Due tecniche per creare Mice Hypoparathyroid: paratiroidectomia Uso GFP Ghiandole ed difterite-tossina-Mediated paratiroideo Ablazione

Summary

I topi con ipoparatiroidismo acquisito sarebbero utili per studiare nuove terapie farmacologiche per l'ipoparatiroidismo. Vengono dimostrate due procedure per creare tali topi. Il topo GFP-PTX è generato mediante paratiroidectomia chirurgica guidata da ghiandole paratiroidi fluorescenti verdi. Un secondo approccio, non chirurgico, si basa sull'espressione paratiroidea specifica del recettore della tossina difterica.

Abstract

L'ipoparatiroidismo (HP) è un disturbo caratterizzato da bassi livelli di PTH che portano a ipocalcemia, iperfosfatemia e basso turnover osseo. La causa più comune della malattia è la rimozione accidentale delle ghiandole paratiroidi durante la chirurgia della tiroide. Sono necessarie nuove terapie per l'HP, ma la loro sperimentazione richiede modelli animali affidabili di HP acquisita.

Qui, dimostriamo la generazione di due modelli murini di HP acquisiti. Nel modello GFP-PTX, i topi con proteina fluorescente verde (GFP) espressa specificamente nelle paratiroidi (PTHcre-mTmG) sono stati creati incrociando topi PTHcre⁺ con topi Rosa-mTmG^fl/fl. Le ghiandole paratiroidi fluorescenti verdi sono facilmente identificabili al microscopio da dissezione a fluorescenza e la paratiroidectomia viene eseguita in meno di 20 minuti. Dopo la chirurgia guidata dalla fluorescenza, i topi sono profondamente ipocalcemici. Contrariamente alla tradizionale tireo-paratiroidectomia, questo preciso approccio chirurgico lascia intatte le ghiandole tiroidee e la funzione tiroidea. Il secondo modello, che non richiede un intervento chirurgico, si basa su un approccio difterite-tossina. I topi PTHcre-iDTR, che esprimono il recettore della tossina difterica (DT) specificamente nelle paratiroidi, sono stati generati incrociando il topo DTR inducibile con il topo PTHcre. Le cellule paratiroidi sono quindi rese sensibili alla tossina difterica (DT) e possono essere distrutte selettivamente iniettando sistemicamente nei topi DT. Il fenotipo ipocalcemico risultante è stabile.

Introduction

Dal momento che la prima descrizione sistematica delle ghiandole paratiroidi in umano e in diverse altre specie di Sandström nel 1880 ^1, comprendere il significato di questo piccolo organo endocrino per la fisiologia umana e la malattia ha continuamente migliorato. ghiandole paratiroidee secernono l'ormone paratiroideo (PTH), il principale regolatore del metabolismo del calcio. PTH è anche un ormone importante per l'omeostasi fosfato e turnover osseo ^{1, 2.} Rimozione accidentale o danneggiamento delle paratiroidi durante l'intervento chirurgico al collo è la causa più comune di ipoparatiroidismo, una malattia caratterizzata da bassi livelli di calcio nel sangue, bassi PTH, e fosforo elevati ^1.

Per una migliore studio acquisito ipoparatiroidismo e nuove terapie di prova, affidabili e facilmente sono necessari modelli di mouse accessibili. I topi sono ampiamente utilizzati nella ricerca perché una grande varietà di strumenti genetici sono unvailable in questa specie che permettono sofisticati studi meccanicistici in vivo. Tuttavia, mentre paratiroidectomia chirurgica (PTX) può essere utilizzato in ratti ^{2, 3, 4, 5,} e mammiferi superiore ^{6, 7, 8,} è tecnicamente molto impegnativo in topi a causa delle piccole dimensioni delle ghiandole e la loro distribuzione anatomica variabile ^9. Pertanto, tiro-paratiroidectomia (TPTX) viene in genere eseguita in topi, in cui la tiroide e paratiroidi vengono rimossi insieme ^10. Tuttavia, i bassi livelli di ormone tiroideo sono un potenziale fattore confondente in esperimenti, complicando questo modello. Inoltre, cellule C all'interno della ghiandola tiroidea, che producono calcitonina, un ormone importante nella omeostasi del calcio nei roditori, sono anche perso dopo la rimozione dei thyroids ^11.

Diversi modelli genetici murini di ipoparatiroidismo esistono, che includono il mouse PTH-null ^12, il mouse GCM2-null ^13, e il mouse Nuf con una mutazione attivante del recettore sensibile al calcio (CaSR) ^{14, 15.} Tuttavia, questi difetti genetici sono già presenti durante lo sviluppo embrionale, e la funzione delle paratiroidi è quindi già alterata durante l'embriogenesi. Questo può influenzare lo sviluppo di organi, come lo scheletro. Questo contrasta con i pazienti con ipoparatiroidismo post-chirurgica che acquisiscono la malattia più tardi nella vita. Inoltre, alcuni di questi modelli di topo esibiscono mortalità precoce e riduzione della fertilità, il che complica ulteriormente il loro uso ^{12, 13, 14.}

Abbiamo sviluppato due nuovo mouse modelli per ipoparatiroidismo acquisito. Utilizzando topi geneticamente ingegnerizzati che esprimono GFP in particolare nelle paratiroidi permette alle ghiandole paratiroidee per essere facilmente identificati per la rimozione chirurgica senza rimuovere la ghiandola tiroidea. Questo mouse è stato generato attraversando il mouse PTH-Cre, che esprime Cre ricombinasi sotto il controllo del promotore 5,5 kb PTH ¹⁶ con il mouse ROSA ^mTmG. I PTHcre risultanti; topi mTmG esprimono la proteina fluorescente verde specificamente in cellule paratiroidee. Il secondo modello di topo utilizza lo stesso PTH-Cre, questa volta per rimuovere una cassetta di STOP dal mouse inducibile DTR, con conseguente espressione del recettore tossina difterica specifico nelle paratiroidi. La somministrazione sistemica di DT distrugge le cellule paratiroidee, rendendo gli animali hypoparathyroid senza intervento chirurgico.

I due modelli di mouse presentati in questo studio dimostrano un fenotipo hypocalcemic stabile negli peri di osservazione a tre mesiod. Le procedure sono facili da eseguire, il fenotipo è riproducibile, ed i topi hypoparathyroid presentano un alto tasso di sopravvivenza ^17.

Protocol

Questo studio è stato approvato dal Comitato Istituzionale Animal Care e Usa (IACUC) del Massachusetts General Hospital. Ottenere l'approvazione istituzionale adeguato per questo studio sugli animali prima di iniziare. Alcune tecniche potrebbero dover essere regolata in base alle esigenze IACUC locali.

1. I topi GFP-PTX

1. Ottenere topi PTHcre ⁺ e topi Rosa-mTmG a 8 - 10 settimane per un ulteriore accoppiamento.
2. Backcross le PTHcre ⁺ topi (mixed 129; FVB sfondo) con C57BL 6 topi / da 6 generazioni di ottenere topi con C57BL / 6 sfondo.
3. Topi Inbreed PTHcre ⁺ per ottenere PTHcre ^{+ / + 17} topi.
   NOTA: Per eseguire la genotipizzazione, estrarre il DNA dalla punta della coda e usarlo per PCR. I primer PCR per verificare la presenza di eterozigosi e omozigosi del transgene PTHcre sono i seguenti: Forward Primer A, CCTGTCAAGGATGTGGAAGA, invertire innesco A ', TCAGATCACACCACACAGCA, fORIZZONTE Primer B, CAGTTGTCTTTAGTTTACTCAGCATCAG, invertire Primer B ', GATAATCGCGAACATCTTCAGGTT ^17.
4. Croce PTHcre ^{+ / +} topo ¹⁶ con Rosa-mTmG topi ^18. Svezzare PTHcre; cuccioli mTmG quando 4 settimane di vita.
5. Anestetizzare 8 - 10 settimane PTHcre; topi mTmG mediante iniezione ip di tribromoethanol (Avertin) a 0,6 mg / g di peso corporeo, o altri agenti come ketamina / xylazina. Utilizzare buprenorfina 0,1 mg / kg sc ogni 12 h come analgesico per 48 ore dopo l'intervento secondo un protocollo approvato. Garantire un'adeguata profondità dell'anestesia dal riflesso punta pizzico ritiro o altri mezzi. Posto l'animale in posizione supina.
6. Estendere e preparare la regione ventrale del collo con la rasatura della pelle utilizzando lame singolo bordo. Disinfettare la pelle rasata con un tampone antisettico povidone iodio.
7. Coprire l'animale con teli chirurgici sterili per ridurre la contaminazione del sito chirurgico e utilizzare il microfono autoclavatostrumenti rosurgical per la procedura chirurgica.
8. Tagliare un'incisione di 2 cm longitudinale nella pelle con un bisturi chirurgico. Sezionare fascia e spingere le ghiandole salivari a lato per via smussa con pinze dentellate curve.
9. Sotto il microscopio dissezione con luce alogena e un 4 - di ingrandimento 5X, tagliare e separare i muscoli paratracheali con pinze taglienti suggerimenti ed esporre la trachea.
10. Identificare la ghiandola tiroidea con il destro e sinistro del lobo situato accanto alla trachea.
11. Accendere la sorgente di luce a luce fluorescente e visualizzare le due ghiandole paratiroidi verdi fluorescenti.
    NOTA: Tipicamente, i due ghiandole paratiroidee sono situati in corrispondenza o in prossimità della superficie delle ghiandole tiroidee, ma occasionalmente, si trovano più lontano.
12. Rimuovere con attenzione le ghiandole paratiroidi verdi con pinze chirurgiche e forbice. Utilizzare garza sterile per l'emostasi e controllare attentamente lungo la trachea per garantire che tutti i tessuti verde è stato rimosso.
13. Chiudere i muscoli paratracheali da sutura interrotta utilizzando 6-0 Polyglactin 910 punti di sutura. Chiudere l'incisione cutanea da Halsted sutura utilizzando 6-0 Polyglactin 910 punti di sutura.
14. Opzionale: Iniettare 10 ml / g di peso corporeo normale sterile 0,9% soluzione di cloruro di sodio per i topi per la sostituzione del fluido.
15. Posizionare animali postchirurgici ad una gabbia separato su un incubatore calda (37 ° C) per il recupero della temperatura corporea. Una volta che i topi sono svegli e nella posizione reclinata, mettere pellet chow e acqua con cibo gelatina sul pavimento della gabbia.
16. Dopo un periodo di osservazione post-chirurgica di 2 h, tornare mouse per l'impianto animale e seguire le disposizioni locali per la cura post-chirurgica.
17. 3 giorni dopo paratiroidectomia, ottenere il sangue coda 10 ml e misurare ionizzato Ca ⁺⁺ utilizzando un analizzatore di sangue, come il sistema di gas del sangue Ca ⁺⁺ analizzatore / pH. Risultati paratiroidectomia successo nel sangue ionizzati Ca ⁺⁺ uguale o inferiore a -2SD di sham-operated contopi trollo (1,20 mmol / L nei nostri esperimenti di n = 30).

2. PTH-Cre-IDTR Mice

1. Ottenere PTHcre ⁺ e DTR ^{fl / fl} topi a 8 - 10 settimane di vita per l'accoppiamento.
2. Backcross i topi PTHcre (misti 129; FVB sfondo) con C57BL 6 topi / da 6 generazioni di ottenere topi con C57BL / 6 sfondo.
3. Inbreed il PTHcre ⁺ (C57BL / 6 sfondo) topi per ottenere PTHcre ^{+ / + 17} topi.
   NOTA: Per eseguire la genotipizzazione, il DNA di topi punte di coda è stato estratto e utilizzato per la PCR. Primer di genotipizzazione: Forward Primer A, CCTGTCAAGGATGTGGAAGA, invertire innesco A ', TCAGATCACACCACACAGCA, Forward Primer B, CAGTTGTCTTTAGTTTACTCAGCATCAG, invertire Primer B', GATAATCGCGAACATCTTCAGGTT ^17.
4. Mate PTHcre ^{+ / +} topo ¹⁶ con DTR ^{fl / fl} topi ¹⁹ per ottenere topi PTHcre-IDTR.
5. Preparare la soluzione DT diluendo diphtheriuna polvere tossina con soluzione salina sterile ad una concentrazione di 0,5 mg / mL. filtro sterile, e memorizzare aliquote a -80 ° C.
6. Scegli 8 - 10 settimane i topi PTHcre-IDTR per esperimento iniezione. Scongelare DT un'aliquota a temperatura ambiente, amministrare DT intraperitoneale a 5 mg / kg (10 ml / g) di peso corporeo dell'animale. Per l'efficienza massima e almeno tossicità, amministrazione DT viene ripetuta per un totale di 2 iniezioni in un intervallo di 3 giorni ^17.
7. 3 giorni dopo la seconda iniezione, prendere 10 microlitri di sangue coda da ogni PTHcre-IDTR / PTHcre-IDTR-mTmG mouse e misurare Ca ⁺⁺ sangue utilizzando un sistema Emogasanalisi Ca ⁺⁺ analizzatore / pH.
   NOTA: Definiamo topi con sangue ionizzati Ca ⁺⁺ inferiore a 1,18 mmol / L come topi hypoparathyroid, che equivale 2SD al di sotto della media dei topi di controllo dei veicoli a iniezione (n = 22).

Results

Location della paratiroideo Ghiandole

In primo luogo, abbiamo registrato la distribuzione delle ghiandole paratiroidi di 54 topi PTHcre-mTmG come osservato al microscopio a fluorescenza dissezione. 74% (40/54) topi aveva due ghiandole paratiroidi verdi (Figura 1A, C, E), 26% (14/54) topi ha avuto un ulteriore terzo ghiandola paratiroidea (Figura 1B, D, F). Non sono state osservate mouse con una sola ghiandola o più di tre ghiandole. Di solito, ghiandole paratiroidi si trovavano vicino al confine superiore della ghiandola tiroidea (58%, 71/122, la figura 1A (1,2), B (1,2), C (2), D (1,2), E (2), F (3)). 27% (33/122) ghiandole erano situate vicino al bordo inferiore della ghiandola tiroidea (Figura 1C (1), D (3), F (1)), e il 13% (16/122) sono stati trova lontano dal tghiandola hyroid (Figura 1B (3), E (1), F (2)). I nostri risultati sono coerenti con precedenti ed estendere i risultati di varie posizioni delle ghiandole paratiroidi ^20.

I topi GFP-PTX

L'intero intervento chirurgico da anestesia per chiudere l'incisione cutanea ha preso circa 20 minuti per ogni mouse. Il tasso di sopravvivenza dei topi post-chirurgiche nel corso di un periodo di osservazione di 3 mesi è stata del 96,3% (53/55). 92,4% (49/53) topi GFP-PTX esposti i livelli di calcio ionizzato che erano 2 DS al di sotto della media dei topi di controllo sham o inferiore. Il fenotipo hypoparathyroid nei topi GFP-PTX (ipocalcemia, basso PTH e di fosfato elevata) è rimasto stabile per tutto il periodo di osservazione di 3 mesi. È importante sottolineare che la funzione tiroidea non era diverso dagli animali sham-operati 3 mesi dopo l'intervento (TSH = 42 ± 24 vs 30 ± 15 mU / L, p = 0,171; T4 = 3.0 ± 0,6 contro 3,1 ± 0,9 mg / dL, p = 0,707 (Figura 2).

PTH-cre-IDTR Mice

DT iniettato topi PTH-Cre-IDTR ipoparatiroidismo sviluppato (calcio nel sangue basso ionizzato, elevata di fosforo nel sangue, e inappropriatamente basso normali livelli di PTH). Abbiamo precedentemente riportato che le cellule positive pochi PTH sfuggire l'ablazione con tossina difterica, spiegando il misurabile circolante PTH e quindi la un po 'più mite fenotipo di questi topi ^17.

Ipoparatiroidismo nei topi GFP-PTX e PTH-cre-IDTR Mice

Sono state osservate significative riduzioni di Ca ⁺⁺ nel sangue e livelli di PTH sierici di GFP-PTX topi 3 giorni dopo l'intervento chirurgico, rispetto ai livelli trovati in topi sham (Ca ⁺⁺ = 1.05 ± 0.40 vs. (Figura 3A, ristampato con il permesso (riferimento # 17)). Dopo 2 iniezioni di 5 mg / kg DT ad intervalli di 3 giorni, la dose e il regime ottimizzato per utilizzare la quantità minima di DT per dare il fenotipo hypoparathyroid massima, il DT iniettato topi-IDTR PTH-cre mostrato ipocalcemia significativa e ridotta PTH rispetto ai topi di controllo del veicolo, che persistevano nel corso del periodo di osservazione di 90 giorni (Ca ⁺⁺ = 1.10 ± 0.07 mmol / L vs 1.26 ± 0.05 mmol / L, p <0.05; PTH = 218 ± 156 pg / mL vs 572 ± 164 pg / mL, p <0,05) (Figura 3B, ristampato con il permesso (riferimento # 17)).

Figura 1: (A, C, E) o tre (B, D, F) ghiandole paratiroidee verdi. La maggior parte delle ghiandole paratiroidi si trovavano vicino al confine superiore (A (1,2), B (1,2), (2) C, D (1,2), E (2), F (3) o in prossimità del bordo inferiore della ghiandola tiroidea (C (1), D (3), F (1)). In rari casi, alcuni sono stati trova ectopica (B (3), E (1), F (2)). clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 2: TSH e T4 Livello di topi GFP-PTX. 3 mesi dopo la GFP-PTX, il siero è stato ottenuto per il TSH e T4 measurem Ent. GFP-PTX topi hanno mostrato concentrazioni di TSH (42 ± 24 mU / L) concentrazioni di (A) e T4 (3,0 ± 0,6 mg / dL) (B) che non erano differenti da topi di controllo (TSH = 30 ± 15 mU / L, P = 0,171, n = 11, T4 = 3.1 ± 0.9, p = 0,707, n = 11). Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 3: Blood Ca ⁺⁺ e livelli di PTH nei topi GFP-PTX e DT per colata PTH-cre-IDTR topi. Entrambi i topi GFP-PTX (A) e DT iniettati PTH-cre-IDTR topi (B) esposto ipocalcemia stabile e ridotti livelli di PTH oltre 3 mesi periodo di osservazione (N = 6-8, *** p <0,001) (ristampato con il permesso di riferimento # 17).es / ftp_upload / 55010 / 55010fig3large.jpg "target =" _ blank "> Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Discussion

Dimostriamo la tecnica della paratiroidectomia GFP-guidato utilizzando topi transgenici con espressione GFP selettivamente nelle ghiandole paratiroidi. Nei PTHcre; topi mTmG, il doppio di fluorescenza (GFP verde nelle cellule Cre-espresse e rosso pomodoro in non-Cre espresso cellule) ci ha permesso di identificare con chiarezza, e di rimuovere con precisione tutte le ghiandole paratiroidee senza rimuovere le tiroide. Mentre noi preferiamo l'uso dei topi mTmG doppio fluorescenza per la capacità di identificare il tessuto non paratiroideo rosso fluorescente, la nostra procedura dovrebbe funzionare bene anche con gli animali fluorescenti singoli, come il rosso del pomodoro (B6.Cg-Ct (ROSA) 26Sortm14 ( CAG-tdTomato) HZE / J) del mouse. La procedura è relativamente facile da eseguire, richiede circa 20 minuti per topo, e si traduce in una grave e sostenuta fenotipo hypoparathyroid.

Inoltre, un altro vantaggio delle ghiandole paratiroidee GFP-positive è la facilità di rilevazione delle ghiandole paratiroidee aberranti. I nostri studi dimostranomislocalization delle paratiroidi in circa un quarto di topi B6 (Figura 1), che vengono facilmente rilevati nel nostro modello di topo dalla fluorescenza verde. Contrariamente a tiro-paratiroidectomia, la nostra tecnica evita la rimozione della tiroide con conseguente necessità di sostituzione dell'ormone tiroideo e l'effetto sconosciuta di rimozione della tiroide cellule C calcitonina produttrici. ghiandole paratiroidee fluorescente potrebbero essere utilizzati anche per altre indagini che richiedono l'isolamento delle ghiandole paratiroidee. La limitazione di questo modello include il requisito per la chirurgia. sono richieste competenze microchirurgia base e un microscopio dissezione con una sorgente luminosa fluorescente.

è dimostrata Una seconda tecnica per generare topi hypoparathyroid che elimina la necessità di un intervento chirurgico. Tossina difterica-topi trattati PTHcre-IDTR mostrano una lieve ipoparatiroidismo fenotipo, ma richiedono semplicemente l'iniezione di DT per via intraperitoneale nel mouse. La parte critica FOR generando questo modello è stato l'ottimizzazione della dose e regime di dosaggio. Alte dosi di DT ha portato alla tossicità ma basse dosi diminuito l'efficacia di questo approccio. Abbiamo determinato che il reggimento dose di 2 iniezioni a 5 mg / kg, somministrata 3 giorni di distanza, ha provocato ipocalcemia affidabile e stabile senza / minimo la mortalità.

In definitiva, ci auguriamo che questi due approcci forniscono modelli utili del mouse per ipoparatiroidismo acquisito. Utilizzando un romanzo PTH lunga durata d'azione, abbiamo riportato il primo uso di entrambi questi modelli nel determinare l'efficacia di nuovi farmaci per ipoparatiroidismo ^17.

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Topi ROSAmT/mG	The Jackson Laboratory	7676
PTH-Cre topi	The Jackson Laboratory	5989
iDTRmice	The Jackson Laboratory	7900
6-0 poliglactin 910 sutura con ago	Ethicon, Inc	J510G
Lame di rasoio di sicurezza a filo singolo	American Safety Razor Company	66-0089
Rasoio di sicurezza monouso in piuma di bisturi	Co., LTD	72042-11
Pastiglie per la preparazione dello iodio povidone	Dynarex Corporation	1108
Busse di garza	a strati. Inc	BHD707
Soluzione di cloruro di sodio allo 0,9%	HOSPIRA Worldwide, Inc	07983-09
Siringa da insulina da 1 ml 29 g	BECTON DICKINSON	329622
Teli chirurgici per incisione	3M	6640EZ
Dumstar Pinza per biologia	Roboz Surgical Instrument Co., Inc	RS-4984
Forbici a molla per micro dissezione	Roboz Surgical Instrument Co., Inc	RS-5605
Porta aghi	MILTEX., Inc	V98-42
2,2,2-Tribrometanolo	Sigma-Aldrich	T48402
2-Metil-2-Butanolo	Sigma-Aldrich	152463	2,2,2-tribrometanolo
	Sigma-Aldrich	D0564	Sciogliere in una soluzione di cloruro di sodio allo 0,9% a 1 mg/mL come soluzione madre in -80 ° C
Provette capillari per la raccolta del sangue Multicap	Siemens Healthcare Diagnostics Ltd	Per la raccolta del sangue nell'analisi iCa2+ utilizzando RapidLab 348 Analizzatore Ca2+/pH
RapidLab 348 Ca2+/pH Analizzatore	Siemens Healthcare		Per l'analisi iCa2+