A Three-dimensional Tissue Culture modello per studiare Primario Osso Osseo e le sue Malignità

Sommario

Nei metodi standard di coltura le cellule sono presi dal loro ambiente fisiologico e cresciute sulla superficie di plastica di un piatto. Per studiare il comportamento delle cellule primarie midollo osseo umano è stato creato un sistema di coltura 3-D in cui le cellule sono coltivate in condizioni riassumono il microambiente nativo del tessuto.

Abstract

Coltura di tessuti è stato uno strumento prezioso per studiare molti aspetti della funzione delle cellule, dallo sviluppo normale della malattia. Metodi di coltura cellulare convenzionali si basano sulla capacità delle cellule sia per legarsi a un substrato solido di un piatto di coltura di tessuti o di crescere in sospensione in mezzo liquido. Diverse linee cellulari immortali sono stati creati e coltivati ​​con tali approcci, tuttavia, questi metodi spesso falliscono quando le cellule primarie devono essere coltivate ex vivo. Tale guasto è stato attribuito alla mancanza dei componenti della matrice extracellulare appropriate del microambiente tessuto dai sistemi standard dove coltura tissutale di plastica è usato come superficie per la crescita cellulare. Matrice extracellulare è parte integrante del microambiente tissutale e la sua presenza è essenziale per il mantenimento delle funzioni fisiologiche come polarizzazione delle cellule, la sopravvivenza e la proliferazione. Qui vi presentiamo un metodo di coltura di tessuto a 3 dimensioni in cui il midollo osseo primario celLS sono cresciuti in matrice extracellulare formulato ricapitolare il microambiente dell'osso umano (sistema RBM). Incorporato nella matrice extracellulare, cellule ricevono sostanze nutritive attraverso il mezzo supplementato con plasma umano, fornendo così un sistema completo in cui la sopravvivenza e la proliferazione cellulare possono essere mantenuti fino a 30 giorni, mantenendo la composizione cellulare del tessuto primario. Utilizzando il sistema RBM siamo cresciuti con successo le cellule del midollo osseo primarie da donatori sani che in pazienti con amiloidosi, e varie neoplasie ematologiche. Il sistema RBM permette, visualizzazione diretta in matrice tempo reale del comportamento delle cellule e la valutazione di efficacia preclinica di nuove terapie. Inoltre, le cellule possono essere isolate dal MLF e successivamente utilizzati per trapianto in vivo, selezione cellulare, citometria a flusso, e acido nucleico e proteina analisi. Nel loro insieme, il metodo RBM fornisce un sistema affidabile per la crescita di ossa primario Marrow cellule in condizioni fisiologiche.

Introduzione

Coltura tissutale è stato sviluppato per studiare il comportamento delle cellule in un ambiente controllato per ridurre al minimo la variabilità sistemica quando si confrontano i vari processi in organismi intatti. Questo metodo è stata fondata nei primi anni del 1900 ^{a 1,2} e si riferisce ad una tecnica in cui espianti di tessuto sono state coltivate ex vivo in un piatto di vetro. A metà del 1900 il sistema è stato adattato per far crescere le cellule disperse piuttosto che frammenti di tessuti intatti, e 'la cultura del tessuto' i termini e 'di coltura cellulare' diventato sinonimo ^3. In tali sistemi di colture cellulari convenzionali cellule sono cresciute sulla superficie della plastica coltura di tessuti sovrapposti con terreno di coltura addizionato con diversi fattori di crescita. Due tipi di colture sono emersi sulla base delle capacità di adesione di cellule diverse: coltura di cellule aderenti, in cui le cellule si attaccano e diffondono sulla plastica coltura tissutale e colture non aderenti, in cui le cellule vengono propagate in sospensione. Fin dai primi giorni di cellacultura, più linee cellulari immortali sono state create, come HeLa ^4, la prima linea di cellule di cancro umano. Queste linee cellulari hanno la capacità di proliferare indefinitamente in coltura cellulare, e la maggior parte non richiedono alcun trattamento speciale per mantenere la vitalità.

L'approccio riduzionista dei metodi di coltura cellulare originale è stato progettato per semplificare il sistema, per quanto possibile includendo solo i componenti minimo necessario per mantenere la vitalità e la proliferazione cellulare. Tuttavia, gli approcci di coltura cellulare semplificati non riescono a sostenere ex vivo la maggior parte dei tipi principali di cellule umane con limitata durata. Pertanto, i nuovi sistemi di coltura sono stati progettati per approssimare il microambiente tissutale più vicino possibile, permettendo così espianti di cellule di crescere in condizioni fisiologiche. In contrasto con le / approcci convenzionali di coltura cellulare riduzioniste, 3-dimensionale (3-D) sistemi di coltura stanno diventando il metodo preferito per la cultura in modo efficiente varilinee cellulari umane e cellule primarie di studiare successivamente meccanismi coinvolti nella salute e malattia, nel contesto di un microambiente favorevole. Tali sistemi 3-D sono solitamente realizzate utilizzando matrici ricostruite e / o medie, completata con fattori di crescita, per ricapitolare microambiente tissutale per studiare tipi cellulari di interesse. La prima di queste 3 dimensioni (3-D) modelli di coltura è stato sviluppato per studiare lo sviluppo della ghiandola mammaria. Per fornire le cellule con condizioni native cellule epiteliali mammarie sono stati incorporati in Matrigel, collagene IV e ricca fonte-laminina di matrice extracellulare (ECM), e ricoperto con terreno di crescita. In tali condizioni, le cellule epiteliali mammarie formano cluster somiglianti acini mammaria, e dopo stimolazione con ormoni lattogenica, questi acini secreti caseina e altre proteine ​​del latte, nel Lumena cavità delle strutture acini simili. Secrezione di caseina non è stata osservata in culture normali anche dopo aggiunta di prolattina ⁵, Sottolineando ulteriormente il ruolo del microambiente nel preservare le caratteristiche morfologiche e fenotipiche delle cellule. Un'altra dimostrazione della perdita della normale funzione cellulare quando le cellule sono prese fuori dal contesto della loro microambiente fisiologico è la dimostrazione che senza microambiente favorevole, cheratinociti non riescono a formare epidermide stratificati ^6. Un certo numero di altri modelli 3-D è stato creato per permettere a ex vivo propagazione di pile ^7,8.

Il ruolo cruciale del microambiente nel comportamento cellulare era elegantemente dimostrata in uno studio in cui cellule epiteliali mammarie formate "inside-out" acini quando coltivate in collagene I matrice, rispetto al acini polarizzata corretto e che si sono formate in Matrigel. Questa perdita di corretta morfologia è invertita quando le cellule mioepiteliali-laminina produzione sono stati aggiunti alle colture collagene I ^9. Inoltre, corretta microambiente è necessario per l'accuratagenotipo manifestazione. Cresciuto in un piatto, cellule tumorali mammarie MCF7 trasfettate con una cellula-cellula molecola di adesione CEACAM1 si comportano esattamente come le cellule negative CEACAM non trasfettate. Tuttavia, quando coltivate in Matrigel, a contatto con la ECM, strutture tumore-come forma di tipo selvatico MCF7 mentre MCF7 cellule trasfettate con CEACAM1 ritornano ad un fenotipo e forma normale acini con Lumena vuoto, come è stato stabilito con nonmalignant epitelio mammario ^10. Analogamente, il blocco-β1 integrine in cellule di carcinoma mammario non cambia il loro comportamento in condizioni standard di coltura, ma lo stesso esperimento condotto in colture 3-D dimostra che bloccare β1-integrina ritorna cellule maligne ad un fenotipo normale ^11. Pertanto, microambiente tissutale non è necessaria solo per mantenere la vitalità cellulare, ma anche di mantenere corretta funzionalità delle cellule.

Oltre a fornire un sistema in cui il comportamento delle cellule può essere studiato in condizioni fisiologiches, culture 3-D funzionano mezzo robusto e affidabile per la prova preclinica di nuove terapie ^8,12,13. Coltura di cellule in 3-D permette lo screening di composti sperimentali nelle condizioni di ambiente mediata farmaco-resistenza ^14, in cui potrebbe essere valutato il contributo di cellula-cellula e cellula-ECM adesione. Inoltre, la tossicità fuori bersaglio di nuovi composti può essere accertata incorporando diversi compartimenti cellulari di vari tessuti. Tali schermi possono essere eseguite più rapidamente e sono più conveniente rispetto gli studi comparabili in vivo ^8.

Qui vi presentiamo un impostazione di un modello 3-D di midollo osseo ricostruito (RBM), dove normale e maligna del midollo osseo (BM), le cellule proliferano ex vivo in un sistema mimando il microambiente del BM umana. Precedenti tentativi di crescita delle cellule umane primarie BM nelle culture 2-D, liquido o co-colture aderenti con i vari componenti della BM stroma, O 3-D, culture agar semisolido hanno avuto un successo limitato a causa della loro incapacità di fornire le cellule con i componenti del tessuto microambiente ^15-18. In questi sistemi cellule midollari primarie hanno avuto scarsa vitalità e non è riuscito a proliferare ex vivo. Un altro sistema in cui le cellule progenitrici midollari umane sono coltivate in co-colture sferoidali con cellule stromali BM è un sistema 3-D in cui è stata sostenuta vitalità e la proliferazione di cellule staminali per almeno 96 ore ^19. Tuttavia, anche se di grande beneficio per la comprensione della biologia progenitrici ematopoietiche, questo sistema non fedelmente ricapitolare il microambiente del BM per l'assenza di componenti ECM, pertanto, limitando la sua utilità. Il modello RBM qui descritta presenta un sistema completo in cui entrambi i compartimenti cellulari ed extracellulari della BM umano sono ricostruiti in vitro. Abbiamo dimostrato che le culture meccanismi in grado di supportare la crescita ex vivo di cellule normali BM umane, come abbiamoll come cellule isolate da pazienti con vari disturbi ematologici.

Protocollo

1. Preparazione preliminare

1. Tenere pipette sierologiche sterili e relativi puntali a 4 ° C.
   Risoluzione dei problemi: gel Matrigel a temperatura ambiente (RT); utilizzando pipette fredde e suggerimenti impediranno Matrigel di gelificazione durante l'installazione cultura.
2. Scongelare una bottiglia di Matrigel a 4 ° C per una notte.

2. Preparazione dei reagenti

1. Preparazione della fibronectina soluzione stock: Fare un / ml soluzione madre 1 mg di fibronectina sciogliendo 100 mg fibronectina umana in 100 ml di acqua distillata. Una volta che la fibronectina è dissolta, filtro sterile, un'aliquota, e conservare a 4 ° C per un massimo di 6 mesi.
   Risoluzione dei problemi: se fibronectina non si scioglie rapidamente incubare la soluzione per pochi minuti in un set da bagno di acqua a 37 ° C.
2. Preparazione di 10x PBS: sciogliere 80 g di cloruro di sodio NaCl, 14,4 g di Na ₂ HPO _4, 2 g KCl e 2,4 g di KH ₂ PO _{4 in 1 L di acqua distillata. Regolare il pH a 7,4, filtro sterile e conservare a 4 ° C per un massimo di 6 mesi.}
3. Preparazione del tampone di neutralizzazione ^20: Fai una soluzione contenente HEPES 100 mM in 2x tampone fosfato salino (PBS) con 1 M HEPES e 10x soluzioni stock PBS. Aggiustare il pH della soluzione a 7,0. Conservare a 4 ° C per 2-3 mesi.
4. Preparazione della soluzione di 2 mg / ml di coda di ratto collagene di tipo I: fare una soluzione 2 mg / ml di collagene I nel tampone di neutralizzazione (passo 2.3). Agitare la soluzione a bassa velocità e mescolare delicatamente pipettando su e giù. Poiché questo collagene è molto viscoso, evitare la formazione di bolle d'aria durante il pipettaggio. Si raccomanda di preparare la soluzione di collagene I fresca ogni volta. Mantenere la soluzione in ghiaccio fino al momento dell'uso.
5. Preparazione del rivestimento endosteale (Rend): Mescolare 1 mg / magazzino fibronectina ml con 2 mg / ml di collagene I stock (punti 2.1 e 2.4) per una concentrazione finale di 77 mg / ml e 29 mcg / ml, rispettivamente, in 1x &# 160; PBS sterile. Mescolare e conservare a 4 ° C per un massimo di 1 mese.
6. Preparazione della matrice ossea ricostruita (RBM):
   1. Preraffreddare 1,5 ml microprovette su ghiaccio. Conservare tutte le soluzioni della matrice sul ghiaccio in ogni momento.
   2. Miscelare 4 parti Matrigel (concentrazione Matrigel varia da lotto a lotto, ma le variazioni sono risultate essere trascurabile), 2,5 parti di 1 mg / ml di fibronectina e 1 parte di 2 mg / ml di collagene I sul ghiaccio prima pipettaggio Matrigel in il tubo con i puntali delle pipette fredde e quindi aggiungere fibronectina e collagene I. Matrigel inizierà solidificare a temperature superiori a 4 ° C, in modo da lavorare in fretta, mentre il pipettaggio Matrigel. Mescolare la matrice molto delicatamente pipettando su e giù, evitare di introdurre bolle. Tenere le provette in ghiaccio durante la miscelazione del RBM.
7. Preparazione del mezzo di crescita del midollo osseo (BMGM): Rendere 500 ml di BMGM contenenti 6,2 x 10 ^-4 M CaCl _2, 10 ^-6 M sodio succinato, 10 ^-6 M idrocortisone, il 20% del plasma umano (normale o maligno raccolti da donatori sani o pazienti), e l'1% di penicillina / streptomicina in RPMI-1640. CaCl _2, sodio succinato, e gli integratori idrocortisone possono essere conservati a -80 ° C per> 6 mesi come 1.000 soluzioni di riserva x. Quando cresce linee cellulari, siero bovino fetale (FBS) può essere sostituito da plasma umano.
8. Preparazione del 10% formalina tamponata neutra (NBF): Aggiungi il 37% di soluzione di formaldeide magazzino a 1x PBS al 10% v / v Mescolare bene e conservare a temperatura ambiente per 2-3 settimane al riparo dalla luce.
9. Preparazione del 1% di albumina sierica bovina (BSA): Pesare giusta quantità di BSA e scioglierlo in 1x PBS. Conservare a 4 ° C ed utilizzare entro 1 settimana. Soluzione BSA tende ad ottenere contaminati se conservato in frigorifero per periodi più lunghi. In alternativa, la soluzione BSA può essere aliquotato e congelato a -20 ° C per una conservazione a lungo termine. Evitare cicli di congelamento-scongelamento.
10. Preparazione della soluzione di recupero di cellule (CRS): Make 5 EDTA mm, 1 mm vanadate sodio (Na 3 VO ₄₎ e 1,5 mM fluoruro di sodio (NaF) in PBS 1x. Filtro sterile e conservare a 4 ° C fino a 6 mesi.

3. Integrato 3-D coltura di cellule BM umano non maligne e maligne

1. Purificare cellule mononucleate midollari primarie per Ficoll Plaque centrifugazione in gradiente secondo le istruzioni del produttore.
   Passaggio facoltativo: le cellule possono essere etichettati con 0,25 micron carbossifluoresceina diacetato, estere succinimidyl (CFSE) secondo le istruzioni del produttore per seguire la proliferazione cellulare per tutto il periodo di coltura.
   Risoluzione dei problemi: Se le cellule muoiono dopo CFSE colorazione, titolare la quantità di CFSE come la concentrazione dipende dal tipo di cellula; 0,25 micron funziona bene per le cellule mononucleari BM primarie.
2. Aggiungere 65 ml di soluzione di rend in ciascun pozzetto di un tessuto coltura trattata piastra a 48 pozzetti. Distribuire uniformemente la soluzione a coprire l'intera superficie del pozzetto ed incubare per> 30min a RT.
3. Preparare la sospensione di cellule ad una densità di 0,5 x 10 ⁶ cellule in 10 ml di PBS 1x per pozzetto di una piastra a 48 pozzetti. In una provetta da 1,5 ml microcentrifuga mescolare la sospensione cellulare con 100 ml di matrice MLF per pozzetto. Mescolare le cellule e la matrice RBM pipettando gentilmente su e giù; evitare l'introduzione di bolle. Mantenere la miscela cellula / matrice in ghiaccio per evitare gelificazione della matrice.
   Nota: il sistema RBM è completamente scalabile, per configurare il sistema in un formato non-48-bene, adegua gli importi di tutti i reagenti (matrici e medie) in base alla superficie della piastra utilizzata. Ridimensionare il numero di cellule per essere placcato conseguenza.
4. Aspirare il restante Rend e aggiungere la miscela di cellule / matrice nel centro di un pozzo. Rapidamente, diffondere la miscela di cellule / matrice a coprire l'intera superficie del pozzetto in modo uniforme. Posizionare la piastra per 30-60 min a 37 ° C, 5% CO ₂ tessuto cultura incubatore per consentire la matrice solidificare. Non agitare o disdisturbare la piastra durante l'incubazione.
   Risoluzione dei problemi: per evitare distribuzione irregolare di cellule in RBM, mescolare bene prima di placcatura. Mescolare dopo ogni 5 ^° ben placcato per evitare cellule sedimentazione al fondo della provetta. Una volta placcato, cellule non si depositano sul fondo del pozzo a causa della tensione superficiale nella matrice.
   Risoluzione dei problemi: per evitare distribuzione irregolare di cellule in RBM, mescolare bene prima di placcatura. Mescolare dopo ogni 5 ^° ben placcato per evitare cellule sedimentazione al fondo della provetta. Una volta placcato, cellule non si depositano sul fondo del pozzo a causa della tensione superficiale nella matrice.
5. Preriscaldare BMGM in un bagno d'acqua impostata a 37 ° C.
6. Dopo 30 minuti, verificare che la matrice ha impostato correttamente, si formerà un gel morbido come strato che non si muove quando la piastra è inclinata. Sovrapporre lo strato di cellule / matrice con 1 ml di caldo BMGM. Per evitare lacerazione della pipetta matrice mezzo molto delicatamente (dispensazione goccia a goccia) usandouna pipetta sierologica. Posizionare la cultura meccanismi assemblati in un 37 ° C, 5% CO ₂ tessuto cultura incubatore e cultura per il periodo desiderato.
   Nota: vitalità cellulare viene mantenuta per almeno 30 giorni senza cambiare mezzo, se è necessaria medio cambiamento cambiare solo il 50% delle medie ogni volta.
   Passaggio critico: E 'fondamentale che il mezzo non è freddo come temperatura fredda potrebbe disturbare la matrice già impostato. Fare attenzione a non schizzare il mezzo sulla parte superiore della matrice a potrebbe rompere lo strato di matrice morbida.
   Risoluzione dei problemi: Se la vitalità delle cellule del sistema RBM è basso, la densità delle cellule può avere da determinare sperimentalmente quando si lavora con le cellule diverse dalle cellule mononucleate primarie da aspirati midollari. Quando si lavora con linee cellulari, diminuire il numero di cellule 10 volte, come linee cellulari immortalizzate proliferano più velocemente di cellule primarie.

4. Imaging 'In-matrix'

1. La microscopia ottica
   1. Immagine cellule coltivate direttamente in RBM con campo chiaro, contrasto di interferenza differenziale (DIC), confocale o altre tecniche di imaging che permettono di imaging a lunga distanza come matrice di uno spessore di circa 1 mm. Utilizzare la funzione disponibile Z-stack su molti dei microscopi per l'immagine intera cultura da cima a fondo.
2. Immunofluorescenza
   Suggerimento: Per il protocollo immunostaining sotto evitare aspirazione soluzioni colorazione / lavaggio, invece inclinare il piatto e rimuovere soluzioni con una pipetta.
   1. Rimuovere il BMGM utilizzando una pipetta e lavare 2-3x con 100 microlitri / lavaggio / pozzetto di RT 1x PBS. Assicurarsi che sufficiente PBS viene utilizzato per coprire l'intera superficie del pozzetto.
   2. Fix celle della matrice aggiungendo 100 pl / pozzetto (per una piastra a 48 pozzetti) del 10% NBF per 15 minuti a RT. Rimuovere NBF e lavare le cellule due volte con 100 microlitri / lavaggio / pozzetto di RT 1x PBS.
      Appunto: Evitare di utilizzare a freddo NBF come può liquefare la matrice.
   3. Rimuovere PBS, aggiungere BSA 1% per 1 ora a RT o a 4 ° C per una notte per bloccare il legame non specifico degli anticorpi.
   4. Preparare la soluzione di anticorpo primario in 1% BSA alla diluizione necessaria. Diluizione varierà per ogni anticorpo, verificare con il produttore o il titolare di determinare la concentrazione ottimale di anticorpi. Aggiungere 100 pl / pozzetto di soluzione di anticorpo primario e incubare secondo le istruzioni del produttore.
      Passaggio fondamentale: Tutte le incubazioni che coinvolgono gli anticorpi coniugati a fluorofori o coloranti fluorescenti devono essere eseguite al buio.
   5. Rimuovere soluzione di anticorpo primario e lavare 3x con 1x PBS per 5 min.
   6. Per la colorazione immunofluorescenza indiretta, incubare con un anticorpo secondario coniugato con sonda fluorescente per 1 ora a RT. Diluire gli anticorpi in 1% BSA a concentrazione suggerito dal produttore.
   7. Rimuovere il secondariosoluzione ntibody e lavare 3x con 1x PBS per 5 min.
      Risoluzione dei problemi: Per evitare elevato background durante l'imaging, titolare anticorpi secondari coniugati modo fluorescente e utilizzare la più bassa concentrazione che fornisce il segnale adeguato. Se elevato background è ancora un problema, aumentare il numero e la durata delle fasi di lavaggio, oppure utilizzare anticorpi primari direttamente coniugati, e saltare il punto 4.2.6.
   8. Per macchiare i nuclei aggiungono 4 ',6-diamidino-2-fenilindolo (DAPI) soluzione colorante nucleare, alla diluizione suggerito dal costruttore, e incubare per 7-10 minuti a temperatura ambiente.
   9. Rimuovere la soluzione colorazione nucleare e lavare 2x 1x PBS per 5 min.
   10. Rimuovere la PBS dall'ultima pulizia e aggiungere una goccia di mezzo di montaggio (serie regolare), sul campione per conservare fluorescenza. Immagine utilizzando apposite impostazioni di eccitazione / emissione su un microscopio a fluorescenza o confocale.
       Nota: Imaging dovrebbe essere fatto entro 2 giorni di colorazioneper evitare il degrado della matrice e perdita di integrità meccanismi e perdita di segnale fluorescente. Se non è ripreso immediatamente, i campioni colorati devono essere conservati a 4 ° C, al riparo dalla luce, fino imaging.

5. Isolamento di cellule dal RBM

1. Rimuovere delicatamente mezzo senza disturbare lo strato di matrice. Non aspirare.
2. Lavare le cellule 2x con sterile 1x PBS. Non aspirare.
3. Aggiungere 0,5 ml di CRS ghiaccio freddo a ciascun pozzetto e rimuovere l'intero strato di matrice insieme con le cellule, vigorosamente pipettando su e giù. Raccogliere le cellule, matrice, e CRS in una provetta da 1,5 ml microcentrifuga. Mettere sul ghiaccio.
4. Aggiungere un ulteriore 0,5 ml CRS allo stesso bene e raccogliere tutto il materiale residuo. Trasferimento alla stessa provetta.
5. Vortex la miscela di cellule, matrice, e CRS e incubare in ghiaccio per 1 ora. Cellule Vortex ogni 15 min per facilitare il rilascio dalla matrice.
6. Controllare la miscela dopo 1 ora, senza grumi visibilidi matrice dovrebbe essere presente.
   Risoluzione dei problemi: se ciuffi di matrice sono ancora visibili dopo 1 ora, le cellule di trasferimento / matrix / CRS miscela in un tubo più grande, aggiungere ulteriori 2-5 ml di CRS, e incubare per altri 30-60 min.
7. Centrifugare le cellule in CRS a 1.000 rpm per 5-10 minuti a 4 ° C. Rimuovere il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 1 ml di freddo 1x PBS.
8. Centrifugare a 1000 rpm per 5-10 minuti e rimuovere il surnatante. Ripetere il lavaggio PBS ancora una volta.
9. Il secondo lavaggio PBS completa il recupero delle cellule dalla matrice e cellule isolate può essere utilizzato per applicazioni a valle come l'isolamento di DNA / RNA / proteine, citometria a flusso, trapianto in vivo, ecc.

Risultati

Poiché le cellule del midollo osseo primario non riescono a proliferare in condizioni di coltura tissutale standard, il sistema di meccanismo è stato creato per imitare strettamente microambiente dell'osso, fornendo un sistema di coltura ed espandere cellule BM ex vivo. I principali componenti della matrice extracellulare BM, fibronectina, collagene I, collagene IV, laminina e ^21, sono state incorporate nella matrice meccanismi per fornire l'impalcatura strutturale di questa cultura 3-D. Endosteum, l...

Discussione

Il modello RBM fornisce un sistema completo in cui la composizione cellulare della BM è mantenuta ex vivo per un massimo di 30 giorni. Cellule BM coltivate in RBM self-stratificare in base alla loro funzione mimando l'architettura BM trovato in vivo. Inoltre, questo è il primo sistema che permette l'espansione del mieloma multiplo clone ^8. I passi più critici per assicurare la robusta crescita delle cellule BM e il successo complessivo della coltura sono: 1) per ottenere una popolazi...

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
Kit di proliferazione CellTrace CFSE per citometria a flusso	Invitrogen/Life Technologies	C34554
Fibronectina da plasma umano	Millipore	NG1884448
Ficoll-Paque PLUS	GE Lifesciences	17-1440-02
Matrice della membrana basale Matrigel	BD Biosciences	354234
Collagene a coda di ratto di tipo I	BD Biosciences	354249	Collagen I di Millipore non polimerizza correttamente utilizzando questo protocollo
Mezzo di montaggio VECTASHIELD per fluorescenza (set regolare)	Vector Laboratories	H-1000
SigmaFast Red TR/Napthol AS-MX compresse	Sigma-Aldrich	F4648	Per la colorazione TRAP
SigmaFast BCIP/NBT compresse	Sigma-Aldrich	B5655	Per la colorazione con fosfatasi alcalina
Microscopio confocale Zeiss LSM 510	Software Carl Zeiss
Zeiss 510	Carl Zeiss		Software per l'analisi confocale
Microscopio invertito Zeiss Axiovert 200M	Software Carl Zeiss
MetaMorph	Molecular Devices		Software di analisi delle immagini per citometro a flusso Axiovert 200M
FACSort	Software BD Biosciences
CellQuest Pro	BD Biosciences		Software per l'analisi dei dati di citometria a flusso