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Articolo metodologico

Microscopia a forza atomica Ricerche del riconoscimento delle lesioni del DNA nella riparazione di excisione dei nucleotidi

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DOI:

10.3791/55501

24 maggio 2017

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Qui, lo studio di diversi approcci di riconoscimento delle lesioni del DNA tramite l'imaging AFM a singola molecola è dimostrato con il sistema di riparazione per escissione nucleotidica come esempio. Vengono descritte le procedure di preparazione dei campioni di DNA e proteine e i dettagli sperimentali e analitici per gli esperimenti AFM.

Abstract

L'imaging AFM è una tecnica potente per lo studio delle interazioni proteina-DNA. Questo metodo a singola molecola consente la risoluzione simultanea di diverse molecole e assemblaggi molecolari in un campione eterogeneo. Nel particolare contesto dei sistemi proteici che interagiscono con il DNA, si possono quindi distinguere diverse forme di complessi proteici e le loro corrispondenti posizioni di legame su siti bersaglio contenenti frammenti di DNA. Qui viene presentata un'applicazione dell'AFM allo studio del riconoscimento delle lesioni del DNA nei sistemi di riparazione del DNA (NER) di escissione nucleotidica procariotica ed eucariotica. Vengono descritte le procedure di preparazione dei campioni di DNA e proteine e vengono forniti dettagli sperimentali e analitici degli esperimenti. I dati consentono di trarre importanti conclusioni sulle strategie con cui la verifica del sito bersaglio può essere raggiunta dalle proteine NER. È interessante notare che indicano diversi approcci di riconoscimento e identificazione delle lesioni per il sistema NER eucariotico, a seconda del tipo di lesione. Inoltre, le distinte proprietà strutturali delle due diverse elicasi coinvolte nel NER procariotico ed eucariotico determinano e spiegano le diverse strategie osservate per questi due sistemi. È importante sottolineare che questi approcci sperimentali e analitici possono essere applicati non solo allo studio della riparazione del DNA, ma anche in modo molto simile ad altri sistemi proteici che interagiscono con il DNA, come quelli coinvolti nei processi di replicazione o trascrizione.

Introduzione

La microscopia a forza atomica (AFM) è una tecnica potente per l'analisi delle interazioni proteine-DNA 1 , 2 , 3 , 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 . Richiede solo basse quantità di materiale di campionamento per visualizzare direttamente campioni eterogenei con una risoluzione a livello di singola molecola. L'eterogeneità può derivare da diversi stati conformazionali o ....

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Protocollo

1. Preparazione del campione

  1. Preparazione dei substrati del DNA 11
    1. Generare un gap di ssDNA nel plasmide
      1. Completamente digerire un campione del plasmide (qui: modificato pUC19, pUC19N) in un tubo di reazione con una appropriata nickasi (qui: Nt.BstNBI) seguita da inattivazione del calore enzimatico, utilizzando condizioni secondo il protocollo del produttore (si veda la figura 1 per uno schema presentazione). Iniziare con ~ 50 μL e ~ 500 nM plasmide per una resa sufficiente.
      2. Verificare il plasmide di nicking mediante elettroforesi di agarosio su campioni diluiti (~ 20 nM)

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Risultati

Distinguere tra diversi tipi complessi basati su volumi complessi di proteine

L'attività elicolare dell'elicasica NER prokaryotica UvrB è stimolata dal legame del DNA 22 , 23 . UvrB richiede una regione non distinta nel DNA (una bolla del DNA) per caricare correttamente su uno dei due singoli fili di ssDNA. In vivo , questa struttura del DNA è fornita dal.......

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Discussione

Analisi statistiche AFM di posizioni di legame di proteine ​​su lunghi frammenti di DNA che contengono siti target specifici possono rivelare dettagli interessanti sulle strategie particolari impiegate dalla proteina per riconoscere questi siti 2 , 3 , 4 , 5 , 6 . Per interpretare le distribuzioni di posizione risultanti, le posizioni degli obiettivi nel DNA .......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno niente da rivelare.

Ringraziamenti

PUC19N, oligonucleotidi contenenti CPD e p44 sono stati gentilmente forniti da Samuel Wilson, Korbinian Heil e Thomas Carell, e rispettivamente da Gudrun Michels e Caroline Kisker. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni della Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) FZ82 e TE-671/4 a IT.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Sonda a forza molecolare (MFP) 3DAsylum ResearchN/A microscopioforza atomica (AFM)
Precision 390DELLN/Acomputer
ThermoMixer e blocco da 1,5 mLEppendorf5382000015blocco termico per la preparazione del DNA
Rotilabo Block-Heater H 250 e blocchi per provette da 0,5 mLCarl Roth GmbHY264.1 & Y267.1blocco termico per incubazioni di proteine-DNA
Mini-Sub Cell GTBio-Rad Laboratories GmbH1704467camera per elettroforesi con colata di gel e alimentatore
Power Pac BasicBio-Rad Laboratories GmbH1645050alimentatore per elettroforesi
Centifuge 5415 D con rotoreEppendorf2262120-3centrifuga da tavolo
Ultra-Lum elettronico UV transillumonator MEB-15Ultralum900-1322-02Tavolo di irradiazione UV
NanoDrop ND-1000VWR International / PEQLAB Biotechnologie GmbHN/ASpettrofotometro UV
TKAX-CAD con 0,2 &; m capsula filtranteUnity Lab ServicesN/A unitàdeionizzazione e filtraggio dell'acqua
NameCompanyNumero di catalogoComments
Software
MFP su Igor ProAsylum ResearchN/AAFM software
ImageJ (open source Java elaborazione di immagini)NIH ImageN/ASoftware di analisi delle immagini
Excel (Microsoft Office)Microsoft CorporationN/Asoftware di analisi dei dati
Origin9 / Origin2016OriginLab CorporationN/A Softwaredi analisi statistica dei dati e grafici
NameAziendaNumero di catalogoCommenti
Materiale
OMCL-AC240TSOlympusOMCL-AC240TSAFM a sbalzo
grado V-5 muscoviteSPI Forniture1805fogli di mica
Amicon Ultra 0,5 mL 50kUltracell Millipore Ireland Ltd.UFC505096filtri per centrifughe
NucleoSpin Extract II   Macherey-Nagel GmbH740 609.250Kit di estrazione su gel di agarosio
Carta di cellulosa Rotilabo tipo 111ACarl Roth GmbHAP59.1Carta assorbente per deposizione AFM
Anatop 25 (0,02 μ m)Whatman GmbH6809-2102filtro per siringa
SSpI, BspQINew England Biolabs (NEB)R0132, R0712enzimi di restrizione per la preparazione del substrato del DNA
XhoI, BglIIR0146, R0144enzimi di restrizione per la preparazione del DNA controlli
intaccamento enzima di restrizione Nt.BstNBINew England Biolabs (NEB)R0607nickase
T4 DNA ligasiNew England Biolabs (NEB)M0202SLigase
Tris, HEPESCarl Roth GmbH4855, 9105sostanze chimiche tampone
NaCl, MgCl2, KCl, MgAcetateCarl Roth GmbH3957, HN03, HN02, P026sostanze chimiche saline
NaAcSigma-Aldrich Chemie GmbH32318sostanze chimiche saline
DTT, TCEP, EDTA6908, HN95, 8040sostanze chimiche/ reagenti
agarosio, acido acetico, HClCarl Roth GmbH2267, 3738, K025reagenti
ATPCarl Roth GmbHK054nucleotidi
oligonucleotide #1 nella Tabella 1Biomeripersonalizzatioligonucleotidi oligonucleotidi
#2, #3 e #6 nella Tabella 1Integrated DNA Technologies (IDT)fluoresceina personalizzata contenente oligonucleotidi
oligonucleotidi #4  e #5 nella Tabella 1privato (disponibile ad esempio da TriLink o GlenResearch)CPD contenente oligonucleotidi
Provetta di reazione SafeSeal 0,5 mL e 1,5 mLProvette di incubazioneSarstedt72.704 e 72.706
GeneRuler 1 kbThermo ScientificSM0311Scala del DNA
6x colorante concentrato di caricamento del gel violaNuovo Inghilterra Biolabs (NEB)51406colorante di caricamento del DNA
Midori Green Nippon Genetics Europe GmbH999MG28055Colorazione del DNA
a di DNA complementari

Riferimenti

  1. Janicijevic, A., Ristic, D., Wyman, C. The molecular machines of DNA repair: scanning force microscopy analysis of their architecture. J. Microsc. 212 (3), 264-272 (2003).
  2. Wang, H., et al. DNA bending and unbending by MutS ....

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Ristampe e permessi

Tag

Interazioni proteina-DNAimaging AFMpreparazione del substrato di DNAcomplesso XPD p44attivazione dell'elicasiposizione di legame della lesioneanalisi dei dati AFM