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NOTA:. Uno schema del protocollo generale qui descritto è dato in figura 1 Tutti i campioni utilizzati per lo sviluppo di questo metodo sono campioni diagnostici clinici in eccesso e hanno l'approvazione etica dal Comitato Etico London Bloomsbury.

Figura 1. Schema Illustrando il processo globale di creare un mirate CSF MRM peptidi LC-MS / MS dosaggio. Marcatori candidato per la valutazione vengono selezionati dai bersagli proteici. Attraverso l'uso di peptidi sintetizzati personalizzato, viene creato un metodo multiplex LC-MS / MS mirato. Dopo la valutazione, il test può essere utilizzato per valutare l'efficacia di potenziali marcatori di neurodegenerazione.
1. Peptide Selezione e design
NOTA: I criteri per un peptide marcatore è che deve essere univoco (proteotypic (quantotypic). Per determinare se un peptide è unico o meno, lo strumento 'esplosione' di ricerca sul sito web UniProt (http://www.uniprot.org/blast/) può essere utilizzato.
- Definire un elenco di proteine bersaglio (marcatori), vale a dire, ApoE (vedi tabella 2).
NOTA: se il marcatore è stato identificato da precedenti esperimenti di proteomica profiling 8, quindi selezionare il peptide che dà la migliore risposta da questo insieme di dati. - Se questa informazione non è disponibile, utilizzare i siti web open source, come ad esempio in silico tripsina digestione delle proteine bersaglio, utilizzando uno strumento software come MS-Digest.
- Scegliere il peptide che è trittico e non suscettibili di modificazione post traduzionale.
NOTA: Questa informazione può essere verificata sul sito UniProt www.uniprot.org. Evitare di peptidi soggette a modificazione chimica durante la preparazione dei campioni LC-MS. - Ordine sintesi personalizzata dei peptidi scelti.
NOTA: peptidi marker possono essere personalizzati sintetizzati dalle varie aziende commerciali. Per ApoE il peptide quantotypic utilizzato per misurare i livelli totali ApoE è stato determinato per essere AATVGSLAGQPLQER. Le sequenze peptidiche proteotypic utilizzati per determinare le varianti E2 ed E4 sono i peptidi trittico per la posizione 158 (RLAVYQAGAR e CLAVYQAGAR) e la posizione 112 (LGADMEDVCGR e LGADMEDVR), rispettivamente.
2. Preparazione dei peptidi standard
NOTA: Al fine di selezionare i migliori transizioni quantitativi, la rilevazione della matrice (CSF) deve essere ottimizzato. Il modo più efficace di ottimizzare peptidi multiplati è creare pool di peptidi a concentrazioni note. Queste piscine possono poi essere utilizzati per lo sviluppo del metodo e curve standard.
- Risospendere peptidi sintetici (dettagli peptide sono riportati nella tabella 2) a 1 mg / ml magazzinola concentrazione in base alle istruzioni produce. Per impostazione predefinita, se le istruzioni non sono disponibili, i peptidi risospendere in 50:50 (v / v) acetonitrile (ACN) / H 2 O.
- Preparare le diluizioni 1:10 del peptide dalla concentrazione magazzino e piscina 1.000 pmol di ciascun peptide in un tubo a bassa microcentrifuga vincolante. Asciugare giù in un concentratore di velocità-vac la piscina finale e conservare a -20 ° C. Preparare diverse piscine per uso futuro.
- Aliquota 100 ml di liquido cerebrospinale in basso tubi vincolanti. Liofilizzare il CSF.
- Risospendere un'aliquota di aggregati 1.000 pmol peptidi in tampone di digestione (100 mM Tris HCl, pH 7,8, 6 M urea, 2 M tiourea, 2% ASB14) per ottenere concentrazioni di 10 e 1 pmol / ml.
- Spike i peptidi raggruppati nelle liofilizzati aliquote di 100 microlitri di CSF a 0, 1, 2, 5, 10 e 15 le concentrazioni di PM. Aggiungere 20 ng di proteine non correlate intatto come il lievito enolasi di agire come standard interno e controllo per l'efficienza digestione del trypsin.
- Rabboccare le aliquote del QSC con digerire buffer per un importo finale di 20 ml. Vortice.
- Aggiungere 1,5 ml di ditiotreitolo (30 mg in 1 ml di 100 mM Tris HCl, pH 7.8) e agitare a temperatura ambiente per 1 ora.
- Aggiungere 3 ml di iodoacetamide (35 mg in 1 ml di 100 mM Tris HCl, pH 7.8) e agitare a temperatura ambiente per 45 minuti al buio.
- Aggiungere 165 ml di DDH 2 O.
- Aggiungere 10 ml di 0,1 mg / mL sequenziamento soluzione di tripsina grado modificata risospese in 50 mM di tampone di bicarbonato di ammonio, pH 7.8. Incubare a bagnomaria a 37 ° CO / N e fermare la digestione mediante congelamento campioni. Conservare digerisce a -20 ° C fino al momento di analizzare.
3. Ottimizzazione della SM Peptide Detection
- Copiare e incollare la sequenza del peptide di ottimizzare, in un software appropriato, ad esempio, Skyline 9. Clicca sulla sequenza peptidica per ottenere le informazionidi ioni di massa di ioni precursori e dei prodotti attesi.
- Diluire i peptidi a magazzino concentrazione (vedi paragrafo 2.1) a seguito di 1 ng / ml concentrazione per lo sviluppo del metodo MS.
- Direttamente infondere peptidi nello spettrometro di massa a portata ottimizzata (solitamente 0,1 - 0,8 ml / min) e sul 0 - 5% energia di collisione.
- Acquisire spettro MS al fine di individuare le sperimentali ioni precursori moltiplicano pagano 8. Scegli lo ione precursore (m / z) che da maggior intensità (doubly- o sono invitati ioni precursori triplamente-cariche).
- Reinfuse il peptide e applicare energia di collisione di frammentare il peptide dalla collisione indotta dissociazione (CID). Ottimizzare le energie cono e di collisione per ottenere il miglior modello di frammentazione (frammenti di ioni singolarmente o doppiamente cariche, e la massa dei frammenti di ioni preferibilmente più grande di ioni genitore, si consiglia).
- Verificare che le transizioni sperimentalmente ottenuti corrispondono transizioni generate in silico </ Em> (come descritto al punto 3.1). Salvare l'elenco di transizione nel file metodo MRM con almeno 2 passaggi più intensi per ione precursore. Include 2 transizioni: 1 per la quantificazione e 1 per la conferma nel test finale.
NOTA: Alcuni produttori SM hanno una funzione (ad esempio, acque IntelliStart) per MRM automatizzato o di ottimizzazione analisi SRM. Se possibile infondere peptidi con fasi mobili combinati al 50 - 70% ACN con il 0,1% FA.
Lo sviluppo del metodo 4. LC-MRM
NOTA: Analizzare la miscela di peptidi sintetici da un sistema di cromatografia liquida (UPLC) accoppiato ad uno spettrometro di massa a triplo quadrupolo Ultra Performance. Assicurarsi che la fonte è pulita. Solvente A è DDH 2 0 con 0,1% FA; Solvente B è ACN, con 0,1% FA.
- Utilizzare il sistema LC-MS dotato di una colonna UPLC ricco di C-18 fase (1,6 micron di diametro, 90 pori Å 2,1 mm x 50 mm di lunghezza) e collegato a una precolonna della stessa fase.
- Sbrinamento digerisce CSF su ghiaccio, centrifugare a 16.000 g per 10 minuti e trasferire 60 ml in 300 ml fiale inserto in vetro e conservare il resto torna a -20 ° C.
- Iniettare la più alta concentrazione dal punto curva standard utilizzando 10 min 1 - 40% di pendenza ACN lineare (vedi Tabella 1 per le impostazioni di pendenza)
- Aprire il cromatogramma e ritenzione nota tempo risultante e primi due più intense transizioni (quantitative) per peptide con tutte le transizioni create al punto 3.
- Sulla base di queste informazioni, aggiornare un metodo MRM 10 min (creato nel passo 3.6) con canali a tempo per misurare peptidi (vedi figura 2 per un esempio). Per mantenere la sensibilità, mantenere ogni canale punti per picco superiore a 8 e tempi maggiori di 0,01 sec per almeno una transizione per ogni peptide.
- Includono 'ritardi solvent' nel metodo MRM: una all'inizio fino a 10 secondi prima della prima eluizione di picco eun'altra alla fine del metodo, 20 sec dopo l'ultimo picco di eluizione. A tale scopo, selezionando "ritardi solvente" in eventi di metodo nel file metodo MS.
- Eseguire la curva standard attraverso il metodo MRM cronometrato e garantire non ci sono picchi di interferenza non specifici con transizioni (generate nel passaggio 3.6) controllando per la linearità.
- Determinare se i peptidi sono rilevabili mediante l'esecuzione non a spillo di controllo in pool e la malattia CSF attraverso il metodo.
- Rimuovere i peptidi che si trovano al di sotto del limite di rilevazione del test.

Figura 2. Esempio di una dinamica MRM MS Metodo. Timed canali di transizioni peptidici possono essere raggruppati in base a tempi di ritenzione stabiliti. L'attivazione di MRM per essere incorporato in modo temporizzato come i peptidi marker selezionato eluiscano dalla cromatografia su colonna, riduce al minimo il numero di Transitions per un periodo di tempo e aumenta la sensibilità del test. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.
5. L'aggiunta di standard interni
NOTA: Come descritto in precedenza 10, stabili standard interni marcati con isotopi possono essere inclusi nel test. A causa della spesa di questi standard, si consiglia di valutare prima peptidi nella matrice.
- Determinare i peptidi ideali ottimizzati per il rilevamento in CSF: scegliere i peptidi che sono i più ricorrenti, con la massima intensità e senza picchi di interferenza.
- Disegno peptidi corrispondenti a includere pesanti 13 C 15 N etichette aminoacidi che aumentano la massa del peptide di almeno 6 Da rispetto al peptide endogeno. Inoltre, aggiungere un tag di 4 - 6 aminoacidi aggiuntivi per sia la N- o C-terminale del Pep pesantemarea di controllare per la digestione trittico.
- Diluire stabili standard interni marcati con isotopi nel buffer di digestione (vedi punto 2.4). Determinare la quantità di standard interno marcati con isotopi stabili ideale che sarà a spillo nel liquido cerebrospinale di chiodare in vari livelli a seconda delle abundancies precedentemente osservati durante lo sviluppo. Mirano a raggiungere circa il rapporto 1: 1 di stabilità di serie marcati con isotopi di peptide endogeno.
NOTA: Stabile standard interni marcati con isotopi possono essere sintetizzati da varie società commerciali.
6. LC-MRM Assay del CSF campioni di pazienti
- Spike quantità di standard marcati con isotopi stabili ottimizzato in 100 ml di CSF e liofilizzare il composto.
- Risospendere il CSF in 20 ml di digest tampone ed eseguire la digestione di cui ai punti 2.7 - 2.10.
- Analizzare i campioni utilizzando il metodo LC-MRM sviluppato al punto 4.
- Per l'analisi quantitativa, eseguire il pep di seriemaree a concentrazioni di 0 -15 pmol in una curva standard. Vedere il punto 2.5 per la preparazione di curva standard.
Analisi 7. I dati
NOTA: quantitativa dei dati si basa sul rapporto di intensità della linea di base standard interni di picco (peptidi pesante etichettati). Informazioni dettagliate per quanto riguarda l'analisi dei dati SRM / MRM è stato descritto in precedenza 10. dati di rapporto possono essere usati in una curva standard per determinare i livelli assoluti o calcolare dalla concentrazione aggiunta del peptide pesanti marcato.
- Analizzare i dati LC-MRM utilizzando software standard spettrometri di massa costruttori 10. In alternativa, utilizzare il software Skyline per analizzare i dati quantitativi MRM 10.
- Controllare la sensibilità della corsa controllando la risposta di uno standard interno come l'enolasi lievito spillo o uno standard stabile isotopo marcato in ogni seduta. Assicurarsi che il coefficiente di variazione (CV) non è maggiore di25%.
- rivedere manualmente l'annotazione dei dati per garantire la precisione. Analizzare ogni peptide e il rapporto di uno standard interni marcati con isotopi stabili del caso, cioè, usare la versione stabile marcati con isotopi del peptide, se disponibile.
- Per ottenere valori assoluti di pmol per 100 ml di CSF, eseguire i dati rapporto attraverso opportuni curve standard che sono stati eseguiti allo stesso tempo.
- Calcolare il coefficiente di variazione (CV). CV per ogni peptide dovrebbe essere inferiore a 25% e inferiore al 15% per alte peptidi abbondanti.
NOTA: Valore assoluto pmol per 100 valori CSF microlitri può utilizzato nella successiva analisi statistica a valle.
8. Apolipoproteina E Isoform Stato
NOTA: per determinare lo stato ApoE isoforma, la presenza dei peptidi corrispondenti può essere effettuata determinando la presenza di ogni isoforma.
- Si consideri il ApoE in 100 ml di soglia CSF di> 1.000 segnale-to-rumore come positivo per questo peptide. Vedere la Figura 5 per i peptidi richiesti / assenti per determinare lo stato isoforma di un paziente. Determinare l'espressione allelica calcolando la% di ogni isoforma al totale espressione ApoE.