1. Rimozione del tratto genitale
- Eutanasia il mouse secondo le linee guida approvate. Fai incisione bassa linea mediana e ritrarre la pelle.
- Isolare e rimuovere tutto tratto genitale, da ovidotto all'apertura vaginale.
- Aprire l'intero tratto longitudinale con le forbici.
- Tagliare il tratto genitale con belle forbici chirurgiche in pezzi sottili (circa <1 mm) in una capsula di Petri con RPMI-10/EDTA completa (vedere la formula di seguito) e mescolare il tessuto in 125 ml matraccio a temperatura ambiente su un agitatore magnetico fissato per 15 min. Questa procedura viene ripetuta due volte e poi il surnatante, che contiene epitelio e altri detriti, viene scartato.
- Versare il contenuto del matraccio attraverso un colino cellula (40μm). Lavare i residui EDTA con terreno completo.
Completa RPMI/10: 500 ml RPMI (Gibco), 10% di siero fetale bovino (FBS), inattivato al calore, 5 ml di penicillina / streptomicina, 5 ml 1M HEPES.
Completa RPMI-10/EDTA: 10% RPMI (come sopra) con E 5 micronDTA
2. La digestione dei tessuti del tratto genitale
- Trasferire pezzi di tessuto in un pallone nuovo con 20 ml RPMI-10/collagenase fresco (vedi ricetta sotto) e digerire il tessuto a 37 ° C per 1 ora su un agitatore magnetico impostato agitare energicamente il tessuto.
Completa RPMI-10/collagenase: Giusto prima dell'uso, ricostituire collagenasi di tipo VIII (Sigma; conservare a -20 ° C, o secondo le istruzioni del produttore.), Aggiungere nel RPMI/10 completa ad una concentrazione finale di 450-500U/ml. - Dopo la prima digestione, raccogliere surnatanti con filtro da 100 micron delle cellule, mantenere le cellule in ghiaccio.
- Trasferire il tessuto non digerito in un pallone nuovo e ripetere il punto 2,1 per altre due volte utilizzando fresco RPMI-10/collagenase completo per un totale di 3 digestioni separate. A questo punto, non visibili pezzi di tessuto devono essere in soluzione.
- Piscina tutti i surnatanti insieme da un campione e raccogliere con filtro da 100 micron cella. Gira la cElls verso il basso. Pellet cellulari saranno separati utilizzando gradienti Percoll.
3. Separare le cellule del tratto genitale con gradienti Percoll
- Preparare ciascuna concentrazione di Percoll prima dell'uso:
- 100% isotonica Percoll: mix 9:01 magazzino Percoll (Pharmacia BiOTCH) vs 10x PBS. pH a 7,4 utilizzando HCl.
- Percoll soluzione al 40%: miscelare 40 ml di Percoll isotonico 100% e 60 ml di RPMI completo.
- Percoll soluzione al 70%: miscelare 70 ml del 100% Percoll isotonico con 30 ml di RPMI completo.
- Risospendere ogni pellet di cellule dal punto 6 in soluzioni Percoll 40%. Un volume uguale di Percoll 70% sarà utilizzato per fare i gradienti. Ci sono due modi per impostare i tubi di gradiente:
- Under-strato: aggiungi sospensione cellulare con il 40% in un tubo Percoll primo gradiente, poi accuratamente sotto-strato Percoll 70%.
- Over-strato: aggiungere 70% Percoll nel tubo, poi lentamente e con cautela carico massimo di 40% Percoll contenente le celle deltop.
- Gradiente campioni saranno centrifugati @ 900 xg, temperatura ambiente, per 20 minuti con il freno.
- I linfociti saranno al livello di interfaccia tra il 40% e strati di Percoll 70%. Cautela raccogliere il livello di interfaccia, lavare con RPMI 1:3 e spin down a 740 xg. I linfociti saranno nel pellet cellulare e sono pronti per un ulteriore uso.
4. Risultati rappresentativi
Un esempio di isolamento dei linfociti di topo tratto genitale e citometria a flusso (FACS) analisi è illustrato nella figura 1. Tratto genitale è stato rimosso da Chlamydia muridarum intravaginale del mouse infettato 7 giorni dopo l'infezione. Due vie genitali sono stati raggruppati insieme in modo da avere linfociti sufficienti per esame funzionale e fenotipo mediante FACS. Tessuti sezionati sono stati trattati con la digestione e passaggi di isolamento come descritto sopra. La sospensione singola cellula è stato colorato per vari fluorocromo coniugatoanticorpi monoclonali contro CD3 del mouse, CD4 e CD8. La figura 1 mostra una dot-plot presentazione di cellule CD4 positive T contro le cellule T CD8 positivi gate sui linfociti T CD3 positivi. La nostra procedura in grado di esaminare i linfociti isolati da vie genitali di modelli di malattia diversi per valutare diverse caratteristiche funzionali delle cellule immunitarie e fenotipica in malattie diverse in modello murino. Questi includono diverse cellule immunitarie, come le cellule dendritiche, macrofagi, neutrofili NK, NKT, cellule T (Ag-specifiche cellule T), cellule B ecc 3-10.

Linfociti Figura 1. Sono stati isolati dal tratto genitale di topi infettati con Chlamydia muridarum, utilizzando il metodo qui presentato. Dopo la procedura di separazione completa, i linfociti sono stati colorati con fluorocromi coniugati CD3, CD4 e CD8. I dati erano quadrante gate sui linfociti CD3 +,mostrando CD4 + CD8 + con rispetto e la percentuale di cellule chiuse.