Questo articolo descrive la metodologia in vivo e in vitro per caratterizzare i progenitori di sedimentazione timica mediante l'analisi della cinetica di generazione, fenotipo e numero della loro progenie di cellule T.
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Articolo metodologico
Questo articolo descrive la metodologia in vivo e in vitro per caratterizzare i progenitori di sedimentazione timica mediante l'analisi della cinetica di generazione, fenotipo e numero della loro progenie di cellule T.
Caratterizzare timo sedimentazione progenitori è importante per comprendere le fasi di pre-timici di sviluppo delle cellule T, essenziale per elaborare strategie di sostituzione delle cellule T nei pazienti linfocitopenico. Abbiamo studiato timica stabilirsi progenitori da murino giorno embrionale 13 e 18 thymi da due complementari in vitro ed in vivo le tecniche, sia in base al metodo "goccia appeso". Questo metodo ha permesso la colonizzazione irradiati lobi del timo fetale con E13 e / o E18 progenitori timo distinguono per CD45 marcatori allotypic e successive loro progenie così. La colonizzazione con popolazioni miste consente l'analisi di cellule differenze autonome in proprietà biologiche dei progenitori, mentre la colonizzazione sia con popolazione rimuove eventuali pressioni selettive competitive. I lobi timici colonizzati possono anche essere innestati immunodeficienti topi riceventi maschi consentono l'analisi della progenie di cellule T mature in vivo, quali la dinamica di popolazione di tegli PERIFERICA sistema immunitario e colonizzazione dei vari tessuti ed organi. Colture d'organo timo fetali hanno rivelato che i progenitori E13 sviluppato rapidamente in tutto mature cellule CD3 + e hanno dato luogo al sottoinsieme di cellule T γδ canonica, noto come le cellule T epiteliali dendritiche. In confronto, i progenitori E18 hanno una differenziazione ritardata e non erano in grado di generare cellule epiteliali T dendritiche. Il monitoraggio di sangue periferico di timo-innestato CD3 - / - mice inoltre dimostrato che progenitori E18 timica decantazione generano, con il tempo, un maggior numero di cellule T mature rispetto ai loro omologhi E13, una caratteristica che non poteva essere apprezzata nel timo fetale breve termine colture d'organo.
Linfociti T, che porta il αβ o γδ recettore delle cellule T (TCR), si differenziano in un organo specializzato, il timo. Il timo completamente sviluppato è organizzato in due regioni distinte: la corteccia, dove progenitori timiche sviluppare e dove timociti che produttivamente riorganizzare i β TCR e catena geni α sono salvati dalla morte programmata (un processo noto come selezione positiva); e il midollo, dove scelto timociti con troppo forte reattività per auto-leganti vengono eliminati (selezione negativa) 1,2. Il timo proviene dallo strato endodermico del terzo sacchetto faringeo che è poi circondata da cellule mesenchimali 3. Si è coloniz....
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Dichiarazione etica: tutti gli esperimenti sono stati eseguiti secondo l'Istituto Pasteur Etica Carta, approvato dal Ministero dell'Agricoltura francese, e gli orientamenti dell'Unione europea. Un manipolatore con la formazione su piccola chirurgia roditore, certificato dal Ministero dell'Agricoltura francese, esegue tutti gli interventi chirurgici.
NOTA: Vedere in allegato la tabella 1 mostra la procedura di programma in 5 fasi.
1. Selezione degli embrioni
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Per scegliere un metodo per esaurire lobi timici di timociti endogeni che permettono il migliore sviluppo dei progenitori colonizzatrici, abbiamo confrontato i livelli di ricostituzione delle cellule T in lobi del timo colonizzati dopo l'irradiazione o un desossi-guanosina 5 giorni (d-Gua) trattamento. I risultati mostrano che, mentre non vi è alcuna differenza a giorno 9 della cultura, lobi irradiati contenevano più cellule T rispetto a quelli trattati con d-Gua, al giorno 12. Pertanto, l'irraggiamento è più ap.......
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Due saggi principali possono essere utilizzati per analizzare differenziazione delle cellule T ex vivo. Il più recentemente riportato è il co-coltura di progenitori emopoietici con cellule stromali BM, OP9, esprimendo i ligandi di Noth1, delta come 1 o 4 12. Questo test 2-D è facile da eseguire, altamente efficiente e sensibile, permettendo analisi a livello di singola cellula. Tuttavia, esso non sostiene lo sviluppo delle cellule T oltre lo stadio di DP né la generazione di γδ DETC 13, en.......
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Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.
Supportato da l'Istituto Pasteur, INSERM, Agence Nationale de Recherche ANR (Grant 'linfopoiesi'), il REVIVE futuro programma di investimenti e "La Ligue contre le Cancer".
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Piastre di Petri per colture di tessuti plastici da 90 x 15 mm e 35 x 15 mm. | TPP | T93100/T9340 | Campionamento |
| 26 g ⅜ " Siringhe 0,45 x 10 mm con aghi | BD Plastipak | 300015 | Cell suspension |
| Panno di bullonaggio in rete di nylon sterilizzato pezzi da 50/50 mm. | SEFAR NITEX | 03-100/32 | Filtrazione di celle |
| Etanolo 70%. | VWR | 83801.36 | Azioni di sterilità |
| Ioduro Povidone 10% (Betadine) | MEDA Pharma | 314997.8 | Azioni di sterilità |
| Ketamina 100 mg/ml (soluzione madre) | MERIAL | Anesthesic | |
| Xilazina 100 mg/ml in PBS (soluzione madre) | Sigma | X1251-1G | Anestetico e miorilassante |
| Buprenorfina 0,3 mg/ml soluzione madre | AXIENCE | Analgesico morfinico | |
| Gel oftalmico (0,2% ciclosporina) | Schering-Plough Salute degli animali | Protezione degli occhi | |
| DPBS (+ CaCl2, MgCl2) | GIBCO Life Technology | 14040-174 | per isolare gli embrioni |
| HBSS Hanks' Balanced Salt Solution (+ CaCl2, MgCl2) | GIBCO Life Technology | 24020-091 | per lavare via il sangue e sezionare gli embrioni |
| OPTI-MEM I GlutaMAX I | GIBCO Life Technology | 51985-026 | Terreno per colture |
| Siero fetale di vitello | EUROBIO | CVFSVF00-0U | additivo per colture |
| Penicilina e streptomicina | GIBCO Life Technology | 15640-055 | Antibiotici per colture |
| 2-Mercaptoetanolo | GIBCO Life Technology | 31350010 | additivo per colture |
| LEICA MZ6 Microscopio di dissezione | LEICA | MZ6 10445111 | Occular W-Pl10x/23 |
| Sorgente di lampada fredda | SCHOTT VWR | KL1500 compatto | Due fibre a collo d'oca adattate |
| Elastomero siliconico | World Precision Instruments | SYLG184 | Cuscinetto di dissezione |
| Cucchiaio, rotondo e perforato | Fine Science Tools | 10370-18 | Strumenti di dissezione |
| Fine forbici per iride | Fine Science Tools | 14090-09 | Strumenti di dissezione |
| Forbici a molla Vannas | Fine Science Tools | 15018-10 | Strumenti di dissezione |
| Pinze: Dumont #5/45 Inox 11 cm | F.S.T. | 11253-25 | Strumenti di dissezione |
| 2 paia di pinze da orologiaio dritte e fini Dumont #5 punte sottili da 11 cm. | Fine Science Tools | 11295-20 | Strumenti di dissezione |
| Filo di poliammide con ago 6-0 C-3 3/8c | ETHICON | F2403 | per suture |
| Porta aghi | MORIA/F.S.T. | 12060-02 | per suture |
| Termoforo | VWR | 100229-100 | Per mantenere la temperatura del topo durante l'anestesia |
| Membrana Isopore RTTPO2500 | DUTSCHER | 44210 | Per |
| FTOC Terasaki 60 pozzetti piastre | FISHER | 1x270 10318801 | Per appendere la tecnica della goccia |
| Tamponi di garza sterili 7,5 x 7,5 cm | Hydrex | 11522 | Per applicare la soluzione disinfettante |
| Anticorpi marcati con fluorescenza o biotina | BD Biosciences, Biolegend o e-Biocsiences | Numero di cloni, vedere la tabella sottostante | Cellule di colorazione |
| , Colonne MACS/Microsfere di streptavidina, | Miltenyi Biotec | 130-042-401/130-048-101 | Deplezione cellulare, |
| Topi, | Charles Rivers Laboratories (CD45.1) e Janvier Labs. (CD45.2) | C57BL/6 CD45.1 O CD45.2 | Fonte di cellule e lobi timici |
| Topi | CDTA Orlé ans, Francia | CD 3 epsilon Ko CD45.2 | Esperimento di innesto |
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