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Articolo metodologico

Utilizzando modelli di Zebrafish di umana virus infezioni allo schermo farmaci antivirali e caratterizzare host immune cellulo Risposte

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DOI:

10.3791/55235

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20 gennaio 2017

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In questo articolo

Sommario

Vengono dimostrati modelli di infezione sistemica e localizzata da zebrafish per il virus dell'influenza umana A. Utilizzando un modello di infezione sistemica, il pesce zebra può essere utilizzato per lo screening di farmaci antivirali. Utilizzando un modello di infezione localizzata, il pesce zebra può essere utilizzato per caratterizzare le risposte delle cellule immunitarie dell'ospite.

Abstract

Ogni anno, le epidemie di influenza stagionale influenzano profondamente le società di tutto il mondo. Nonostante gli sforzi globali, l'influenza rimane un onere sanitario intrattabile. La strategia principale per ridurre le infezioni è la vaccinazione annuale. Nei soggetti che hanno contratto l'influenza, i farmaci antivirali possono mitigare i sintomi. C'è una chiara e insoddisfatta necessità di sviluppare strategie alternative per combattere l'influenza. Diversi modelli animali sono stati creati per modellare le interazioni ospite-influenza. Qui vengono descritti i protocolli per la generazione di modelli di zebrafish per l'infezione sistemica e localizzata da virus dell'influenza umana A (IAV). Utilizzando un modello di infezione sistemica da IAV, è possibile eseguire lo screening di piccole molecole con potenziale attività antivirale. Come prova di principio, viene descritto un protocollo che dimostra l'efficacia del farmaco antivirale Zanamivir nel pesce zebra infetto da IAV. Mostra come i fenotipi della malattia possano essere quantificati per valutare l'efficacia relativa di potenziali antivirali nel pesce zebra infetto da IAV. Negli ultimi anni, c'è stato un crescente apprezzamento per il ruolo critico che i neutrofili svolgono nella risposta dell'ospite umano all'infezione influenzale. Il pesce zebra ha dimostrato di essere un modello indispensabile per lo studio della biologia dei neutrofili, con impatti diretti sulla medicina umana. Viene descritto un protocollo per generare un'infezione localizzata da IAV nella linea di pesce zebra Tg(mpx:mCherry) per studiare la biologia dei neutrofili nel contesto di un'infezione virale localizzata. Il reclutamento di neutrofili in siti di infezione localizzati fornisce un ulteriore fenotipo quantificabile per valutare manipolazioni sperimentali che possono avere applicazioni terapeutiche. Entrambi i protocolli di zebrafish descritti ricapitolano fedelmente gli aspetti dell'infezione umana da IAV. Il modello di zebrafish possiede numerosi vantaggi intrinseci, tra cui l'elevata fecondità, la chiarezza ottica, l'adattabilità allo screening farmacologico e la disponibilità di linee transgeniche, comprese quelle in cui le cellule immunitarie come i neutrofili sono marcate con proteine fluorescenti. I protocolli qui descritti sfruttano questi vantaggi e hanno il potenziale per rivelare intuizioni critiche sulle interazioni ospite-IAV che potrebbero alla fine tradursi nella clinica.

Introduzione

Secondo l'Organizzazione Mondiale della Sanità (OMS), i virus influenzali infettano il 5-10% degli adulti e il 20-30% dei bambini ogni anno e causano 3-5 milioni di casi di malattie gravi e fino a 500.000 morti in tutto il mondo 1. vaccinazioni annuali contro l'influenza rimangono l'opzione migliore per prevenire la malattia. Gli sforzi come il piano d'azione globale che hanno aumentato l'uso vaccino stagionale, la capacità di produzione di vaccini, e la ricerca e lo sviluppo in più potenti strategie vaccinali al fine di ridurre la morbilità e la mortalità associate con focolai di influenza stagionale 2.

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Protocollo

Tutti i lavori devono essere eseguiti utilizzando il livello di biosicurezza 2 (o BSL2) standard descritti dai Centri statunitensi per il controllo delle malattie (CDC) e in conformità con le direttive stabilite dalla Institutional Animal Care e sull'uso di comitati (IACUC). Si prega di conferire con i funzionari competenti per garantire la sicurezza e la conformità.

1. Zebrafish Cura e manutenzione

  1. Spawn zebrafish e raccogliere il numero necessario di embrioni per gli esperimenti. Quando necessario, vasche di allevamento di massa, come quelli descritti dal Adatto et al. 32, possono essere i....

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Risultati

Qui, vengono forniti dati che dimostrano come infezioni sistemiche IAV in zebrafish può essere utilizzato per testare l'efficacia dei farmaci (Figura 1A). Embrioni a 48 ore post-fertilizzazione sono iniettati con APR8 (figure 1C, 1F), X-31 (figure 1D, 1G), o NS1-GFP (Figure 1H-1I) attraverso il condotto di Cuvier di avviare una infezione virale. Un altro coorte di embrioni a 48 ore post-fertilizzazione sono stati ini.......

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Discussione

Per massimizzare i benefici ottenuti dall'utilizzo di un piccolo animale di modellare interazioni ospite-patogeno umano, è importante per inquadrare domande di ricerca e ipotesi di test che capitalizzare i vantaggi intrinseci del sistema modello. Come modello per l'infezione IAV umana, il pesce zebra ha diversi punti di forza, tra cui ad alta fecondità, chiarezza ottica, subordinazione al vaglio di farmaci, e la disponibilità di linee transgeniche che etichetta le cellule immunitarie come neutrofili. Il zebrafis.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori desiderano ringraziare Mark Nilan per la cura e il mantenimento del pesce zebra e Meghan Breitbach e Deborah Bouchard per la propagazione di NS1-GFP e la determinazione dei titoli IAV. Questa ricerca è stata supportata dalla sovvenzione NIGMS, NIH P20GM103534 e dalla Maine Agricultural and Forest Experiment Station (numero di pubblicazione 3493).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Instant OceanSpectrum BrandsSS15-10
Piastre di Petri monouso sterili da 100 mm x 25 mm VWR89107-632
Pipette di trasferimento Fisherbrand13-711-7M
Tricaine-S (MS-222)Capillare in
con filamento Strumento Sutter BF120-69-10
Estrattore per micropipette fiammante/marrone Sutter InstrumentP-97
AgarosioLonza50004
ZanamivirAK ScientificG939
Dumont #5 pincipeMicroscopia elettronica Scienze72700-D
Punte per microloaderEppendorf930001007
Olio da immersione per microscopioOlympusIMMOIL-F30CC
Vetrino di calibrazione del tavolino per microscopio AmScopeMR095
MPPI-3 iniettore di pressione Strumentazione scientifica applicata Stereomicroscopio
OlympusSZ61
Unità di contropressioneStrumentazione scientifica applicata Kit
Strumentazione scientifica applicataInterruttore
Strumentazione scientifica applicataFSW
Strumentazione Scientifica ApplicataMM33
Base MagneticaStrumentazione Scientifica ApplicataBase Magnetica
Rosso Fenolo Sigma-Aldrich P-4758
Incubatrice a bassa temperaturaVWR2020
SteREO Discovery.V12Zeiss
IlluminatorZeissHXP 200C
Sorgente di luce freddaZeissCL6000 LED
Piastra multipozzetto con fondo in vetro, 24 pozzettiMattekP24G-0-13-F
Microscopio confocaleOlympusIX-81 con sistema confocale a scansione laser FV-1000
Charles River 490710
Influenza A X-31, A/Aichi/68 (H3N2) Charles River 
Influenza NS1-GFPReferenziato in Manicassamia et al. 2010
Tg(mpx:mCherry)Citato in Lam et al. 2013
vetro borosilicato chimico occidentale porta micropipette BPU a pedale MPIP Micromanipolatore Software Fluoview Olympus Prism v6 GraphPad Influenza A/PR/8/34 (H1N1) virus 490715

Riferimenti

  1. W.H.O. Influenza (Seasonal). , Available from: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs211/en/ (2014).
  2. W.H.O. W.H.O. Global Action Plan.. , Available from: http://www.who.int/influenza_vaccines_plan/en/ (2011).
  3. De Clercq, E. Antiviral agents active against influenza A viruses. Nat Rev Drug Discov

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Ristampe e permessi

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