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Articolo metodologico

Stimolazione Optogenetic del comportamento in Fuga

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DOI:

10.3791/50192

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25 gennaio 2013

In questo articolo

Sommario

Strumenti optogenetic geneticamente codificati consentono la manipolazione non invasiva dei neuroni specifici del Drosophila Cervello. Tali strumenti in grado di identificare i neuroni la cui attivazione è sufficiente per scatenare o sopprimere comportamenti particolari. Qui vi presentiamo un metodo per l'attivazione Channelrhodopsin2 che si esprime nei neuroni mirate a mosche liberamente a piedi.

Abstract

Un numero crescente di strumenti geneticamente codificati sono sempre a disposizione che permettono la manipolazione non invasiva dell'attività neurale dei neuroni specifici in Drosophila melanogaster 1. Primo fra questi sono strumenti optogenetic, che consentono l'attivazione o silenziamento dei neuroni specifici nel intatta di un animale e muoversi liberamente con la luce brillante. Channelrhodopsin (CHR2) è un fotoattivabile canale cationico che, attivato dalla luce blu, provoca depolarizzazione dei neuroni che lo esprimono. CHR2 è stato efficace per identificare i neuroni critiche per comportamenti specifici, come ad esempio evitare di CO 2, l'estensione proboscide e gigante in fibra di risposte di allarme mediata 2-4. Tuttavia, poiché le sorgenti luminose utilizzate per stimolare CHR2 anche stimolare fotorecettori, queste tecniche optogenetic non sono stati precedentemente utilizzati nel sistema visivo. Qui, uniamo un approccio optogenetic con una mutazione che altera fototrasduzione a demonstrate che l'attivazione di un gruppo di telaio sensibili neuroni nel lobo ottico della mosca, FOMA-1 neuroni, può guidare un comportamento di fuga utilizzato per evitare la collisione. Abbiamo utilizzato un allele nullo di un componente critico della cascata phototransduction, fosfolipasi C-β, codificata dal gene norpA, per rendere l'aria cieco e anche usare la Gal4-UAS sistema attivatore trascrizionale per guidare l'espressione del CHR2 in Foma-1 neuroni. Mosche individuali sono posto su una piccola piattaforma circondata da LED blu. Quando i LED sono illuminati, le mosche rapidamente decollo in volo, in un modo simile a quello visivo guidato telaio-escape comportamento. Riteniamo che questa tecnica può essere facilmente adattato per esaminare altri comportamenti liberi di muoversi in mosche.

Introduzione

Un arsenale crescente di strumenti geneticamente codificati sono stati sviluppati per manipolare attività neurale in cellule specifiche in Drosophila melanogaster 1. Questi strumenti consentono l'attivazione non invasiva o silenziamento di neuroni specifici nel intatta di un animale e liberi di muoversi. Tra questi, Channelrhodopsin2 (CHR2), un fotoattivabile canale cationico, offre vantaggi, poiché può essere controllata temporalmente e rapidamente indotta. Quando i neuroni che esprimono CHR2 esposti a brillante blu (470 nm), luce che rapidamente depolarizzare e presentano elevati tassi di cottura 3-5. Tale attivazione mirata dei n....

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Protocollo

1. Genera mosche channelrhodopsin

  1. Croce UAS-CHR2 mosche con il driver Gal4 di vostra scelta, usiamo G105-Gal4, che si esprime in foma-1 neuroni nel lobo ottico.
  2. Per eliminare la possibilità di una risposta alla stimolazione visiva luce blu, entrambe le linee mosca sono in aw sfondo + norpA.
  3. Risultato finale: w + norpA; G105-Gal4/UAS-ChR2 +
  4. Dopo adulto vola Eclose, messo femmine selezionati alimenti freschi, integrata con 10 pM tutto-trans-retiniche (un co-fattore necessario per CHR2) e al riparo dalla luce, per 3 giorni prima di eseguire il test del comportamento.

2. Prova....

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Risultati

Cieco vola che ha espresso CHR2 o il G105 solo conducente mostrano un basso tasso di decollo in seguito alla loro illuminazione con la luce blu. Cieco vola esposto lo stesso tasso di decollo senza illuminazione (Figura 2), suggerendo che i decolli erano spontanei, piuttosto che a causa della illuminazione con luce blu. Quando il CHR2 è espresso nelle FOMA1 neuroni, tuttavia, illuminazione con luce blu suscita la risposta di fuga. Oltre il 50% delle mosche testati tolse entro 1 secondo di illuminazione, .......

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Discussione

Abbiamo dimostrato la stimolazione optogenetic di comportamenti di fuga da bagno liberamente a piedi mosche in brillante luce blu. Questo approccio può essere facilmente adattato ad esaminare altri comportamenti nelle mosche liberamente a piedi, e può essere scalata a grandi piattaforme semplicemente le piastrelle array di LED che abbiamo usato su un'area più grande. Utilizzando la telecamera a basso costo descriviamo, o altri sistemi di telecamere disponibili, l'utente può personalizzare il frame rate e r.......

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato finanziato da una borsa di studio della Stanford Dean (SEJdV), il National Institutes of Pioneer Award Direttore Salute (TRC DP0035350), un premio McKnight Foundation studioso (TRC) e R01 EY022638 (TRC).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Reagente
All-trans retinico Advance Scientific & Chemical Inc R3041
Attrezzatura
Dissipatore di calore 9,2 C / W Luxeonstar LPD30-30B 30 mm quadrati X 30 mm
Carclo 18 ° Tri-Lens Luxeonstar 10507
Rebel LED blu su Tri-Star Base Luxeonstar MR-B0030-20T 470 nm, 174 lm @ 700 mA.
700 mA DC BuckPuck driver Luxeonstar 3021-DE-700
Cablaggio per il driver BuckPuck Luxeonstar 3021-HE
Pre-taglio del nastro adesivo termico Luxeonstar LXT-S-12 20 Base mm Hex
Snap-Loc tubo del liquido di raffreddamento, ¼ "ID McMaster-Carr 5307K49
Snap-Loc Connettore tubo del liquido di raffreddamento McMaster-Carr 5307K39 ¼ "NPT maschio
Laboratorio di grado Switching programmabile Alimentazione DC BK Precision 1698
Exilim fotocamera Casio EX-FH20

Riferimenti

  1. Venken, K., Simpson, J., Bellen, H. Genetic manipulations of genes and cells in the nervous system of the fruit fly. Neuron. 72, 202-230 (2011).
  2. Gordon, M., Scott, K. Motor control in a Drosophila taste circuit. Neuron. 61, 373-384 (2009).
  3. Suh, G. S. B., et al.

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Ristampe e permessi

Tag

Canalrodopsina ChR2neuroni Foma-1mutazione NorpAilluminazione a LED blusaggio di inizio del volosistema Gal4-UASall-trans retinale