Articolo metodologico

Una piattaforma Novel Stretching per applicazioni in cellule e tessuti mechanobiology

DOI:

10.3791/51454

⸱

3 giugno 2014

 ,  ,  ,  , 
1Centre for Interdisciplinary NanoPhysics, Department of Physics, University of Ottawa, 2University of Ottawa Heart Institue, University of Ottawa, 3Libin Cardiovascular Institute of Alberta, University of Calgary, 4Department of Biology, University of Ottawa, 5Institute for Science, Society and Policy, University of Ottawa

In questo articolo

Sommario

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Presentiamo in questo articolo un romanzo stiramento piattaforma che può essere usato per studiare le risposte delle cellule singole a complessi anisotropo deformazione meccanica biassiale e quantificare le proprietà meccaniche dei tessuti biologici.

Abstract

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Strumenti che consentono l'applicazione di forze meccaniche alle cellule e tessuti o che possono quantificare le proprietà meccaniche dei tessuti biologici hanno contribuito notevolmente alla comprensione della mechanobiology base. Queste tecniche sono stati ampiamente utilizzati per dimostrare come l'insorgenza e la progressione di diverse malattie sono fortemente influenzati da stimoli meccanici. Questo articolo presenta un allungamento biassiale (BAXS) piattaforma multi-funzionale che può sia stimolare meccanicamente le cellule singole o quantificare la rigidità meccanica dei tessuti. La piattaforma BAXS consiste di quattro motori voice coil che possono essere controllati in modo indipendente. Singole cellule possono essere coltivate su un substrato flessibile che può essere collegato ai motori permettendo di esporre le cellule a campi di deformazione complessi, dinamici e spazialmente variabili. Viceversa, incorporando una cella di carico forza, si può anche quantificare le proprietà meccaniche dei tessuti primari come sono esposti a cicli di deformazione.In entrambi i casi, un adeguato sistema di aggancio deve essere progettato e montato ai motori piattaforma BAXS per trattenere saldamente il substrato flessibile o tessuto di interesse. La piattaforma BAXS può essere montato su un microscopio invertito effettuare simultanea luce trasmessa e / o fluorescenza per esaminare la risposta strutturale o biochimica del campione durante gli esperimenti di stretching. Questo articolo fornisce dettagli sperimentali di progettazione e l'utilizzo della piattaforma BAXS e presenta risultati per singola cella e gli studi di tutto il tessuto. La piattaforma BAXS stato usato per misurare la deformazione di nuclei in cellule singole topo mioblasti in risposta al substrato ceppo e per misurare la rigidità di isolato aorte topo. La piattaforma BAXS è uno strumento versatile che può essere combinato con vari microscopia ottica al fine di fornire nuovi approfondimenti mechanobiological ai livelli tissutali sub-cellulari, cellulari e complesso.

Introduzione

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Il microambiente meccanica svolge un ruolo importante in molte funzioni cellulari come la proliferazione, migrazione e differenziazione, che hanno un profondo impatto nello sviluppo e omeostasi dei tessuti e anche in malattie 1-6. Nel corso degli anni, una moltitudine di strumenti sperimentali sono stati utilizzati per stimolare meccanicamente cellule o tessuti e misurare le proprietà meccaniche dei tessuti biologici con l'obiettivo di aumentare la nostra comprensione di mechanobiology base e studiando l'insorgenza e la progressione delle malattie 6-17. Tuttavia, si deve spesso basarsi su varie differenti dispositivi sperimentali per conseguire gli obiettivi di un particolare studio. Questo articolo presenta un unico multi-funzionale, allungamento biassiale (BAXS) piattaforma, che consente per gli studi che indagano il ruolo che le proprietà meccaniche e le forze meccaniche giocano in biologia a livello sub-cellulare per intere scale di lunghezza del tessuto. La piattaforma BAXS permette non solo per la quantification delle proprietà meccaniche dei tessuti isolati, ma agevola anche la capacità di applicare campi di deformazione semplici, complessi e dinamici di cellule viventi per capire le loro risposte a deformazione che si verifica in vivo. La piattaforma BAXS mantiene anche la capacità di eseguire la microscopia live-cell durante le prove meccaniche e perturbazioni sulle cellule e tessuti.

La piattaforma BAXS è un apparecchio su misura che può essere usato per studiare l'effetto di substrato deformazione a livello cellulare ed eseguire prove di trazione sui tessuti biologici (Figura 1A). Un riscaldatore di alluminio è stato fabbricato per accogliere un piatto 10 cm Petri standard mantenere le soluzioni fisiologiche a 37 ° C utilizzando un regolatore di temperatura e riscaldatori kapton (Figura 1B). Questa piattaforma BAXS può essere integrato su un contrasto di fase invertita e / o microscopio a fluorescenza e permette l'imaging simultaneo (Figura 1C).In breve, la piattaforma BAXS consiste di quattro motori voice coil lineari i cui movimenti sono montati su sfere in miniatura movimento lineare guide a orientate lungo due assi ortogonali (Figura 1D). Una tavola di posizionamento lineare è montato a ciascuno dei quattro motori per consentire il movimento verticale del sistema di bloccaggio che verrà utilizzato (Figura 1E). La posizione di ciascun motore è controllato da un encoder ottico con una risoluzione di 500 nm (Figura 1F). Tutti e quattro i motori sono controllati in modo indipendente con un controller di movimento impiegando encoder ottici per eseguire comandi di movimento (Figura 1G). Un'interfaccia LabVIEW fornisce il pieno controllo della grandezza spostamento, velocità e accelerazione di ciascun motore per generare deformazioni completamente personalizzabile, statica e dinamica, delle cellule o campioni di tessuto.

La tecnica utilizzata per indurre una deformazione in cellule avviene semplicemente allowincellule g di aderire saldamente ad un substrato flessibile e trasparente e poi si estende questo supporto con i quattro motori della piattaforma BAXS. La piattaforma BAXS permette il montaggio di un set custom-designed di morsetti per il fissaggio del supporto sui motori voice coil. A questo scopo, abbiamo progettato una serie di morsetti per cui un substrato flessibile e trasparente, fatta di polidimetilsilossano (PDMS), può essere fissata (figure 2A-C e Figura 3). Come i morsetti saranno esposti a soluzioni fisiologiche, tutte le parti sono state lavorate da acciaio inossidabile per consentire la sterilizzazione. Questi morsetti sono stati accuratamente progettati per portare il substrato più vicino possibile al microscopio obiettivo di migliorare la qualità dell'immagine riducendo al minimo lo stress sul substrato durante stiramento (Figura 2D).

La stessa piattaforma BAXS può anche essere usato per quantificare la rigidità di piccoli campioni di tessuto, utilizzando un insieme appropriato di pinze con adattatoreTED supporti per i campioni di tessuto e una cella di carico per controllare le forze. Diversi approcci possono essere adottate per montare un tessuto ai motori piattaforma BAXS; in questo caso l'acciaio inossidabile minutiens insetti spilli possono agganciare attraverso l'apertura di tessuti vascolari per eseguire prove di trazione (Figure 4A-B). In alternativa, per i tessuti spessi senza apertura naturale, bordi di tessuto può essere tenuto in posizione con i morsetti collegati ai motori voice coil o incollati ai piccoli vetrini con colla biologica e collegati ai motori con le pinze. Al fine di effettuare test di trazione è richiesta una cella di carico miniatura e facilmente integrabile sui motori piattaforma BAXS e usato per misurare la forza che agisce sul tessuto durante un ciclo stiramento (Figura 4C). Mentre la piattaforma BAXS è composta di quattro motori, l'introduzione di una seconda cella di carico permette di eseguire prove di trazione lungo due direzioni ortogonali. Questa capacità consente di quantify la rigidità meccanica di un singolo tessuto lungo due direzioni perpendicolari durante lo stesso esperimento.

È importante sottolineare che, in tutte le configurazioni, le cellule o campioni di tessuto di interesse sono sempre mantenuti in un bagno a temperatura controllata che è accessibile all'utente. Questa capacità consente l'introduzione di agenti farmacologici durante campione estende per esaminare la risposta temporale del campione. Inoltre, come l'asse ottico del microscopio invertito rimane libera, tutte le forme di microscopia sono ancora disponibili per l'utente. Infine, come tutti i quattro motori della piattaforma BAXS sono indipendenti è possibile applicare campi di deformazione altamente configurabili al campione di interesse. In vivo cellule e tessuti sono esposti a complessi e anisotropo stiramento che può essere più appropriatamente imitato in questa piattaforma rispetto tradizionali monoassiale allungamento piattaforma 7,13,15,18,19. Inoltre, le caratteristiche fisichedel campo di deformazione può essere modificato al volo durante un esperimento. Queste capacità consentono all'utente di esaminare la risposta cellulare e tissutale livello ad un ampio numero di elevata complessità, anisotropo, temporalmente, e campi di deformazione spazialmente variabili. Questo articolo descrive i vantaggi e le limitazioni della piattaforma BAXS così come il suo design, principi di funzionamento, ed i dettagli sperimentali per singola cella e gli esperimenti dei tessuti interi.

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Figura 1. Panoramica della piattaforma BAXS. A) Vista dall'alto della piattaforma BAXS che mostra i quattro motori voice coil. B) quadro dettagliato del riscaldatore piastra di Petri usato per mantenere le cellule e tessuti a 37 ° C. C) La piattaforma può essere montato su un microscopio invertito per eseguire live- imaging cellulare durante gli esperimenti di stretching.D) Immagine dettagliata del motore bobina; la parte mobile della piattaforma. E) quadro dettagliato della fase di posizionamento lineare che permette lo spostamento verticale dei sistemi di bloccaggio. F) quadro dettagliato del encoder ottico che fornisce la posizione in tempo reale del motore per il controller di movimento. G) Immagine dettagliata del controller di movimento che mostra i quattro ingressi encoder ottici e le uscite di potenza per i quattro motori voice coil.

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Figura 2. Sistema di bloccaggio per esperimenti sulle cellule stretching. AB) immagini che mostrano i dettagli dei morsetti utilizzati per fissare il substrato PDMS ai motori voice coil per stiramento. C) Il substrato è avvolto attorno alla parte cilindrica del morsetto con la sua featur ancoraggioes seduto nella scanalatura in alto. Poi il substrato è fissato con le viti che spingono il substrato / ancoraggio caratteristiche nella scanalatura superiore. D) Illustrazione della piattaforma BAXS con i morsetti tenendo il substrato in posto. L'inserto mostra una vista dettagliata del substrato con cellule attaccate ad esso seduto sopra un vetrino e l'obiettivo microscopio.

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Figura 3. Distinte dei materiali della membrana e del suo sistema di bloccaggio. Disegni con le dimensioni delle parti principali integrati alla piattaforma biassiale effettuare esperimenti sulle cellule stretching.

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Figura 4. Exampio di un sistema di bloccaggio per valutare la rigidità di vasi di piccolo calibro. AB) Quadri dettagliati del dispositivo di fissaggio utilizzato per indurre la deformazione in una aorta topo diametro di 1 mm. Spilli di acciaio inossidabile sono stati accuratamente modellate in triangoli aperti per permettere alla nave di scivolare su entrambi i pin. C) Illustrazione della piattaforma BAXS con i morsetti mantenere la nave e una cella di carico divisoria tra motore fisso e il morsetto sinistro. L'inserto mostra una vista dall'alto dettagliata della nave montato sui perni.

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Protocollo

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1. Deformazione meccanica di singole cellule

  1. Realizzazione di un substrato PDMS con perline fluorescenti incorporati
    Prima di montaggio del substrato, microsfere fluorescenti in soluzione acquosa vengono risospese in isopropanolo per migliorare perla di miscelazione nelle PDMS dovute alla natura idrofoba.
    1. Pipettare 500 ml di microsfere fluorescenti in una provetta da microcentrifuga da 1,5 ml e centrifugare a 16.200 xg per 10 min.
    2. Eliminare il surnatante e aggiungere 500 ml di isopropanolo seguito con 5 min di vortex. Mettere il flaconcino da parte una notte al buio, al fine di consentire eventuali particelle più grandi aggregati a sedimentare.
    3. La mattina successiva, rimuovere con attenzione il surnatante per una microcentrifuga fiala pulita. Questa soluzione tallone può essere utilizzato per fabbricare più di 5 substrati. NOTA: La soluzione tallone continuerà a sedimentare per i prossimi 3 giorni. Fare attenzione a non risospendere il pellet.
    4. Versare 0,5 g dell'agente indurente fornitocon il kit PDMS in una microcentrifuga fiala 1,5 ml con una bilancia scientifica. Per fasi successive, aggiungere un totale di 90 ml di perle (in sei 15 microlitri integrazioni), vortex per 1 minuto tra ogni aggiunta. Mettere da parte.
    5. Pesare 10 g di PDMS e mescolare per almeno 12 minuti con 0,5 g di agente reticolante integrato con perline fluorescenti.
    6. Realizzare un SU-8 2050 stampo a forma di croce con tecniche di fotolitografia standard, seguendo le istruzioni del produttore. Lo stampo utilizzato ha un'altezza di 320 micron e una superficie del 13,4 cm 2 (Figura 3). Lo stampo può contenere 428 ml o 440 mg di PDMS.
    7. Versare 400 mg di PDMS con perline nello stampo a forma di croce con una pipetta di trasferimento e curare per 2 ore a 80 ° C. Dopo l'indurimento, staccare il substrato dallo stampo (Figura 5A). Il substrato può essere conservato in una piastra di Petri a temperatura ambiente per 2 settimane senza mostrare variazioni significative relative proprietà meccaniche.
      8. Versare goccioline di PDMS (induritore: PDMS con un rapporto di 1,20) in una piastra di Petri con una dimensione finale di circa 4 mm di diametro e curare capovolti per 2 ore a 80 ° C (Figura 5B). Queste caratteristiche di ancoraggio possono essere conservati in una capsula di Petri per settimane. NOTA: Mantenere il piatto capovolto per evitare che le gocce di appiattimento durante il processo di polimerizzazione.
  2. Trattamento aria-plasma (30 sec a 30 W), il substrato e 8 funzioni di ancoraggio. Associare le caratteristiche su ciascuna estremità del substrato ad una distanza di 4 mm dal trattino forma quadrata presenti sul substrato (Figura 5C).
  • Montaggio membrana sui morsetti
    1. Avvolgere ogni estremità del substrato intorno alla parte cilindrica scanalato dei morsetti e fissarlo in posizione con le 2 viti di fissaggio dalla parte superiore (Figura 2B e figure 5D-E).
    2. Avvitare le 4 fascette sul supporto pinza e versare PDMS (rapporto 01:20) utilizzando un t usa e gettaransfer pipetta all'interfaccia tra il substrato e la parte cilindrica scanalata dei morsetti. Stendere le PDMS non induriti intorno alla parte cilindrica scanalata utilizzando una chiave esagonale da 1,5 millimetri.
    3. Versare PDMS (1,20) nelle scanalature completamente riempito per azione capillare e curare il montaggio a 80 ° C per 2 ore (Figura 5F).
  • Semina celle dal Membrane
    1. Trattamento aria plasma (30 sec a 30 W) l'intero gruppo di sterilizzare e funzionalizzare il substrato per consentire rivestimento collagene.
    2. Funzionalizzare la superficie del substrato dove saranno seminate cellule con 1 ml di 0,02 M di acido acetico, completata con 16 ug / ml di coda di topo collagene a temperatura ambiente per 1 ora. La densità collagene finale desiderato è 5 mg / cm 2.
    3. Sciacquare il 3x supporto con tampone fosfato e lasciare asciugare a temperatura ambiente per almeno 10 min.
    4. Aggiungere 40 ml di mezzo di coltura supplementato con 10% fetale Seru bovinam e 1% di penicillina-streptomicina contiene 2.000 celle nella parte centrale del substrato per coprire una superficie di 1 cm 2 (densità delle cellule: 20 cellule / mm 2). Densità cellulare può essere modificata a seconda delle esigenze sperimentali.
    5. Mettere tutto assieme in un incubatore di coltura cellulare standard con il substrato rivolta verso l'alto con la goccia di terreno di coltura contenente cellule su di esso. NOTA: Il gruppo deve essere conservato con il substrato rivolto verso l'alto per almeno 3 ore per permettere alle cellule di allegare saldamente. Per evitare l'evaporazione, 30 ml di terreno di coltura caldo viene aggiunto nella goccia sul substrato ogni 45 min per 3 ore.
    6. Dopo 3 ore, capovolgere l'intera assemblea in una capsula di Petri riempita con terreno di coltura fresco per immergere il substrato e incubare una notte per consentire alle cellule di proliferare.
    7. Il giorno successivo, preparare la soluzione salina tamponata con HEPES (HBSS, 20 mM di Hepes, 120 mM di NaCl, 5,3 mM di KCl, 0,8 mM di MgSO4, 1.8 mM di CaCl 2, e 11,1 mM di dextrose). Regolare il pH a 7,4. NOTA: La soluzione HBSS deve essere preparata giornalmente e mantenute a 37 ° C durante gli esperimenti. Questa soluzione fisiologica viene utilizzato per mantenere le cellule sul palco microscopio imitando il normale ambiente di tessuto / sangue.
    8. Montare il set-up sul contrasto di fase invertito o microscopio a fluorescenza Montare il gruppo pinza-substrato sulla piattaforma e motori BAXS. Riempire il piatto di Petri all'interno del riscaldatore piatto di Petri con tampone HEPES (Figura 2D).

    • 2. Rigidità stazzatura delle navi di piccolo calibro

    1. Preparazione
      1. Soluzione fisiologica Krebs: Preparare una soluzione di 118,1 mM NaCl, 11.1 mM D-glucosio, 25 NaHCO mm 3, 4.7 mM KCl, 1,2 MgSO mm 4, 1.2 mM KH 2 PO 4, e 2,5 mM CaCl 2. Aggiustare il pH a 7,4 e ossigenare la soluzione con gas medicali CarboGen (95% O 2/5% CO 2) per 30 min. NOTA: Il soluti Krebson deve essere preparato giornalmente e mantenute a 37 ° C durante gli esperimenti. Questa soluzione fisiologica viene utilizzato per mantenere i tessuti vivi simulando l'ambiente normale tessuto / sangue.
      2. Raccogliere strumentazione per la dissezione e la valutazione meccanica dei vasi aortici: forbici chirurgiche, pinzette piegate, micro-forbici, microscopio da dissezione chirurgica, 50 ml provette per centrifuga in polipropilene, e 10 ml pipette sierologiche. La procedura chirurgica e esperimento non richiede condizioni sterili. Montare i morsetti della piattaforma BAXS con la cella di carico anticipo.
    2. Isolamento tessuti e dissezione
      Tutte le procedure sperimentali su animali da laboratorio devono essere approvati dal comitato degli utenti cura degli animali ed uso 'istituzione, conforme alla Guida alla salute per la cura e l'uso di animali da laboratorio degli utenti' paese.
      1. Eseguire il mouse eutanasia con l'inalazione del 99% di CO 2 (7 psi)in una (Figura 6A) camera di plexiglas.
      2. Aprire il mouse addome e tagliare l'aorta toracica a sanguinare il mouse.
      3. Rimuovere il diaframma, la gabbia toracica e lobi polmonari (Figura 6B). NOTA: Per ridurre al minimo il rischio di danneggiare il tessuto, mantenere il cuore attaccato alla aorta ed evitare di toccare direttamente il vaso ma manipolarlo usando cuore.
      4. Rimuovere cuore, la radice aortica e dell'aorta toracica tagliando delicatamente tra la nave e la colonna vertebrale. NOTA: Non provocare alcun allungamento in nave durante l'escissione di mantenere la struttura interna del tessuto intatto (Figura 6C).
      5. Immergere immediatamente e mantenere il cuore e l'aorta in soluzione Krebs.
      6. Tagliare e lavare accuratamente l'aorta in soluzione Krebs per rimuovere eventuali coaguli di sangue. Rimuovere il tessuto connettivo utilizzando micro-forbici, pinzette e chirurgico microscopio da dissezione (Figura 6D-E). NOTA: Conservare tutta la lunghezza della nave e utilizzare il aorradice tic per determinare l'orientamento nave.
    3. Mezzo Dimension Determinazione e montaggio
      Per determinare la rigidità della nave, dalle dimensioni del serbatoio scaricate sono necessari e possono essere determinate con un microscopio calibrato.
      1. Tagliare un anello aortico di circa 2 mm di lunghezza e misurare con precisione la sua lunghezza con una impostazione (figure 6F-G) microscopio calibrato. Mettete questo segmento da parte in soluzione di Krebs.
      2. Tagliare un altro anello aortico più piccolo possibile tra ciascuno dei segmenti mm2 (Figura 6F). Mettere questo piccolo segmento su un vetrino da microscopio con il lume rivolto verso l'alto e misurare lo spessore della parete utilizzando un'impostazione microscopio calibrato (Figura 6H).
      3. Riempire il piatto Petri sulla piattaforma BAXS con soluzione di Krebs e inserire il segmento anello aorta 2 mm perni di trazione (riquadro in Figura 4C).

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    Figura 5. PDMS substrato di fabbricazione e di montaggio. A) Dopo l'indurimento, il substrato viene accuratamente staccata il SU-8 2050 stampo e mettere da parte in una capsula di Petri. B) Ancoraggio caratteristiche fatte di PDMS e aiutano a fissare il supporto sul morsetti. C) Substrato di ancoraggio caratteristiche pronta per il montaggio. D) Il substrato è montato sui morsetti 4, che vengono poi montati sul supporto del morsetto (vedi riquadro). E) Un'immagine dettagliata del substrato montati sulle 4 morsetti. F ) Procedimento di colata PDMS alla scanalatura sottostante substrato. La freccia indica il PDMS lentamente riempiendo la scanalatura per capillarità.

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    Figura 6. Preparazione ed isolamento dell'aorta toracica. A) Preparazione di strumenti chirurgici e il mouse eutanasia. B) attraverso un'incisione longitudinale addominale, la gabbia toracica e pallonetti polmonari vengono rimossi. C) L'aorta è attentamente rimosso usando il cuore per manipolare il tessuto. D) Il cuore e aorta sono messi in soluzione fisiologica Krebs. L'aorta viene pulita rimuovendo tutti i tessuti connettivi. E) Immagine dettagliata che mostra l'. F) segmento aorta cuore e aorta utilizzata per la valutazione rigidità con piccoli segmenti utilizzati per la misura di spessore. GH) La lunghezza precisa (G) e spessore (H) ripartiti per segmenti di flotta vengono valutate utilizzando un microscopio inverso e un programma di analisi.

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    Risultati

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    Cella Stretching

    La piattaforma BAXS stato usato per studiare la risposta meccanica del nucleo in cellule singole topo mioblasti (C2C12) esposta a una deformazione substrato del 25%. Mioblasti si trovano nel tessuto muscolare e sono costantemente esposti a stiramento meccanico e compressione in vivo. Le proprietà di forma e meccaniche del nucleo cellulare hanno dimostrato di giocare un ruolo importante nella regolazione dell'espressione genica e l'attività trascrizi...

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    Discussione

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    La piattaforma BAXS qui presentato facilita numerosi esperimenti nello studio di mechanobiology, dalle indagini di singole cellule ai tessuti interi. Inoltre, la piattaforma è altamente flessibile e configurabile, consentendo numerosi esperimenti di stimolazione meccanici e prove di trazione multiassiale. La piattaforma consente anche la manutenzione di cellule e tessuti in condizioni fisiologiche e permette di microscopia simultanea durante gli esperimenti di stretching. I due esperimenti descritti nelle sezioni preced...

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    Dichiarazioni

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    Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

    Ringraziamenti

    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    DT è stato sostenuto da una borsa di studio post-dottorato da Le Fonds de Recherche du Québec-Natura et Technologies (FQRNT) e ha una MITACS Elevate strategico Fellowship. CMC è stato sostenuto da una borsa di studio post-dottorato da Le Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ) e Ernest e Margaret Ford cardiologia dotato ricerca borsa di studio presso l'Università di Ottawa Heart Institute. EOB è stato sostenuto da sovvenzioni di funzionamento MOP80204 dal Canadian Institute for Health Research (CIHR) e T6335 dalla Heart and Stroke Foundation of Ontario. Il CIHR e Medtronic collettivamente forniscono EOB con una sedia di ricerca peer-reviewed (URC # 57093). AEP è finanziato dalle scienze naturali e ingegneria Research Council (NSERC) Discovery Grant, un supplemento NSERC Discovery Accelerator e riconosce con gratitudine il sostegno dei presidenti di ricerca Canada (CRC) del programma e di un ricercatore Award anticipata dalla Provincia dell'Ontario.

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    Materiali

    Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
    NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
    PDMSEllsworth Adhesives184 SIL ELAST KIT 0,5 KGIl rapporto tra base e reticolante utilizzato in questo protocollo è 20:1. Mescolare in una cappa laminare per evitare che la polvere contamini il tuo
    Microsfere fluorescenti FluoSpheresInvitrogenF8810Tenere lontano dalla luce.
    Bobina mobile lineareMoticontLVCM-051-051-01Il motro è disponibile in due pezzi (magnete e bobina). Deve essere montato su un sistema con cuscinetti a sfera per essere funzionale.
    Guida con cuscinettia sfera Edmund OpticsNT37-360Slitte con cuscinetti a sfere a movimento lineare miniaturizzato e di piccole dimensioni
    Stadio di posizionamento lineareEdmund Optics38-960Azionamento centrale Stadi di traslazione lineare quadrati da 1,25"
    Encoder otticoSistemi GSI microEMercury II 1600S -Encoder incrementale riflettente
    Controllore di movimentoGalilDMC-2143(DIN)-DC48 con AMP-20440Controllore a 4 assi con amplificatore a 4 assi
    Cella di caricoHoneywell31 a bassaminiatura con una gamma di 0-150 g
    Perni minuziosi per insetti (0,20 mm)Pin Service Austerlitz PerniPerni in acciaio inossidabile piegati a forma di triangolo aperto
    SU-8 2050Micro ChemSU-8 2050Fotoresist negativo epossidico permanente. Tenere lontano dal calore e dalla luce
    Sistema di trattamento al plasma ad ariaGlowresearchAutoglow Oxygen Plasma System
    Collagene a coda di topoInvitrogenA10483-01Collagene I, coda di ratto 5 mg/ml
    Hoechst 33342InvitrogenR37605Colorante fluorescente specifico per il DNA. Conservare in frigo.
    Riscaldatori flessibili isolati in Kapton (film di poliimmide)omega.cariscaldatori flessibili KHLV-0504/(10)-Pda 28 V; possono essere forniti con un
    regolatore di temperatura e processo Autotune da 24 V 1/16 DINomega.caCN63200-R1-LVRegolatore di temperatura; alimentazione 24 V.
    Terreno di coltura DMEMHycloneSH3024301Dulbecco' s 30 Eagle Medium modificato. Mantieni a 4 ° C
    Penicillina-StreptomicinaHycloneSV30010Mantenere il brodo congelato. Mantenere la soluzione funzionante a 4 °C.
    Siero fetale bovino (FBS)CloneSH3039603CConservare congelato.
    Tripsina 0,05%HycloneSH30236,02Tenere congelato. Digestione delle proteine di attaccamento cellulare per la subcoltura
    HepesWisent Inc330-050-ELSoluzione salina tamponata HEPES
    NaClFisher ScientificBP358-1Soluzione salina tamponata HEPES / Soluzione fisiologica Krebs
    KClFisher ScientificBP366-500Soluzione salina tamponata HEPES / Soluzione fisiologica Krebs
    MgSO4Fisher ScientificM65-500Soluzione salina tamponata HEPES / Soluzione fisiologica Krebs
    CaCl2Fisher ScientificC614-500Soluzione salina tamponata HEPES / Soluzione fisiologica Krebs
    DestrosioFisher ScientificBP220-1Soluzione salina tamponata HEPES / Soluzione fisiologica Krebs
    NaHCO3Fisher ScientificBP328-1Soluzione fisiologica Krebs
    KH2PO4Fisher ScientificBP362-500Soluzione fisiologica di Krebs
    Carbogen 95% O2/5% CO2LindleDIN:02154749Ossigenazione in soluzione fisiologica di Krebs
    NocodazoleSigmaM1404Agente di depolimerizzazione dei microtubuli
    Cytochalasin-DSigmaC8273Agente di depolimerizzazione dei filamenti di actina
    Anti-α- SMA-FITCSigmaF3777Utilizzato per colorare e quantificare il contenuto di cellule muscolari lisce
    Colorazione rossa PicrosiriusFluka43665Utilizzato per colorare e quantificare il contenuto di collagene
    con risoluzione di 0,5um. per insetti

    Riferimenti

    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
    1. Yim, E. K., Sheetz, M. P. Force-dependent cell signaling in stem cell differentiation. Stem Cell Res Ther. 3, (2012).
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