Articolo metodologico

Allevamento e iniezione di

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DOI:

10.3791/4295

11 dicembre 2012

In questo articolo

Sommario

Il metodo qui descritto utilizza l'iniezione diretta di batteri entomopatogeni nella hemocoel di Manduca sexta Larve di insetti. M. Sexta È un insetto disponibile in commercio e ben studiata. Quindi, questo metodo rappresenta un approccio semplice per analizzare interazioni host-batteriche dalla prospettiva di uno o entrambi i partner.

Abstract

Manduca sexta, comunemente noto come il hornworm tabacco, è considerato un parassita agricolo significativo, nutrendosi di piante solanacee tra cui tabacco e pomodoro. La suscettibilità di M. larve sexta ad una varietà di specie di batteri entomopatogeni 1-5, così come la ricchezza di informazioni disponibili riguardo al sistema immunitario dell'insetto 6-8, e la sequenza del genoma in attesa di 9 ne fanno un organismo buon modello per l'uso in studio delle interazioni ospite-microbo durante la patogenesi. Inoltre, M. larve sexta sono relativamente grandi e facili da manipolare e mantenere nel relativo laboratorio per altre specie sensibili insetti. Loro grandi dimensioni facilita anche efficiente tessuto / emolinfa estrazione per analisi della risposta dell'ospite all'infezione.

Il metodo qui presentato descrive l'iniezione diretta di batteri nella hemocoel (cavità sangue) di M. Sexta larve. Questo approcciopuò essere utilizzato per analizzare e confrontare le caratteristiche di virulenza di varie specie batteriche, ceppi mutanti, o semplicemente controllare il tempo di morte insetto dopo l'iniezione. Questo metodo è stato sviluppato per studiare la patogenicità di Xenorhabdus e specie Photorhabdus che associano di norma con i vettori di nematodi come mezzo per entrare in l'insetto. Nematodi entomopatogeni in genere infettano le larve tramite digestivo naturale o aperture respiratorie, e di rilasciare il loro contenuto simbiotici batteriche nella emolinfa insetto (sangue) poco dopo 10. Il metodo descritto qui di iniezione evita il bisogno di un vettore nematode, quindi sganciare gli effetti dei batteri e nematodi sul insetto. Questo metodo permette di conteggio accurato del materiale infetto (cellule o proteine) entro l'inoculo, che non è possibile utilizzare altri metodi esistenti per analizzare entomopathogenesis, compresi nick 11 e saggi di tossicità orale 12 L'utilità del metodo di iniezione diretta, come descritto qui è analizzare patogenesi batterica monitorando mortalità insetto. Tuttavia, questo metodo può essere facilmente espanso per uso a studiare gli effetti di infezione sul M. sexta sistema immunitario. L'insetto risponde alle infezioni tramite sia le risposte umorali e cellulari. La risposta umorale comprende il riconoscimento di batteri associati modelli e conseguente produzione di vari peptidi antimicrobici 7, l'espressione di geni che codificano questi peptidi possono essere monitorati dopo infezione diretta tramite estrazione di RNA e PCR quantitativa 13. La risposta cellulare di infezione coinvolge nodulazione, incapsulamento, e fagocitosi di agenti infettivi attraverso emociti 6 13, 14.

Protocollo

1. Uovo Sterilizzazione Insetti e allevamento

  1. Preparare dieta prima autoclave 15 g di agar fornito in 900-1,000 ml H 2 O. Subito dopo la sterilizzazione in autoclave, mescolare con 166 g di dieta germe di grano e mescolate bene in un frullatore laboratorio. Versare in un piatto (o piatti) per raffreddare, poi il trasferimento dieta per un foglio di alluminio, aderire bene, e conservare a 4 ° C.
  2. All'arrivo, sterilizzare M. uova Sexta con 250 ml di soluzione di candeggina 0,6% per 2-3 minuti in un supporto di vetro e filtro beuta apparato per il vuoto con carta da filtro di 90 millimetri, mescolando occasionalmente.....

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Risultati

Un esempio rappresentativo di un saggio mortalità insetto è illustrato in Figura 3. In questo esperimento, gli insetti sono stati iniettati con circa 50 unità formanti colonie (CFU) sia di tipo selvatico (ATCC19061) o un ceppo mutante attenuato (LRP 13) di Xenorhabdus nematophila cresciuto a metà fase log (n = 6 insetti per ceppo). Insetti sono stati osservati per circa 72 ore, e la percentuale di insetti iniettati ancora vivi a ciascun timepoint registrata. In questo caso, .......

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Discussione

L'iniezione diretta di M. larve sexta con batteri entomopatogeni, come descritto qui, serve come un mezzo semplice ed efficace per analizzare la virulenza batterica. Il metodo è anche forte adattabilità a diversi soggetti sperimentali e / o condizioni. I batteri possono essere preparati in diversi modi prima dell'iniezione. Nel caso di X. nematophila, le cellule coltivate in di tipo selvatico ricco di sostanze nutritive Luria-Bertani (LB) medio a metà-log fase sono in genere i più viru.......

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ringraziamenti

Gli autori desiderano ringraziare i membri passati del Goodrich Blair-lab: Samantha Orchard, Kimberly Cowles, Erin Herbert-Tran, Greg Richards, Megan Menard, e Youngjin Parco per il loro contributo allo sviluppo di questo protocollo. Questo lavoro è stato finanziato dalla National Science Foundation concessione IOS-0950873 e il National Institutes of Health NRSA comunione FAI084441Z.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Reagente Azienda Numero di catalogo Commenti
90 mm Carta filtro Whatman 1001 090
Vetro portafiltri Millipore XX1004700
Manduca sexta uova Carolina Biological Supply 143880
Dieta Gypsy Moth + agar MP Biomedicals 0296029301
5,5 once contenitori di plastica e coperchi Solo Cup Società URC55-0090-0090 PL4
1 oncia contenitori di plastica e coperchi DART Container Corporation 100PC 100PCL25
1x PBS 137 millimetri NaCl, 2,7 mM KCl, 8 mM Na 2 HPO 4, 1,46 mM KH 2 PO 4, pH 7.4
Siringa Hamilton 80208 30 gauge, 0,375 "lunghezza, stile, punto 2,

Riferimenti

  1. Bintrim, S. B., Ensign, J. C. Insertional inactivation of genes encoding the crystalline inclusion proteins of Photorhabdus luminescens results in mutants with pleiotropic phenotypes. J. Bacteriol. 180, 1261-1269 (1998).
  2. Schesser, J. H., Kramer, K. J., Bulla, L. A.

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Valutazione della virulenza battericaMetodo di iniezione direttaIniezione nell emoceloMonitoraggio della mortalit degli insettiAnalisi della patogenesi battericaSpecie di Xenorhabdus e PhotorhabdusTest di batteri entomopatogeniProtocollo di allevamento larvaleUnit formanti colonie

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