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Articolo metodologico

Monitoraggio in tempo reale di intracellulare Bile Acid Dynamics Utilizzando una sede a FRET geneticamente codificato Bile Acid sensore

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DOI:

10.3791/53659

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4 gennaio 2016

In questo articolo

Sommario

Forniamo un protocollo dettagliato per studiare la dinamica degli acidi biliari nelle cellule viventi utilizzando un sensore FRET BAS geneticamente codificato. Questo sensore di acidi biliari rappresenta uno strumento unico per studiare (regolare) il trasporto degli acidi biliari e l'attivazione FXR in un'ampia gamma di tipi di cellule.

Abstract

Förster Resonance Energy Transfer (FRET) è diventato un potente strumento per monitorare il ripiegamento, l'interazione e la localizzazione delle proteine nelle singole cellule. I biosensori basati sul principio FRET hanno consentito la visualizzazione in tempo reale di eventi di segnalazione subcellulare in cellule vive con un'elevata risoluzione temporale e spaziale. Qui, descriviamo l'applicazione di un sensore di acidi biliari (BAS) geneticamente codificato che consiste in due fluorofori fusi al dominio di legame del ligando del recettore X farnesoide (FXR-LBD), formando così un sensore di acidi biliari che può essere attivato da un gran numero di specie di acidi biliari e altri ligandi FXR (sintetici). Questo sensore può essere mirato a diversi compartimenti cellulari, tra cui il nucleo (NucleoBAS) e il citosol (CytoBAS), per misurare localmente le concentrazioni di acidi biliari. Consente una rapida e semplice quantificazione dell'afflusso di acidi biliari cellulari, dell'efflusso e della distribuzione subcellulare degli acidi biliari endogeni senza la necessità di marcare con tag fluorescenti o radionuclei. Inoltre, i sensori BAS FRET possono essere utili per monitorare il legame del ligando FXR. Infine, dimostriamo che questo biosensore FRET può essere combinato con l'imaging di altri fluorofori spettralmente distinti. Ciò consente l'analisi combinata della dinamica intracellulare degli acidi biliari e i) la localizzazione e/o l'abbondanza delle proteine di interesse, o ii) la segnalazione intracellulare in una singola cellula.

Introduzione

Trasferimento Förster Resonance Energy (FRET) è ampiamente utilizzato per ottenere una migliore comprensione delle funzioni cellulari in cellule viventi con alta risoluzione temporale e spaziale 1. In FRET, l'energia da un fluoroforo donatore eccitato è trasferita ad un fluoroforo accettore. Efficienza FRET è fortemente dipendente dalla distanza tra il donatore e accettore fluoroforo e il loro orientamento ed è quindi una lettura sensibile cambiamenti conformazionali che influenzano i due fluorofori. Questo fenomeno viene sfruttato per generare biosensori basati FRET per l'imaging di piccole molecole. Cambiamenti nella loro concentrazione può esser....

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Protocollo

1. Trasfezione transitoria

Nota: CytoBAS e NucleoBAS (Vedere materiali Tabella) sono utilizzati con successo in diversi tipi di cellule, (U2OS, Huh7, HepG2, H69, MDCK e cellule HEK293T). Il requisito principale di utilizzare il sensore è che deve essere espressa, richiede il DNA codifica per entrare nella cellula.

  1. Celle di raccolta da un confluenti 80% 25 cm 2 pallone. Diluire le cellule nel mezzo di coltura completo adatti per la linea cellulare (10% FBS, 1% L-glutammina, 1% pen / strep per celle U2OS e Huh7).
  2. Cellule piatto alla densità desiderata in una sterile 8 vetro di copertura bene a camera (0,8

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Risultati

Il sensore FRET-BAS presentato si basa sul dominio di FXR (LBD-FXR) legame ligando attaccato a due fluorofori citrino e cerulee) e un motivo LXXLL. Questo sensore permette indagini trasporto degli acidi biliari in cellule con alta risoluzione spaziale e temporale (Figura 1 A) vivono. Mutazioni in ceruleo e citrino sono stati applicati per promuovere la formazione del complesso intramolecolare (Figura 1 <.......

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Discussione

Presentiamo qui un protocollo dettagliato per l'utilizzo di un romanzo geneticamente codificato sensore acido biliare capace di monitorare le dinamiche spazio-temporali di trasporto degli acidi biliari in cellule viventi. Questo biosensore è costituito da proteine ​​fluorescenti cerulee e citrino che sono fusi per FXR-LBD, formando così un sensore acido biliare basato FRET-(BAS).

Bile Acid sensore è relativamente semplice e conveniente in uso quando si ha esperienza di base con colture c.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da sovvenzioni iniziali del CER (ERC-2011-StG 280255 e ERC-2013-StG 337479) e dall'Organizzazione olandese per la ricerca e lo sviluppo sanitario (Vidi 91713319).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
CytoBAS Addgene62860
NucleoBAS Addgene62861
Dulbecco's modified Eagles media (DMEM)LonzaBE12-614FAlto glucosio senza L-glutammina
Penicillina-Streptomicina (penna/streptococco)Lonza17-602E
L-glutammina (200mM)Lonza17-605E
Siero fetale bovino (FBS)Invitrogen102-70
Tripsina-EDTA (10x)PalloneCC-5012
T-25VWR international392-0253
Pallone per colture cellulari T-175VWR international392-0238rivestita in laminina
VWR international734-0229rivestita in poli-L-lisina e laminina
VWR international392-0243Rivestita in laminina
Dietilamminoetile (DEAE) - DestranoSigma-AldrichD9885
Polietilenimmina (PEI) Brunschwig23966-2
G418 (geneticina) 50 mg/mlInvitrogen10131-027
Igromicina B, 50 mg/mlInvitrogen10687-010
Cilindro di clonazione (6 x 8 mm)Bellco2090-00608
L-15 Terreno di coltura LeibovitzInvitrogen21083-027Senza fenolo rosso
Polistirene tubo a fondo tondo (5 ml) Tubo FacsFalcon BD352008Senza tappo, non sterile
Falcon 2.063 provette (5 ml)Falcon BD352063Tappo a scatto, sterile
Nunc Lab-Tek Vetro di copertura a 8 pozzettiThermo scientific155409Sterile
filtrato al carbone FBSLife technologies12676011
GW4064Sigma-AldrichG5172
TCDCASigma-AldrichT6260
CDCASigma-AldrichC9377
Altri prodotti chimiciSigma-Aldrichn.v.t.
per colture cellulari Lonza rivestito in laminina Piastra a 6 pozzetti Piastra da 10 cm

Riferimenti

  1. Aoki, K., Kamioka, Y., Matsuda, M. Fluorescence resonance energy transfer imaging of cell signaling from in vitro to in vivo: basis of biosensor construction, live imaging, and image processing. Dev. Growth Differ. 55 (4), 515-522 (2013).
  2. Jares-Erijman, E. A., Jovin, T. M.

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Ristampe e permessi

Tag

Imaging FRETsensore codificato geneticamentelegame del ligando a FXRmicroscopia confocaleimaging di cellule viveFRET Cerulean Citrinelocalizzazione subcellularetrasporto degli acidi biliari