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Articolo metodologico

Generazione CRISPR / Cas9 Mediated monoallelic eliminazioni per studiare la funzione Enhancer nel topo cellule staminali embrionali

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DOI:

10.3791/53552

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2 aprile 2016

In questo articolo

Sommario

La convalida sperimentale dell'attività dell'enhancer è meglio affrontata dall'analisi della perdita di funzione. Viene presentato un protocollo efficiente che utilizza la delezione mediata da CRISPR/Cas9 per studiare la regolazione allele-specifica della trascrizione genica nelle cellule ES F1 che contengono un genoma ibrido (Mus musculus129 x Mus castaneus).

Abstract

Gli enhancer controllano l'identità cellulare regolando l'espressione genica tessuto-specifica in modo indipendente dalla posizione e dall'orientamento. Questi potenziatori sono spesso localizzati distalmente dal gene regolato nelle regioni intergeniche o anche all'interno del corpo di un altro gene. La natura indipendente dalla posizione dell'attività dell'enhancer rende difficile abbinare gli enhancer con i geni che regolano. La delezione di una regione enhancer fornisce una prova diretta dell'attività dell'enhancer ed è il gold standard per rivelare il ruolo di un enhancer nella trascrizione genica endogena. I metodi convenzionali di delezione basati sulla ricombinazione omologa sono stati superati dai recenti progressi nella tecnologia di editing del genoma che consente modifiche rapide e localizzate con precisione ai genomi di numerosi organismi modello. L'editing genomico mediato da CRISPR/Cas9 può essere utilizzato per manipolare il genoma in molti tipi di cellule e organismi in modo rapido ed economico, grazie alla facilità con cui Cas9 può essere mirato al genoma da un RNA guida da un plasmide di espressione su misura. La delezione omozigote di elementi essenziali di regolazione genica potrebbe portare alla letalità o alterare il fenotipo cellulare, mentre la delezione monoallelica di potenziatori trascrizionali consente lo studio della cis-regolazione dell'espressione genica senza questo problema di confusione. Qui viene presentato un protocollo per la delezione mediata da CRISPR/Cas9 in cellule staminali embrionali (ES) di topo F1 (Mus musculus129 x Mus castaneus). La delezione, lo screening e l'analisi dell'espressione monoallelica sono facilitati dai polimorfismi a singolo nucleotide (SNP) tra i due alleli che si verificano in media ogni 125 bp in queste cellule.

Introduzione

Elementi regolatori trascrizionali sono fondamentali per la messa a punto spazio-temporale dell'espressione genica durante lo sviluppo 1 e la modifica di questi elementi può portare a malattia a causa di espressione genica aberranti 2. Molte regioni associate alla malattia identificati da studi di associazione genome wide sono nelle regioni non codificanti e hanno caratteristiche di esaltatori trascrizionale 3-4. Identificare esaltatori e abbinandoli con i geni che regolano è complicato in quanto sono spesso trovano diversi kilobases lontano dai geni che regolano e possono essere attivati ​​in maniera tessuto-specifica 5-6.

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Protocollo

1. Progettare e Costruire il gRNA

  1. Per eliminare regioni enhancer utilizzano due gRNAs, una 5 'e uno 3' della regione di interesse. Utilizzare il mouse UCSC pista del browser genoma generato dal laboratorio Zhang per identificare uniche sequenze gRNA (http://www.genome-engineering.org 15). Successivo controllare questi gRNAs e la loro PAM adiacente per SNP e indels utilizzando strumenti online forniti dal Sanger Institute (www.sanger.ac.uk/sanger/Mouse_SnpViewer/rel-1211) 27-28. Per indirizzare entrambi gli alleli con uguale efficienza, evitare di sequenze / PAM gRNA che contengono un SNP o indel.
    1. Mentre la scelta del ....

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Risultati

Il protocollo qui descritto utilizza cellule ES F1 per studiare -Regolamento cis dell'espressione genica in cellule enhancer cancellato monoallelic generati utilizzando CRISPR / modifica del genoma Cas9 (Figura 1). Il gRNA e la progettazione di primer allele-specifica per la genotipizzazione e dell'espressione genica sono i fattori chiave di questo approccio. Ogni set di primer allele-specifica deve essere convalidato da qPCR per confermare allele specif.......

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Discussione

tecnologia di editing genoma mediata CRISPR / Cas9 fornisce un metodo semplice, veloce e poco costoso per la modifica del genoma. Il metodo descritto qui per generare e analizzare l'eliminazione enhancer monoallelic per la caratterizzazione funzionale potenziatore sfrutta SNPs nelle cellule di topo F1. I vantaggi di questo tipo di approccio sono: 1) le eliminazioni enhancer monoallelic non producono effetti confondenti che si verificano quando un esaltatore di critica viene eliminato da entrambi gli alleli, cioè.......

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Dichiarazioni

Gli autori hanno letto le politiche di Giove sul conflitto di interessi e non hanno conflitti di rivelare.

Ringraziamenti

Vorremmo ringraziare tutti i membri del laboratorio Mitchell per le utili discussioni. Questo lavoro è stato sostenuto dal Canadian Institutes of Health Research, dalla Canada Foundation for Innovation e dal Ministero della Ricerca e dell'Innovazione dell'Ontario (sovvenzioni operative e infrastrutturali detenute da JAM).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Phusion DNA polimerasi ad alta fedeltàNEBM0530SDNA polimerasi ad alta fedeltà utilizzata nell'assemblaggio del gRNA
Gibson Assembly Master MixNEBE2611L
gRNA_Cloning Vector Addgene41824Una sequenza target viene clonata in questo vettore per creare il plasmide gRNA
pCas9_GFPAddgene44719SpCas9 ottimizzato per il codone e EGFP plasmide di co-espressione
AflIINEBR0520S
EcoRINEBR3101S
Neon Transfection System 100 µ L KitLife TechnologiesMPK10096Tecnologia di trasfezione Microporator
prepGEMZyGEMPT10500reagente per estrazione di DNA genomico
Nucleo Spin Gel & Pulizia PCRMacherey-Nagel740609.5
Mini kit plasmidico ad alta velocitàGeneaidPD300
Maxi Plasmid Free Endotossin GeneaidPME25
SYBR select mix per CFXLife Technologies4472942reagente qPCR
Kit di sintesi iScript cDNABio-rad170-8891Reagente a trascrizione inversa
0,25% Tripsina con EDTALife Technologies25200072
PBS senza Ca/Mg2+SigmaD8537
0,5 M EDTABioshopEDT111.500
HBSSLife Technologies14175095
1 M HEPESLife Technologies13630080
BSA frazione V (7,5%)Life Technologies15260037
Max Efficiency DH5α celle competentiInvitrogen18258012
FBS ES qualificatoFBS è sottoposto a un test preliminare in cellule ES di topo per la pluripotenza
DMSOSigmaD2650
GlutamaxInvitrogen35050
DMEMLife Technologies11960069
Pencillin/StreptomycinInvitrogen15140
Sodium pyruvatoInvitrogen11360
Non essenziale aminoacidoInvitrogen11140
β-mercaptoetanoloSigmaM7522
piastra a 96 pozzettiSarstedt83.3924
Nastro sigillanteSarstedt95.1994
CoolCell LXBiocisionBCS-405contenitore per il congelamento cellulare senza alcool
CHIR99021Biovision1748-5Inibitore per colture cellulari F1 ES
PD0325901Invivogeninh-pd32Inibitore per colture cellulari F1 ES
LIFChemiconESG1107Inibitore per colture cellulari F1 ES

Riferimenti

  1. Sagai, T., Hosoya, M., Mizushina, Y., Tamura, M., Shiroishi, T. Elimination of a long-range cis-regulatory module causes complete loss of limb-specific Shh expression and truncation of the mouse limb. Development. 132 (4), 797-803 (2005).
  2. Kleinjan, D. A., Lettice, L. A.

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Ristampe e permessi

Tag

Delezione mediata da CRISPR/Cas9delezione monoallelicaprimer allele-specificipolimorfismi a singolo nucleotideprogettazione dell'RNA guidatrasfezione per elettroporazionesmistamento tramite citometria a flussoestrazione del DNA genomicoscreening delle delezioni tramite qPCR