
Freschi congelati Host specie Venditore Cat. # Comments
CD11b Ratto Abcam ab6332 Fissare con il 4% PF
CD11c Coniglio Serotec AHP1226
CD25 Mouse Novus biologica NB 600-564 Utilizzare una notte di incubazione per le sezioni di paraffina
CD94 Mouse Abcam ab61874 Fissare con acetone
GAD65 Mouse Santa Cruz SC-130569 Fissare con il 4% PF
HLA-ABC Mouse DAKO M0736 Fissare con acetone o 4% PF

Tabella 2. Anticorpi primari.

Nome del reattivo Azienda Numero di catalogo Comments
Aperio Scanscope CS Aperio Diapositive scanner digitale
DAKO Autostainer Plus DAKO IHC macchie
Label Matrix software di stampa BioCarta LM7UP57 Presentazione dell'etichetta del software
Leica XL Autostainer Leica H & E le macchie
Premium vetrino FisherScientific 12-548-5J Coverslip
Spectrum Information Manager Aperio Scanner software
SuperFrost Plus scivola FisherScientific 12-550-15 Vetrini con carica positiva
Verdure a vapore Black and Decker Vario Antigen recupero
Zebra TLP 3742 CDWG TLP3742 Diapositiva stampante di etichette

Tabella 3. Forniture e attrezzature specifiche.

Riferimenti

  1. In't Veld, P., Marichal, M. Microscopic anatomy of the human islet of Langerhans. Adv. Exp. Med. Biol. 654, 1-19 (2010).
  2. Matveyenko, A. V., Butler, P. C. Relationship between beta-cell mass and diabetes onset. Diabetes Obes. Metab. 10, Suppl . 4. 23-31 (2008).
  3. ....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Ristampe e permessi

Tag

IstopatologiaImmunoistochimicaSezioni SerialiSezioni in ParaffinaColorazione H EImmagini di Intero VetrinoDatabase di Patologia OnlineDiabete di Tipo 1Processazione dei Tessuti