La spettroscopia di risonanza magnetica nucleare (NMR) è una tecnica collaudata per studi sulla struttura e la dinamica delle proteine. Per studiare le proteine con NMR, gli isotopi magnetici stabili sono tipicamente incorporati metabolicamente per migliorare la sensibilità e consentire l'assegnazione sequenziale della risonanza. La C-metilazione riduttiva del 13è un metodo di marcatura alternativo per le proteine che non sono suscettibili di sovraespressione dell'ospite batterico, il metodo più comune di incorporazione degli isotopi. La C-metilazione riduttiva 13è una reazione chimica eseguita in condizioni blande che modifica i gruppi amminici primari di una proteina (gruppi ε-amminici della lisina e gruppo α-amminico N-terminale) in 13gruppi C-dimetilamminici. La struttura e la funzione della maggior parte delle proteine non vengono alterate dalla modifica, rendendola una valida alternativa alla marcatura metabolica. Poiché la metilazione riduttiva del 13C aggiunge marcature isotopiche sparse, i metodi tradizionali di assegnazione dei segnali NMR non sono applicabili. È stato sviluppato un metodo di assegnazione alternativo che utilizza la spettrometria di massa (MS) per facilitare l'assegnazione dei segnali NMR della proteina 13C-dimetilammina. Il metodo si basa su quantità parziali e diverse di 13C-marcatura in ciascun gruppo amminico primario. Una limitazione del metodo sorge quando il residuo N-terminale della proteina è una lisina perché i gruppi α- e ε-dimetilamminico di Lys1 non possono essere misurati individualmente con la MS. Per aggirare questa limitazione, vengono descritti due metodi per identificare la risonanza NMR delle 13C-dimetilammine associate sia alla α-ammina N-terminale che alla catena laterale ε-ammina. I segnali NMR della α-dimetilammina N-terminale e della catena laterale ε-dimetilammina del lisozima dell'albume d'uovo di gallina, Lys1, sono identificati in 1spettri di coerenza quantistica singola eteronucleare H-13C.