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Articolo metodologico

Marcatura metabolica di RNA recentemente trascritto per Alta Risoluzione profili di espressione genica di RNA di sintesi, trattamento e Decay in coltura cellulare

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DOI:

10.3791/50195

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8 agosto 2013

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* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

L'RNA cellulare totale fornisce un modello povero per studiare variazioni a breve termine in sintesi dell'RNA e il decadimento nonché la cinetica di RNA processing. Qui, descriviamo marcatura metabolica di RNA trascritto recente con 4 thiouridine seguito da biotinylation tiolo-specifica e purificazione dell'RNA trascritto appena consentano di superare queste limitazioni.

Abstract

Lo sviluppo di microarrays intero trascrittoma e sequenziamento di nuova generazione ha rivoluzionato la nostra comprensione della complessità di espressione genica cellulare. Insieme a una migliore comprensione dei meccanismi molecolari coinvolti, misure precise della cinetica sottostanti sono diventati sempre più importanti. Qui, questi potenti metodologie incontrano notevoli limitazioni dovute alle proprietà intrinseche dei campioni template studiano, cioè RNA cellulare totale. In molti casi cambiamenti RNA cellulare totale verificano o troppo lentamente o troppo velocemente per rappresentare gli eventi molecolari sottostanti e la loro cinetica con risoluzione sufficiente. Inoltre, il contributo delle alterazioni della sintesi dell'RNA, elaborazione e decadimento non sono facilmente differenziate.

Recentemente abbiamo sviluppato ad alta risoluzione-profili di espressione genica di superare queste limitazioni. Il nostro approccio si basa sulla marcatura metabolica di nuova RNA trascritto con 4 thiouridine (quindi anche denominato 4SU-tagging) seguita da una rigorosa purificazione dell'RNA trascritto recente utilizzando biotinylation tiolo-specifici e biglie magnetiche rivestite di streptavidina. È applicabile ad una vasta gamma di organismi vertebrati, compresi Drosophila e lieviti. Abbiamo applicato con successo 4SU-tagging per studiare la cinetica in tempo reale delle attività di fattore di trascrizione, di fornire misure precise di RNA emivita, e ottenere nuove informazioni sulle cinetiche di trasformazione dell'RNA. Infine, modellazione computazionale può essere impiegato per generare un, analisi completa integrata dei meccanismi molecolari sottostanti.

Introduzione

Profili di espressione genica è uno strumento chiave utilizzata per lo studio dei processi cellulari e la rete associata complessa interazione. Studi su mRNA abbondanza sono stati in genere il metodo di scelta per ottenere intuizioni fondamentali sui meccanismi molecolari sottostanti. Lo sviluppo di microarrays intero trascrittoma-1 e, più recentemente, di sequenziamento di nuova generazione di RNA (RNA-Seq) 2-4 alimentato questo approccio. Mentre queste tecnologie hanno rivoluzionato la nostra comprensione della complessità di espressione genica cellulare, si trovano ad affrontare gravi limitazioni dovute alle proprietà intrinseche delle loro c....

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Protocollo

1. Marcatura metabolica con 4 thiouridine

Fare un piano dettagliato del setup sperimentale / programma, ad esempio, quando aggiungere il 4SU di coltura cellulare e quando raccogliere i campioni. Piano per almeno 5 minuti tra ogni condizione. Solo il trattamento di cellule di una condizione alla volta. Maneggiare max. 3-5 piatti in un dato momento. Maneggiare le cellule più rapidamente possibile per ridurre al minimo i cambiamenti di temperatura e livelli di CO 2. Evitare di esporre le cellule alla luce dopo 4SU viene aggiunto in quanto ciò potrebbe causare la reticolazione di RNA 4SU-etichettati per le proteine ​​cellula....

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Risultati

1. Materiale di partenza e di rendimenti attesi

A seguito di 1 ora (ora) di 4SU-esposizione appena trascritto RNA rappresenta circa il 1-4% del totale RNA cellulare. Questa sarà la più bassa in cellule di crescita-arrestati in quanto sintetizzano più RNA per conto per la crescita cellulare / replica. Quando l'etichettatura per 1 ora, si consiglia di iniziare il test con 60 - 80 mg di RNA totale. Partendo con meno di 30 microgrammi di RNA totale risultati in piccoli pellet di RNA che sono di.......

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Discussione

Marcatura metabolica di nuova trascritto RNA aumenta sensibilmente la potenza delle tecnologie high-throughput, come microarrays e RNA-Seq fornendo modelli più adeguati per affrontare la questione biologica di interesse. Il presente protocollo ha subito ottimizzazione vasta. Permette> 1.000 volte arricchimento di RNA appena trascritto e fornisce risultati altamente riproducibili.

Il disegno sperimentale di un esperimento 4SU-tagging è di importanza cruciale come RNA trascritto appena si r.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Ringraziamenti

Vorremmo ringraziare Amie Regan per un'attenta lettura del manoscritto. Questo lavoro è stato sostenuto da NGFN Inoltre concessione # 01GS0801, MRC comunione concessione G1002523 e NHSBT concessione WP11-05 al LD ​​e DFG concessione FR2938/1-1 alla CCF

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
4-tiouridinaCarbosynthT4509Preparare 50 mM di stock in H2O, conservare a -20 ° C in aliquote da 50-500 μ l, gettare il reagente non utilizzato, non ricongelare.
TrizolInvitrogen15596026 (100 ml), 15596018 (200 ml)AVVERTENZA - CORROSIVO e PERICOLOSO PER LA SALUTE! Garantire l'accesso immediato all'antidoto fenolico (PEG-Metanolo); Conservare a 4 °C.
CloroformioSigma372978AVVERTENZA - PERICOLOSO PER LA SALUTE
IsopropanoloSigma650447
Citrato di sodio, senza nucleasiSigmaC8532Preparare una soluzione madre 1,6 M utilizzando acqua priva di nucleasi.
5M NaCl Sigma71386Soluzione madre
H2O senza nucleasiSigmaW4502Produrre aliquote da 1 ml in provette prive di nucleasi.
di precipitazione dell'RNA1,2 M NaCl, 0,8 M citrato di sodio in acqua priva di nucleasi. Preparare in anticipo in condizioni rigorosamente prive di nucleasi. Conservare a temperatura ambiente in provette falcon da 50 ml.
EtanoloSigma459844Utilizzare con acqua priva di nucleasi per preparare etanolo all'80%, conservare a -20 °C.
1 M Tris Cl privo di nucleasi, pH 7,5Lonza51237Soluzione madre
500 mM EDTA senza nucleasi, pH 8,0Invitrogen15575-020Soluzione madre
10x Tampone di biotinilazione (BB)100 mM Tris pH 7,4, 10 mM EDTA in acqua priva di nucleasi, fare aliquote da 1 ml.
Dimetilformammide (DMF)SigmaD4551
EZ-Link biotina-HPDPPierce21341Preparare 1 mg/ml di soluzione madre sciogliendo 50 mg di biotina-HPDP in 50 ml di DMF. Il riscaldamento delicato migliora la solubilizzazione. Conservare a 4 gradi C in aliquote da 1 ml.
Phase Lock Gel Heavy tubes 2,0 mlEppendorf0032 005.152Opzionale per la fase di estrazione del cloroformio.
Membrana ZetaBIORAD162-0153
10x Tampone100 mM NaOH, 10 mM EDTA
Biotina-oligo5'-biotina, 25 nucleotidi, qualsiasi sequenza
Sodio dodecil solfatoFisherBPE9738Per 100 ml di soluzione madre al 20%, aggiungere 20 g di SDS a 80 ml di PBS pH 7-8 e regolare il volume a 100 ml. Mantenere tutte le soluzioni SDS ad alta percentuale al di sopra di 20 °C. Caldo le soluzioni leggermente dovrebbero precipitare SDS.
EZ-Link Iodoacetyl-LC-BiotinPierce21333Preparare 1 mg/ml di soluzione madre sciogliendo 50 mg di iodoacetil-biotina in 50 ml di DMF. Il riscaldamento delicato migliora la solubilizzazione. Conservare a 4 gradi C in aliquote da 1 ml. Genera una biotinilazione irreversibile e specifica per i tioli.
Soluzione salina tampone fosfatoGibco10010-015
Tampone bloccanteMiscelare 20 ml 20% SDS con 20 ml 1 x PBS pH 7-8 e aggiungere EDTA alla concentrazione finale di 1 mM.
Streptavidina-rafano perossidasi Vector LaboratoriesSA5004Conservare a -20 °C. Mescolare 10 ml 20% SDS con 10 ml 1 x PBS. Aggiungi 20 μ l. Streptavidina-HRP prima dell'uso.
Reagente ECLGE HealthcareRNP2109Utilizzare seguendo le istruzioni del produttore.
Pellicola Super RX, X-RA, 18x24 cmFujifilm47410 19236
μ Macs Streptavidin KitMiltenyi130-074-101Conservare le perline a 4 °C.
Tween 20SigmaP1379
Tampone100 mM Tris pH 7,4, 10 mM EDTA, 1 M NaCl, 0,1% Tween 20 in H2O privo di nucleasi.
Ditiotreitolo (DTT)Sigma43817Preparare come 100 mM di DTT in H2O senza nucleasi, preparare sempre fresco prima dell'uso.
RNeasy MinElute KitQiagen74204Memorizza colonne a 4 gradi C, componenti rimanenti del kit a temperatura ambiente.
Provette in polipropilene con tappo a vite da 1,5 mlSarstedt72.692.005Compatibile con Dimetilformammide
Tubi in polipropilene con tappo a vite da 2,0 mlSarstedt72.694.005Compatibile con Dimetilformammide
Provette da 15 mlBD Falcon352096Compatibile con Dimetilformammide
Provette da 50 mlBD Falcon352070Compatibile con Dimetilformammide
Tutte le soluzioni/reagenti devono essere conservati a temperatura ambiente se non diversamente specificato.
Equipment
Spettrofotometro UV/VISThermo ScientificNanoDrop 1000O equivalente. Utilizzare un volume basso (1-2 μ l) per misure di basse concentrazioni di RNA per evitare un'eccessiva perdita di campione.
Provette da centrifuga in polipropilene da 15 mlVWR International525-0153A differenza delle provette standard da 15 ml, tollerano fino a 15.000 × g
Centrifuga ad alta velocitàBeckman CoulterAvanti J-25O apparecchiature equivalenti in grado di raggiungere i 13.000× g
Rotore ad alta velocitàBeckman CoulterJLA-16250O attrezzatura equivalente in grado di raggiungere 13.000× g
Adattatori per provette da 15 mlLaborgerä te Beranek356964O apparecchiature equivalenti in grado di raggiungere 13.000× g
Centrifuga da tavolo refrigerataEppendorf5430 RO equivalente.
ThermomixerEppendorfThermomixer compactO equivalente.
Supporto magneticoMiltenyi Biotec130-042-109Un supporto contiene 8 persone μ Colonne Mac.
Concessione per bagnomariaSUB Aqua 5o equivalente.
Scala ultrafineA& DGR-202O equivalente.
E-Gel iBase Power SystemInvitrogenG6400UKPer gel di RNA; o equivalente.
E-Gel EX 1% agarosio gel prefabbricatiInvitrogenG4020-01Per gel di RNA; o equivalente.
senza nucleasi Tampone legante il dot blot dot blot di lavaggio

Riferimenti

  1. Brown, P. O., Botstein, D. Exploring the new world of the genome with DNA microarrays. Nature Genetics. 21, 33-37 (1999).
  2. Mortazavi, A., Williams, B. A., Mccue, K., Schaeffer, L., Wold, B. Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq. Nature Methods. 5

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