Articolo metodologico

Photopatterning proteine ​​e cellule in acquosa ambiente utilizzando TiO

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DOI:

10.3791/53045

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26 ottobre 2015

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1Frontier Research Institute for Interdisciplinary Sciences, Tohoku University, 2CREST, Japan Science and Technology Agency, 3School of Fundamental Science and Engineering, Waseda University, 4Research Institute of Electrical Communication, Tohoku University, 5Graduate School of Biomedical Engineering, Tohoku University, 6Faculty of Science and Engineering, Waseda University

In questo articolo

Sommario

Descriviamo un protocollo per modificare l'affinità cellulare di una superficie di scaffold in ambiente acquoso. Il metodo sfrutta la fotocatalisi del biossido di titanio per decomporre il film organico nella regione foto-irradiata. Mostriamo che può essere utilizzato per creare microdomini di proteine di impalcatura, sia ex situ che in situ.

Abstract

Contaminanti organici adsorbiti sulla superficie del biossido di titanio (TiO 2) possono essere decomposti da fotocatalisi sotto ultravioletta (UV). Qui si descrive l'impiego di TiO 2 fotocatalisi alterare localmente affinità cellule della superficie del substrato un nuovo protocollo. Per questo esperimento, un sottile TiO 2 film era sputtering rivestite su un vetrino di vetro, e la superficie TiO 2 è stato successivamente modificato con un monostrato silano organico derivato da octadecyltrichlorosilane (OTS), che inibisce l'adesione cellulare. Il campione è stato immerso in un mezzo di coltura cellulare, e concentrato luce UV è stata irradiata ad una regione ottagonale. Quando un neuronali PC12 linea cellulare sono state piastrate sul campione, cellule rispettati solo sulla zona UV-irradiati. Mostriamo inoltre che tale modificazione superficiale può essere eseguita anche in situ, cioè, anche quando le cellule crescono sul substrato. Modifica corretta della superficie necessaria una matrice extracellulare protein collagene di essere presente nel mezzo al momento della irradiazione UV. La tecnica qui presentata può potenzialmente essere impiegato in tipi di cellule patterning più per la costruzione di sistemi di co-coltura o di manipolare arbitrariamente cellule in coltura.

Introduzione

Processi litografia di semiconduttori e suoi derivati ​​- come fotolitografia 1,2, litografia a fascio elettronico 3-6, 7-10 e stampare microcontact - sono diventati uno strumento stabilito in biologia cellulare crescere cellule viventi in una posizione e geometria definita. Il metodo patterning si basa sull'utilizzo di substrati microfabbricati, costituito da micro-isola di cellule permissive rivestimento in uno sfondo non permissive. Tale substrato serve come modello per modello cellule. Queste tecnologie ci hanno fornito i nuovi metodi per progettare cellule e la loro funzione a livello singolo e multi-cellulari, per estrarre le proprietà intrinseche delle cellule, e per aumentare la produttività di base cellulare di screening farmaco 11.

Il grado di libertà in patterning cellula sarebbe aumentare notevolmente se la geometria motivo template potrebbe essere modificato in situ, cioè, mentre le cellule sono coltivate sulle surface. I metodi convenzionali per la formazione di pattern non possono essere applicati direttamente qui, dato che elaborano campioni in atmosfera o in vuoto. Sono stati proposti quindi varie nuove tecniche di modificazione superficiale, che si basano, per esempio, su composti fotoreattivi 12,13 o ablazione laser 5,14, solo per citarne alcuni. I metodi proposti sono stati ben recensito da Robertus et al. 15, e più recentemente da Choi et al. 16 e 17 Nakanishi.

Qui, in questo articolo, si descrive un nuovo protocollo di in-situ modifica della superficie, che si avvale di decomposizione fotocatalitica di molecole organiche su un biossido di titanio (TiO2) Superficie 18,19. In questo metodo, un film TiO 2 è inserito tra il substrato di vetro e la pellicola organica che interfaccia le cellule, e la pellicola organica viene decomposta in situ irradiando localmente ultravioletta (UV)luce per una regione di interesse (λ <388 nm). Abbiamo dimostrato che il nuovo protocollo può essere utilizzato per creare microdisegni di proteine ​​della matrice extracellulare e le cellule viventi sia ex situ e in situ. TiO 2 è biocompatibile, chimicamente stabile, e otticamente trasparente, cui caratteristiche rende adatto ad introdurre in esperimenti di coltura cellulare. Questo protocollo fornisce una scienza dei materiali a base alternativa per modificare ponteggi coltura cellulare in ambiente coltura cellulare.

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Protocollo

1. Preparazione di TiO2 Rivestiti vetro Coverslip

  1. Numero i coprioggetti usando una punta per tracciare diamante. Questo non solo aiuta a tenere traccia di ogni coprioggetto ma anche per garantire che il lato corretto del campione è rivolta verso l'alto. Pulire i coprioggetti, prima sotto un getto DDH 2 O, poi immergendole in una soluzione piranha (H 2 SO 4: H 2 O 2 = 4: 1). Dopo 10 minuti, risciacquare accuratamente i coprioggetti, 8 volte in DDH 2 O. Asciugare il coprioggetto sotto N 2 flusso.
  2. Impostare TiO 2 destinazione nel sistema sputtering a radiofrequenza (RF). Fissare i coprioggetti su un supporto campione del materiale sputtering utilizzando un nastro poliimmide. Collocare il supporto del campione nella camera di sputtering. Evacuare la camera fino a quando la pressione raggiunge 2.0 × 10 -4 Pa.
  3. Introdurre gas Ar nella camera e impostare la pressione di deposizione a 4,0 mTorr. Pur mantenendo l'otturatore chiuso, aumentare gradualmentela potenza RF a 70 W.
  4. Aprire l'otturatore e sputter per 15 minuti per ottenere una pellicola con uno spessore di 120-150 nm (Figura 1: Fase A). Tasso di crescita del film deve essere derivato per ciascuna macchina.

2. Surface Coating con cellulare repellente Film

  1. Hydrophilize superficie TiO 2 trattando il campione con O 2 al plasma, seguendo le istruzioni fornite dal produttore del reattore al plasma. Trattiamo il campione per 5 minuti a 200 W con O 2 flusso di 100 sccm. Immergere il campione in DDH 2 O e confermare che la superficie è superidrofilia. Asciugare accuratamente la superficie sotto N 2 flusso.
  2. Preparare la soluzione 1 octadecyltrichlorosilane mm (OTS) con l'aggiunta di 39,6 OTS microlitri per 100 ml di toluene. Immergere il campione nella soluzione per 1 ora a RT. Condurre questo passaggio all'interno di un sacchetto 2 guanto -filled N (Figura 1: Fase B).
  3. Per rimuovere molecole physisorbed, sonicate il campione in toluene, acetone, etanolo, e DDH 2 O per 5 minuti ciascuno, in questo ordine. Sciacquare il campione quattro volte in acqua dolce DDH 2 O e asciugare la superficie sotto N 2 flusso. La superficie deve essere idrofobica con un angolo di contatto di 100-110 °.

3. Ex-Situ Patterning Surface

  1. Lavorare in una cappa a flusso laminare, disegnare diversi segni di graffi con una punta per tracciare diamante sulla superficie. I segni aiutano a tenere traccia delle regioni elaborati e anche portare i microscopi a fuoco. Sterilizzare il TiO OTS rivestite 2 immergendo il campione in etanolo al 70% per 5 min. Risciacquare il campione due volte nel sterile DDH 2 O.
  2. Trasferire il campione in un piatto da 35 mm, e aggiungere 2 ml di terreno di coltura PC12 (vedi punto 4.2). Incubare per oltre 3 ore in un incubatore CO 2 (37 ° C). Questa procedura è destinata a far albumine sieriche assorbono sulla superficie. Albumine adsorbite inibiscono conseguente assorbimento di altri proteins e cellule (Figura 1: fase c).
  3. Durante l'attesa, impostare il microscopio a fluorescenza invertito.
    1. Accendere la lampada ad arco, inserire il cubo di filtro UV, e impostare la lente dell'obiettivo a 20X.
    2. Misurare l'intensità della luce I (W cm -2) usando un misuratore UV intensità, e calcolare il tempo di irradiazione t (in secondi) per una dose di d (in cm -2 J) come: t = d / I.
      Ad esempio, per irradiare alla dose di 200 J cm -2 utilizzando una sorgente luminosa di 600 mW cm -2, è richiesta 333 sec di irradiazione.
    3. Utilizzare un micrometro e chiudere il diaframma di campo per impostare la dimensione della regione da irradiare, ad esempio, 200 micron.
  4. Dopo l'incubazione 3 ore, integrare la media con 200 ml di 3,0 mg ml -1 di collagene di tipo-IV (Col-IV; finali concentrazione di 300 ug ml -1).
  5. Trasferire il piatto 35 mm al palco microscopio. Trova il graffio marca fuoco il microscopio sulla superficie del campione, e irradiare luce UV con una dose di 200 J cm -2 (Figura 1: Fase D). La zona di irradiazione UV può essere modificata sia regolando l'apertura del diaframma di campo o sostituendo il diaframma di campo con una maschera metallica della geometria arbitrale.
  6. Sostituire la media con un mezzo di coltura fresco (senza Col-IV), e posizionare il campione torna in incubatrice.

Cultura 4. cellulare

  1. Routine coltura di cellule PC12 è effettuata su un piatto di plastica rivestita di collagene.
    1. Per rivestire un piatto di tessuto-cultura di 60 mm, con Col-IV, prima bagnare la superficie con DDH 2 O e aspirare tutto DDH 2 O.
    2. Preparare 300 mg ml -1 Col-IV diluendo la soluzione originale (3 mg ml -1) 10x con DDH 2 O.
    3. Aggiungere 200 ml di 300 mcg ml -1 Col-IV per 60-mm piatto. Lasciate che la soluzione di diffondersi attraverso la superficie.
    4. Dry tha piatto in una cappa a flusso laminare per circa 1 ora.
    5. Lavare la superficie due volte con 4 ml di tampone fosfato salino di Dulbecco (D-PBS). Quando non si usa subito il piatto rivestito, lavare il piatto una volta con 4 ml di DDH 2 O. Dopo aspirazione DDH 2 O, riporre il piatto in incubatrice. Cercate di non conserverà per più di due settimane.
  2. Cellule PC12 sono coltivate in un terreno di coltura costituito da: medio (glucosio basso) modificato Eagle Dulbecco + 10% siero fetale bovino + 5% soluzione cavallo penicillina streptomicina siero + 1%. Incubare le cellule in un incubatore CO 2 (37 ° C, 5% CO 2), e sostituire la metà del mezzo ogni altro giorno. Passage cellule prima che raggiungano confluenza.
    1. Aspirare il terreno di coltura, e aggiungere 2 ml di PBS + (D-PBS + 10 mg ml -1 albumina di siero bovino (BSA) + EDTA 10 mM) preriscaldata a 37 ° C. Incubare per 5 min a 37 ° C. Battere delicatamente il piatto di staccare tutti cells.
    2. Raccogliere le cellule in un tubo da 15 ml. Sciacquare il piatto con 3 ml di fresco D-PBS, preriscaldata a 37 ° C.
    3. Centrifugare la provetta a 150 g per 4 min.
    4. Aspirare il surnatante e aggiungere 1 ml di mezzo di crescita.
    5. Per la cultura di routine, dividere le celle 1: 3 a 1: 5.
  3. Per piastra cellule sul campione modificato UV OTS / TiO 2, contare densità cellulare e aggiungere 3,0 x 10 5 cellule in un piatto da 35 mm (Figura 1: Stadio E). Incubare il piatto in incubatrice umidificata (37 ° C, 5% CO 2) per 1-2 giorni. Entrambi fattore di crescita ingenuo e nervoso (NGF), le cellule PC12 -differentiated possono essere utilizzati per gli esperimenti patterning. Per NGF differenziazione, 100 ng ml -1 di 7S-NGF viene aggiunto alla crescita media diversi giorni prima placcatura le cellule sul campione. NGF-differenziazione sembra aumentare la adhesibility delle cellule PC12 e facilita la manipolazione, specialmente nella in-situ e patterningxperiments.

5. In-Situ Patterning Surface

  1. Dopo 1-2 giorni di coltura sulla superficie ex situ modificato, confermano che le cellule sono Collegamento e cresce solo sulla regione UV irradiata. Impostare il microscopio, come descritto al punto 3.4.
  2. Trasferire il campione in un piatto di coltura di tessuti da 35 mm contenente il mezzo di crescita, 100 ng ml -1 NGF (nel caso di utilizzo di cellule NGF dissociati), e 100 mg ml -1 Col-IV.
  3. Porre la capsula sul palco microscopio. Trovare la posizione appropriata, e irradiare luce UV con una dose di 200 J cm -2 (Figura 1: Fase F, G). La regione permissiva appena creato viene indicato con un asterisco nella figura 1: Punto G.
  4. Prova a completare l'elaborazione di un singolo campione entro 30 minuti. Dopo l'irraggiamento, trasferire il campione di nuovo nel mezzo senza Col-IV.
  5. Fare molta attenzione quando si trasporta il piatto con cucellule ltured e trasferimento del campione dal piatto per piatto per evitare il distacco delle cellule fantasia.

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Figura 1. Schema di processo globale. Vedere il testo per i dettagli. Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.

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Risultati

Figura 2A mostra un'immagine in sezione microscopia elettronica a scansione (SEM) della TiO 2 film di sputtering depositato. Dall'osservazione, spessore del film è stata stimata essere di circa 150 nm. Notevole ecco la planarità del depositato TiO 2 film. Ulteriori analisi mediante microscopia a forza atomica (AFM) ha rivelato che la radice quadrata media (RMS) rugosità della superficie era di 0,2 nm (Figura 2B).

Quando la super...

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Discussione

Nel nostro attuale protocollo, TiO 2 film è stato formato da RF-magnetron sputtering. Favoriamo questo metodo di deposito in quanto ci permette di preparare in modo riproducibile un fotocatalitico TiO 2 film con una rugosità sub-nm. Anche se i processi di deposizione sputtering sono familiari a scienziati dei materiali e ingegneri elettronici, potrebbe non essere abbastanza accessibile per i biologi. In tal caso, TiO 2 film di spin-rivestite sarebbe una scelta alternativa 23. ...

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano il Sig. Kotaro Okubo per la gentile assistenza con l'imaging SEM. Questo lavoro è stato sostenuto dalla Japan Society for the Promotion of Science Grant-in-Aid for Basic Research (B) (20310069), dal Grant-in-Aid for Research Activity Start-up (25880021) e da sovvenzioni per la ricerca della Kurata Memorial Hitachi Science and Technology Foundation e della Nippon Sheet Glass Foundation for Materials Science and Engineering.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Vetrino coprioggettiWarner InstrumentsCS-15R1515 mm, spessore #1,5
Graffiatore diamantatoOgura Jewel IndustryD-Point Pen
Sistema di sputtering RFANELVASPC350
TiO2 sputtering targetKojundo Chemical LabOssido di titanio (IV), purezza target99,9%
YamatoPR301
n-ottadeciltriclorosilano (OTS)Aldrich104817
TolueneWako204-01866
Piatto per coltura tissutale (35  mm)Greiner627160
Piatto per coltura tissutale (60  mm)BD Falcon353002
Collagene di tipo IVNitta GelatinaCellmatrix Tipo IV
D-PBSGibco14190-144
Mezzo di Eagle modificato di Dulbecco (DMEM)Gibco11885-084
Siero fetale bovinoGibco12483-020Inattivare a caldo e passare attraverso un 0,22  μ m filtrare prima dell'uso
Siero di cavalloGibco26050-088Passare attraverso un 0,22  μ m filtro prima dell'uso
Penicillina-streptomicina (100x)Nacalai tesque26253-84
7S nerve growth factor (NGF)Alomone LabsN-130
Albumina sierica bovina (BSA)SigmaA2153
EDTADojindoN001Soluzione madre in nanoparticella 0,5 M
TiO2TaycaTKD-701
diametro , reattore al plasma al

Riferimenti

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