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Articolo metodologico

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DOI:

10.3791/50688

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7 agosto 2013

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1Pharmacology and Toxicology, Virginia Commonwealth University, 2Physiology and Biophyics, Virginia Commonwealth University

In questo articolo

Sommario

Dimostriamo un protocollo di coltura cellulare per lo studio diretto dei componenti neuronali e gliali del sistema nervoso enterico. Un neurone / cultura mista glia su vetrini è preparato dal plesso mienterico di topo adulto fornendo la possibilità di esaminare singolo neurone e la funzione glia di elettrofisiologia, immunoistochimica, Ecc.

Abstract

Il sistema nervoso enterico è una vasta rete di neuroni e glia funzionare la lunghezza del tratto gastrointestinale che controlla funzionalmente motilità gastrointestinale. Una procedura per l'isolamento e la coltura di una popolazione mista di neuroni e glia dal plesso mienterico è descritto. Le colture primarie possono essere mantenuti per più di 7 giorni con connessioni di sviluppo tra i neuroni e glia. La striscia di muscolo longitudinale con l'allegata mienterico plesso è spogliato dal muscolo circolare sottostante dell'ileo mouse o del colon e sottoposto a digestione enzimatica. In condizioni di sterilità, l'isolata popolazione neuronale e gliale sono conservati all'interno del seguente centrifugazione pellet e placcato su vetrini. Entro 24-48 ore, si verifica crescita dei neuriti e neuroni può essere identificato da marcatori pan-neuronale. Dopo due giorni di cultura, isolati neuroni potenziali d'azione di fuoco, come osservato da studi di patch clamp. Inoltre, glia enterica può anche essere indicanied di GFAP colorazione. Una rete di neuroni e glia in stretta apposizione forma entro 5 - 7 giorni. Neuroni enterici possono essere individualmente e direttamente studiati utilizzando metodi come l'immunoistochimica, elettrofisiologia, imaging del calcio, e la PCR singola cellula. Inoltre, questa procedura può essere eseguita in animali geneticamente modificati. Questa metodologia è semplice da eseguire e poco costoso. Nel complesso, questo protocollo espone i componenti del sistema nervoso enterico in modo facilmente manipolata in modo da poter meglio scoprire la funzionalità del ENS in stati normali e malattie.

Introduzione

Il sistema nervoso enterico (ENS) è vasta rete di nervi e glia che corre per tutta la lunghezza del tratto gastrointestinale (GI). L'ENS controlla funzionalmente tutti gli aspetti della digestione, tra cui la peristalsi, l'assorbimento di liquidi / secrezione, sensazione di stimoli, ecc (per una rassegna vedi 1). Esso contiene oltre 500 milioni di neuroni, più che trovato nel midollo spinale, e contiene ogni classe neurotrasmettitore presente nel cervello. Inoltre, l'ENS è unico in quanto può funzionare senza riflesso input dal sistema nervoso centrale 2. Comprensione della ENS è cruciale, non solo per capire il suo normale ruolo fisiologico, ma per capire il suo coinvolgimento in una varietà di neuropatie che può essere congenito (malattia di Hirschsprung), acquisita (Chagas), secondaria a condizioni di malattia (gastroparesi diabetica), farmaco indotta (sindrome dell'intestino oppiacei), oppure a causa di un infortunio (ileo postoperatorio) 1. Inoltre, i neuroni enterici possono essere un reservoir per infezioni virali (varicella zoster) 3. A causa delle sue somiglianze con il cervello e gli alti livelli di serotonina nell'intestino, i farmaci volti a curare i difetti del sistema nervoso centrale spesso hanno effetti collaterali indesiderati sul ENS 2. Si osserva inoltre che molte neuropatie come il morbo di Alzheimer e morbo di Parkinson mostrano cambiamenti cellulari simili nei neuroni enterici lunghi prima della loro comparsa in neuroni centrali, rendendo l'ENS un modello accessibile per studiare la patogenesi di queste malattie 4. Pertanto, una conoscenza approfondita della ENS è una necessità nel capire gli stati di malattia e la prevenzione / predire gli effetti collaterali farmacologici.

I neuroni del ENS sono stati tradizionalmente studiati nella cavia utilizzando preparati wholemount 5-7 o neuroni in coltura 8. Nonostante la facilità con cui i neuroni possono essere studiate in questo grande animale, questo modello ha molti limiti compresimancanza di ceppi geneticamente modificati, la mancanza di reagenti specifici per questa specie, e l'alto costo associato con l'ordinazione e che ospita questi soggetti. Lo sviluppo di un modello di sistema nervoso enterico murino ha il vantaggio unico di vari sistemi knock out, una vasta gamma di altre metodologie consolidate che possono essere utilizzati in combinazione con la tecnica di coltura cellulare, e la capacità di fornire una convalida per il modello cavia .

L'ENS è contenuto tre plessi che corrono la lunghezza del tratto gastrointestinale: l'esterno myenteric plesso (tra il muscolo longitudinale e circolare) che è principalmente responsabile per le azioni peristaltici dell'intestino, così come la mucosa e della sottomucosa plessi, ( trovato sotto e all'interno della mucosa, rispettivamente) che controlla in gran parte l'assorbimento di liquidi / secrezione e il rilevamento di uno stimolo. Questo metodo inizia con l'isolamento del plesso (LMMP) preparazione muscolare / myenteric longitudinale mediante pelaturalo strato muscolare esterno del tratto GI. Questo riduce drasticamente il problema della contaminazione che sorgono quando lo strato di mucosa è coinvolta nel isolamento. Come risultato, questo processo è ideale per lo studio del controllo della motilità neuronale piuttosto che azioni secretori della ENS.

Il metodo qui presentato risultati in una coltura mista dei neuroni enterici e glia. Almeno due diversi tipi di neuroni sono basate presenti sulle precedenti osservazioni elettrofisiologiche e immunocitochimica 9. La presenza di cellule gliali è estremamente vantaggiosa, in quanto non sono solo un tipo di cellula importante studiare nel loro diritto, ma contribuiscono alla sopravvivenza dei neuroni enterici 10 e di mantenere l'espressione del recettore nativo sulla superficie delle cellule neuronali 11. Inoltre, carenze di glia enterica possono portare ad anomalie della motilità gastrointestinale stati di malattia, coniato 12 'neuro-gliopathies'. Pertanto, la cultura ENS presentata qui risultati in diversi tipi di cellule che sono maturi per le indagini.

I vantaggi di questo metodo sono la facilità di isolamento, i requisiti di strumento poco costoso, e un breve periodo di tempo per padroneggiare la tecnica da parte di personale di laboratorio con esperienza. Limitazioni della metodologia includono bassa resa cella complessiva da elevati volumi di tessuto e l'esclusione dei neuroni dell'ENS di plexi mucosa e sottomucosa. Questa procedura sarà molto vantaggioso per gli studiosi specializzati in elettrofisiologia, immunoistochimica, PCR singola cellula, e altre metodologie.

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Protocollo

Tutto cura degli animali e le procedure sperimentali sono stati in conformità con e approvati dalla cura degli animali e del Comitato Istituzionale Usa presso la Virginia Commonwealth University.

1. Preparazione di sterili vetrini poli-D-lisina e laminina-rivestite in piastre da 24 pozzetti

  1. Tutte le procedure di passaggio 1 sono eseguite in condizioni sterili, sotto cappa, e con reagenti sterili. Vetrini e doppia acqua deionizzata (DDH 2 O) devono essere sterilizzati in anticipo. Preparazione delle lastre può essere fatto fino a due settimane prima dell'isolamento neurone.
  2. Sotto il cofano, utilizzare pinze sterili per posizionare vetrini autoclave a 12 pozzetti di una piastra a 24 pozzetti.
  3. Preparare azione poli-D-lisina prima del tempo. Aggiungere 50 ml di ddH2O sterile a 5 mg di poli-D-lisina. Vortex e conservare in 3 ml aliquote a -20 ° C. Scongelare aliquote prima dell'uso.
  4. Per una concentrazione finale di 1 ml di brodo di poli-D-lisina ogni 25 cm 2: pipetta 80 microlitridi azione poli-D-lisina in cima ad ogni vetrino vetro (2 cm 2). Lasciare riposare la soluzione per 10 minuti.
  5. Rimuovere poli-D-lisina usando il vuoto e sciacquare coprioggetto 3x con sterile DDH 2 O.
  6. Lasciare le piastre ad asciugare per almeno 2 ore sotto il cofano.
  7. Piastre possono essere conservati a 4 ° C o - 20 ° C prima di procedere al rivestimento laminina.
  8. Preparare laminina magazzino prima del tempo. Scongelare laminina su ghiaccio e tenere in ghiaccio durante l'uso. Diluire ad una concentrazione di 50 ug / ml; prestare attenzione alla concentrazione lot; ogni lotto sarà diverso. A seconda della concentrazione molto, circa 20 ml di DDH 2 O sarà aggiunto ad ogni flacone di laminina. Aliquota (5 ml) e conservare a -80 ° C. Scongelare aliquote sul ghiaccio prima dell'uso.
  9. Coprioggetto Cappotto con 5 mg / cm 2 laminina; pipetta 200 ml di magazzino laminina su ogni vetrino.
  10. Incubare soluzione laminina su vetrini per 1 ora.
  11. Aspirare rimanente soluzione laminina e risciacquare coprioggetto una volta conDDH 2 O. Evitare di raschiare superficie del coprioggetto.
  12. Conservare le piastre a 4 ° C per un massimo di due settimane.

2. Preparazione anticipo di Neuron Isolation Solutions

  1. Preparare la soluzione di Krebs (in mM: 118 NaCl, 4.6 KCl, 1.3 NaH 2 PO 4, 1.2 MgSO4, 25 NaHCO 3, 11 di glucosio, e 2,5 CaCl 2). Luogo 13,79 g di NaCl (FW 58.44), 0,686 g di KCl (FW 74.55), 0,312 g NaH 2 PO 4 (FW 120), .289 g MgSO4 (FW 120,4), 4,20 g NaHCO3 (FW 84.01), 3,96 g di glucosio (FW 180,2), e 0,555 g di CaCl 2 (FW 111) in 2 L DDH 2 0. Raffreddare a 4 ° C.
  2. Preparare sciacquare i media (F12 media con il 10% di siero fetale bovino (FBS) e antibiotico / antimicotico): Per una bottiglia da 500 ml di F12 media, aggiungere 50 ml di FBS e 5 ml di antibiotico / antimicotica Liquid 100x (Gibco).
  3. Preparare enterico neurone multimediale (Neurobasal Un supporto con B-27, 2 mM L-glutammina, 1% FBS, 10 ng / ml, Glial Neurotr DerivatoFattore ophic (GDNF), e antibiotica / antimicotica Liquid 100x). Per rendere GDNF magazzino, aggiungere 1 ml ddH2O a 10 mcg GDNF e congelare di nuovo in aliquote di 50 microlitri, conservare a -80 ° C. Per un ml fiala di supporto dei neuroni completi 50, combinare 47,5 ml Neurobasal Un supporto, 1 ml di B-27 (50x), 500 ml di FBS, 500 microlitri 200 mM L-glutammina (Gibco) 50 microlitri magazzino GDNF e 500 microlitri antibiotici / antimicotico Liquid 100x. Supporto è realizzato in piccoli lotti 50 ml per assicurare freschezza di GDNF e per evitare la contaminazione di grandi quantità di questa miscela costosi supporti cella.

3. Harvest longitudinale del muscolo / plesso mienterico (LMMP) Preparazione di topi

  1. Etici nazionali e istituzionali dovrebbero essere a posto prima di effettuare esperimenti su animali. Adulti svizzeri Webster topi di peso superiore a 25 g (in genere più di 8 settimane di età) sono alloggiati in gruppi di 6 prima di esperimenti. I tessuti di due topi sono utilizzati per l'isolamento dei neuroni enterici ileali e glia e tre topi sono utilizzati perisolamento di cellule del colon.
  2. Preparare area chirurgica. Raccogliere piccole forbici chirurgiche, pinze angolate, tamponi di cotone, tre bicchieri di vetro 200 ml, e una bacchetta di vetro / plastica (pennello). Assicurarsi che tutte le forniture vengono accuratamente lavati e risciacquati prima di utilizzare per ridurre al minimo la contaminazione. Questa fase può essere eseguita il giorno prima dell'esperimento.
  3. Collocare soluzione di Krebs su ghiaccio e bolla con carbogeno (95% di ossigeno, 5% CO 2) per almeno 30 minuti per stabilizzare il pH.
  4. Accendere varie attrezzature e prodotti chimici caldi per stabilizzarsi a temperature desiderate; bagnomaria caldo (s) a 37 ° C, centrifuga raffreddare a 4 ° C, luogo soluzione salina bilanciata di Hank (HBSS) e il 0,5% tripsina a bagnomaria (37 ° C ). Supporti neurone completi e risciacquare media dovrebbero rimanere refrigerato.
  5. Posto 150 ml di ghiaccio freddo gorgogliare Krebs in tre bicchieri di vetro 200 ml etichettate 'sporco', 'pulito', e 'LMMP'. Coppa Bubble etichettato 'LMMP' con CARBOGEN.
  6. A seguito di approvazione da parte del comitato etico, eutanasia mouse per dislocazione cervicale o CO 2 asfissia.
  7. Posizionare il mouse in recumbence dorsale sulla superficie chirurgica, pelle pulita con il 70% EtOH, e sollevare la pelle addominale con pinze. Utilizzando le forbici, cavità addominale aperta e rivelare organi digestivi interni.
  8. Rimuovere la lunghezza del tratto gastrointestinale sollevando una sezione di ileo e rivelando il suo mesentere. Snip attraverso mesentere con le forbici per rimuovere delicatamente e svelare ileo e colon, facendo attenzione a non tirare dal mesentere dell'ileo / colon.
  9. Dopo la lunghezza dell'intestino viene dispiegato, rimuovere l'ileo tagliando attraverso l'intestino distale allo stomaco e prossimale al cieco. Nota: questa procedura può anche essere eseguita con tessuto colico rimuovendo il colon da distale a cieco al prossimale l'ano.
  10. I tessuti possono essere ulteriormente suddivisi tra colon prossimale e distale, e jejenum, e ileo. Il resto di questa procedura farà riferimento all'isolamento dell'ileo; tegli procedura è la stessa per l'isolamento di LMMP colon. Porre l'intero ileo in un contenitore di vetro con ghiaccio freddo Krebs segnato 'sporca'.
  11. Creare uno strumento per pulire l'ileo, smussato un grosso ago 20 G con una pietra deposito e collegarlo a una grossa siringa (10 ml) contenente ghiaccio freddo Krebs.
  12. Pulire materia fecale dal ileo sezionando l'ileo in tre o più pezzi di grandi dimensioni. Rimuovere una sezione ileale dal bicchiere e posizionare l'ago smussato nell'estremità di un pezzo ileale.
  13. Eseguire delicatamente Krebs attraverso la sezione dell'intestino fino a quando tutta la materia fecale è rimosso in un contenitore dei rifiuti. Posizionare la sezione pulita nel contenitore di Krebs marcato 'pulito'. Ripetere fino a quando tutta l'ileo è pulito.
  14. Per rimuovere il LMMP, tagliare l'ileo in piccoli segmenti, di circa 2-4 cm. Posizionare un segmento di ileo su una bacchetta di vetro o plastica; ileo dovrebbe adattarsi snuggly ma non essere allentato o teso (~ 2 mm). Inizia la rimozione del LMMP rimuovendo delicatamente bit di mesentere ancora attachpostazioni per l'(GI) del tratto gastrointestinale con una pinza. Prevenire il tratto GI di ruotare intorno canna da appuntare delicatamente il tubo per l'asta con il pollice.
  15. Separare il LMMP dal muscolo circolare sottostante; prima strofinare delicatamente il bordo della pinza lungo l'intera linea in cui è stato attaccato il mesentere, da cima a fondo del segmento, creando delicatamente una lacuna nel muscolo longitudinale. Poi stuzzicare delicatamente via il muscolo longitudinale utilizzando un batuffolo di cotone imbevuto di Krebs.
  16. Inizia nella parte superiore del gap nel muscolo longitudinale e stuzzicare distanza utilizzando il più leggero tratto orizzontale mentre si applica una pressione molto leggera finché il muscolo longitudinale comincia soltanto a separare dal muscolo circolare; farlo cadere l'intero striscia sul punto di attacco mesentere.
  17. Poi iniziare delicatamente per aggirare il tubo GI; muovendo dall'alto verso il basso e indietro come il muscolo longitudinale viene lentamente separato dal muscolo circolare tutto intorno al tubo. Al termine, ilLMMP sarà naturalmente venire fuori il resto del tubo GI.
  18. Posizionare la striscia sottile risultante di muscolo longitudinale nel bicchiere marcato 'LMMP'. Ripetere per tutti i segmenti.
  19. Dopo che tutte le strisce di LMMP sono state raccolte da un topo, ripetere la procedura per eventuali altri topi utilizzati. Sciacquare bene i bicchieri 'sporchi' e 'pulito' prima del riutilizzo.
  20. Sciacquare il LMMP 3x per rimuovere la contaminazione biologica. Riempire tre 2 ml provette Eppendorf con ghiaccio freddo Krebs. Mettere le strisce LMMP nella prima provetta e centrifugare per 30 sec a 356 xg in una centrifuga refrigerata a 4 ° C. Rimuovere con attenzione il surnatante con una pipetta e spostare le strisce LMMP al prossimo pulita Krebs tubo pieno. Ripetere questa procedura per ciascun tubo rimanente.

4. Digest LMMP

  1. Preparare la soluzione digestione ponendo 13 mg collagenasi di tipo 2 e 3 mg in 10 ml BSA carbogeno-gorgogliare soluzione di Krebs.
  2. Luogo segmenti di LMMP sciacquato in soluzione di digestione e di uso SICsori desiderate ricavare LMMP in piccoli pezzi.
  3. Digest LMMP per 60 min a 37 ° C in bagno d'acqua con agitatore mentre viene delicatamente gorgogliare carbogeno.
  4. Dopo la digestione è completa, raccogliere le cellule per centrifugazione per 8 min a 356 xg in centrifuga refrigerata a 4 ° C.
  5. Da questo punto in avanti tutte le procedure devono essere eseguite in condizioni sterili in una cappa di coltura cellulare! Tutti i reagenti ei contenitori devono essere sterilizzati prima dell'uso.
  6. Durante la centrifugazione, preparare la soluzione tripsina 0,05% disponendo 1 ml riscaldato 0,25% tripsina e 4 ml di HBSS riscaldato in una provetta sterile da 50 ml di coltura cellulare.
  7. Dopo la centrifugazione, rimuovere e scartare il surnatante. Non utilizzare un vuoto; questo probabilmente aspirare il pellet cellulare dovuto basse velocità di centrifugazione. Rimuovere con attenzione il pellet e il luogo in provetta pulita con 5 ml di soluzione di tripsina 0,05%.
  8. Digerire cellule in soluzione tripsina 0,05% a 37 ° C bagnomaria con agitazione per 7 min. Non superare i 7 min di trattamento tripsina totale o neuroni perirà.
  9. Neutralizzare la tripsina con 10 ml di risciacquo freddo media dopo 7 minuti di trattamento con tripsina.
  10. Centrifugare le cellule per 8 min a 356 x g. Rimuovere ed eliminare i media.
  11. Durante la centrifugazione, bilanciare un tratto di rete Nitex sterilizzato in cima ad una provetta sterile 15 ml di coltura cellulare.
  12. Dopo la centrifugazione, rimuovere e scartare il surnatante. Delicatamente miscela di cellule risospendere triturando in 3 ml mezzi neuroni completi. Evitare la generazione di bolle d'aria durante questa fase e tutti i futuri passi in cui miscela di cellule viene triturato. Tutti Triturazioni dovrebbe essere fatto molto delicatamente. Soluzione cella filtrante attraverso Nitex maglia in clean 15 ml di tubo di coltura cellulare.
  13. Opzione: cella Cap tubo cultura e luogo in mixer Hula refrigerata (o qualsiasi mixer che fornisce la rotazione) con rollio delicato e ribaltamento per 30 min. Questo passaggio è facoltativo ma consigliato.
  14. Opzionale: Dopo mixer Hula, aggiungere 2 ml di risciacquo freddo media per lavare le cellule.
  15. Raccogliere le cellule per centrifugazione (8 min, 356 xg). Rimuovere e scartare il surnatante.
  16. Risospendere le cellule in 1.200 microlitri mezzi neuroni completi. Triturare le cellule delicatamente usando 1 ml di punta della pipetta di plastica. Non generare bolle d'aria. Pipettare lentamente e delicatamente fino a quando la maggior parte dei pezzi sono interrotte e le cellule sono sospese in un liquido.
  17. Aggiungere 750 ml di mezzi completi per ciascuno dei 12 pozzetti contenenti un vetrino di vetro pre-rivestito e aggiungere 100 microlitri della soluzione di cellule triturato.
  18. Incubare neuroni in coltura cellulare incubatore a 37 ° C con 5% di CO 2.
  19. Cambiare metà dei mezzi cellulari ogni 2 giorni.
  20. I neuroni sono pronti per le registrazioni elettrofisiologiche dopo 1-2 giorni di coltura.

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Risultati

Subito dopo l'isolamento di cellule LMMP-derivati, i neuroni e altri tipi di cellule non sarà immediatamente evidente. Vivente, cellule rotonde di fenotipo indistinto può essere vista come detriti tessuto dai frammenti di tessuto non digeriti e tessuto connettivo. Questo relitto è di alcuna preoccupazione e sarà in gran parte rimossa con la prima variazione media in due giorni. Non tentare di pulire le diapositive prima di questo, come le cellule vitali sani saranno rimossi.

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Discussione

Animali utilizzati

Questo protocollo è stato ottimizzato per Swiss Webster topi. Tuttavia, questo metodo è facilmente adattabile ad altri mammiferi di piccole dimensioni quali ratti e ad altri ceppi di topi. Abbiamo effettuato con successo isolamenti preliminari con i topi C57 e del recettore μ-oppioidi knock-out. Tuttavia, è anche possibile che altri ceppi di topi possono essere problematico a causa di variazioni morfologiche nel tratto GI. Inoltre, vi sono differenze note tra ceppi di topi (C...

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano che non esistono grandi interessi in competizione.

Ringraziamenti

National Institute of Health di Grant DA024009, DK046367 & T32DA007027.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Reagents
Fisherbrand Coverglass per Occhiali di Copertura per Crescita (diametro 12 mm)Fisher Scientific12-545-82 
Poli-D-lisinaSigmaP6407- 5 mg
piastra per coltura cellulare a 24 pozzettiCELLTREAT229124Può utilizzare qualsiasi marca
LamininBD Biosciences354 232 
ddH2OPuò preparare in laboratorio 
Provetta da centrifuga sterile da 15 mlGreiner Bio-one188261Può utilizzare qualsiasi marca
Provetta da centrifuga sterile da 50 mlGreiner Bio-one227261Può utilizzare qualsiasi marca
NaClFisher BioReagentsBP358-212MW 58.44
KClFisher BioReagentsBP366-500MW 74.55
NaH2PO4 .2H2OFisher ChemicalsS369-3MW137.99
MgSO4Sigma AldrichM7506-500GMW 120.4
NaHCO3Sigma AldrichS6014-5KGMW 84.01
glucosioFisher ChemicalsD16-1MW 180.16
CaCl22H2OSigma AldrichC5080-500GMW 147.02
F12 mediaGibco11330 
Qualità del siero bovino fetaleBiological Inc.110-001-101HIPuò utilizzare qualsiasi marca
Antibiotico/antimicotico 100x liquidoGibco15240-062 
Neurobasale A mediaGibco10888 
200 mM di L-glutamminaGibco25030164 
Fattore neurotrofico derivato gliale (GDNF)NeuromicsPR27022 
Forbici da dissezione a punta affilataFisher Scientific8940Può utilizzare qualsiasi marca
Pinze per tessuti da dissezioneFisher Scientific13-812-41Può utilizzare qualsiasi marca
Applicatori con punta in cotoneFisher Scientific23-400-101Può utilizzare qualsiasi marca
Bicchiere in vetro graduato da 250 mlFisher ScientificFB-100-250Può utilizzare qualsiasi marca
2 L Vetro Erlenmyer palloneFisher ScientificFB-500-2000Può utilizzare qualsiasi marca
Asta di plastica (pennello per bambini)Crayola05 3516Può utilizzare qualsiasi marca
CarbogenAirgasUN 31565% CO2
10 ml Siringa Leur-lockBecton Dickinson309604Può utilizzare qualsiasi marca
21 G x 1 1/2 in. Ago ipodermicoBecton Dickinson305167Può utilizzare qualsiasi marca
Collagenasi tipo 2WorthingtonLS004174 
Albumina sierica bovinaBioanalyticalAB00440 
2 ml Microcentrifuga Eppendorf provetteFisher Scientific13-864-252Può utilizzare qualsiasi marca
Nitrex Mesh 500 µ MElko Filtering Co100560Può utilizzare qualsiasi marca
Set di pipetteFisher Scientific21-377-328Può utilizzare qualsiasi marca
Sharpeining StoneFisher ScientificNC9681212Può utilizzare qualsiasi marca
Equipment
LabGard ES 425 Biological Safety Cabinet (cappa per colture cellulari)NuaireNU-425-400Può utilizzare qualsiasi marca
10 L Agitazione WaterbathEdvotek5027Può utilizzare qualsiasi marca
Microcentrifuga 5417REppendorf5417RPuò utilizzare una singola centrifuga più grande con adattatori di dimensioni
Allegra 6 Series CentrifugaBeckman Coulter366816Può utilizzare qualsiasi marca
HuluMixer Sample MixerInvitrogen15920D 
Incubatore a CO2 con camicia d'acqua AutoFlowNuiareNU-4750Può utilizzare qualsiasi marca
Bilancia analiticaMettler ToledoXS104Può utilizzare qualsiasi marca
American

Riferimenti

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Muscolo longitudinaledigestione enzimaticaisolamento cellulareimmunoistochimicaelettrofisiologiaimaging del calcioPCR a singola cellulacolorazione GFAP
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