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Articolo metodologico

Sviluppo di proteine ricombinanti per trattare il dolore cronico

9.4K visualizzazioni

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DOI:

10.3791/57071

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11 aprile 2018

 ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Translational Immunology, University Medical Center Utrecht, Utrecht University, 2Department of Rheumatology & Clinical Immunology, University Medical Center Utrecht, Utrecht University, 3Laboratory of Neuroimmunology and Developmental Origins of Disease, University Medical Center Utrecht, Utrecht University

In questo articolo

Sommario

In questo documento vengono forniti dettagli per i metodi di produzione e controllo di qualità di una proteina di fusione ricombinante IL4-10. Mostriamo anche come testare l'efficacia di questa proteina a risolvere il dolore in un modello murino di dolore infiammatorio.

Abstract

Dolore cronico è difficile da trattare e sono urgentemente necessari nuovi approcci per risolvere il dolore persistente. Citochine antinfiammatorie sono promettenti candidati per il trattamento di condizioni debilitanti di dolore a causa della loro capacità di regolare le interazioni neuro-immunitaria aberrante. Tuttavia, fisiologicamente lavorano in una rete di varie citochine, e di conseguenza il loro effetto terapeutico potrebbe non essere ottima quando usati come farmaci stand-alone. Per ovviare a questa limitazione, abbiamo sviluppato una proteina di fusione delle citochine antinfiammatorie IL4 e IL10. Qui, descriviamo i metodi di produzione e controllo di qualità della proteina di fusione ricombinante IL4-10 e testiamo l'efficacia della proteina di fusione IL4-10 a risolvere il dolore in un modello murino di dolore infiammatorio persistente.

Introduzione

Dolore cronico rimane uno dei problemi medici più debilitanti e sotto-trattata del XXI secolo, che interessano > 20% della popolazione adulta1,2. Tuttavia, trattamenti per fornire sollievo dal dolore cronico sono spesso inefficaci o devono essere interrotto a causa di gravi effetti collaterali3. Cosa importante, attualmente disponibili farmaci solo fornire sollievo sintomatico, ma non significativamente modificare o curare il dolore cronico. Anche se il dolore cronico sembra essere un disturbo neurologico, prova suggerisce la partecipazione del sistema immunitario nel dolore cronico sviluppo4,5. Inoltre, gli approcci basati su immunitario per trattare il dolore stanno emergendo. Ad esempio, citochine antinfiammatorie inibiscono il dolore in diversi modelli di dolore cronico6,7,8. Tuttavia, citochine antinfiammatorie hanno una breve emivita, riducendo i loro potenziali effetti d'inibizione dolore. Inoltre, citochine antinfiammatorie funzionano più in modo ottimale in concerto con l'altro. Per superare queste limitazioni, abbiamo recentemente fuso le citochine anti-infiammatorie interleukin-4 (IL4) e interleukin-10 (IL10) in una molecola. La proteina di fusione di IL4-10 Mostra la superiore efficacia nell'inibizione del dolore infiammatorio e neuropatico cronico rispetto ai singoli citochine9. Qui descriviamo come tale proteina di fusione viene prodotto, purificato, e come la sua qualità è controllata.

Proteina di fusione di IL4-10 viene prodotta in cellule umane di trasfezione transiente di cellule HEK293-F con un vettore di espressione di pUPE che trasportano la sequenza di cDNA che codifica la proteina di fusione di IL4-10. Cellule HEK293-F sono scelti per consentire la modificazione post-traduzionale della proteina, qualcosa che non si verifica in sistemi di espressione batterica. Per ottimizzare glycan tappatura con acido sialico, cDNA che codifica beta-galactoside-2, 3-sialil-transferasi è incorporata nel vettore come un transgene secondo. La proteina di fusione viene purificata mediante purificazione di affinità della proteina del surnatante della cultura, perché è più potente di purificazione da altri metodi ad esempio esclusione dimensionale o scambio ionico cromatografia10,11. Per purificare la proteina di fusione di IL4-10, abbiamo usato in-house made anticorpi monoclonali contro IL4. Valutazione della purezza e bioattività di proteina di fusione purificata IL4-10 viene eseguite come parte del controllo di qualità. La purezza del prodotto batch viene valutata dal sodio dodecil solfato elettroforesi del Gel di poliacrilammide (SDS-PAGE) e alta pressione Size Exclusion Chromatography (HP-SEC). La bioattività della proteina di fusione IL4-10 viene valutata misurando la capacità di inibire il lipopolisaccaride (LPS)-ha indotto la produzione di fattore di necrosi tumorale-alfa (TNFα) in colture di sangue intero e nel confronto alla combinazione dell'individuo citochine.

Infine, al fine di verificare la capacità delle proteine di fusione di IL4-10 di inibire il dolore cronico, descriviamo come la proteina di fusione possa essere testata come analgesico in modelli murini ampiamente usato di dolore infiammatorio persistente12,13,14 . Qui descriviamo i metodi di un modello di dolore infiammatorio. Tuttavia, è importante notare che altri modelli di dolore può essere usato (ad es., modelli di dolore neuropatico), a seconda della ricerca domande che hanno bisogno di essere risolta. Per valutare il dolore in questi modelli, è importante utilizzare una varietà di misure comportamentali che includono evocate e di dolore non-evocati. Qui, abbiamo descritto i metodi di valutazione per i cambiamenti nelle risposte comportamentali meccanicamente e termicamente evocate. Sensibilità meccanica agli stimoli innocui viene valutata utilizzando il test di Von Frey, mentre la sensibilità termica è valutata con il test di Hargreaves. Cosa importante, non evocato iperalgesia/allodinia è misurata tramite il test dinamico cuscinetto di peso. Queste misure sono ampiamente accettate come misure di dolore e rendere le informazioni importanti sulle soglie di dolore e potenziale dolore esperto di animali15,16,17. Altre misure per valutare il dolore non-evocati (ad es., stimolo indipendente), come il test di preferenza di posto condizionata, può essere prezioso18. Per valutare il potenziale della droga per inibire il dolore, abbiamo effettuato la somministrazione intratecale della proteina di fusione, come con questa via di somministrazione meno dose di proteine è necessaria per raggiungere settori legati al dolore ed evitare sistemica (lato-) effetti19, 20.

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Protocollo

Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti in conformità alle linee guida internazionali e previa approvazione del comitato etico sperimentale locale. Sangue intero è stato ottenuto dal servizio donatore Mini (Mini donatore Dienst, MDD) presso University Medical Center Utrecht (UMCU) nei Paesi Bassi. MDD ha ricevuto l'approvazione positiva dal comitato di etica medica della UMCU (Medisch Ethische Toetscommissie) per il numero protocollo 07-125/C.

1. caratterizzazione e produzione di proteine

  1. Coltura cellulare
    Nota: Vedere la Tabella materiali per mezzo di coltura utilizzato.
    1. Scongelare le cellule HEK293-F a 37 ° C fino a quando c'è un piccolo ammasso di ghiaccio. Trasferire immediatamente le cellule scongelate 10 mL di terreno ghiacciato (4 ° C) e centrifugare la sospensione cellulare a temperatura ambiente (TA) per 4 minuti (min) a 500 x g.
    2. Rimuovere il mezzo e risospendere il pellet cellulare in 10 mL di medium fresco a RT, seguita da centrifugazione a 500 x g per 4 min.
    3. Rimuovere il supernatante e risospendere il pellet cellulare in 5 mL di terreno in RT. aggiungere la sospensione cellulare direttamente in un matraccio di 125 mL contenente 25 mL di terreno pre-riscaldato (37 ° C). Coltura le cellule a 37 ° C, 8% CO2e 95% di umidità su agitatore orbitale ruota ad una velocità di 125 giri/min.
    4. Sottocultura le cellule due volte a settimana. Utilizzare una cella automatizzata del contatore (Vedi Tabella materiali) per valutare il numero di cell e attuabilità delle cellule. Cellule vitali di seme ad una concentrazione di 3 x 105 cellule/mL in matracci di Erlenmeyer. Mantenere il volume totale del terreno di coltura a 1/5 del volume totale di matracci di Erlenmeyer cultura in qualsiasi momento per mantenere ottimale aerazione.
  2. Trasfezione
    Nota: Sottocultura le cellule tre a quattro volte prima di transfezione e transfect li quando l'attuabilità delle cellule è > 90%. La vitalità cellulare è valutata da un automatizzato (campo elettrico multi-canale) cellcounting sistema basato sull'integrità della membrana plasmatica. Vedi la Tabella materiali per il reagente di transfezione.
    1. Centrifugare le cellule a RT per 4 min a 500 x g; Risospendere il pellet cellulare in 10 mL di terreno di coltura pre-riscaldata (37 ° C) e diluire la sospensione di cellule ~1.0 x 106 cellule/mL in un volume totale di 1 L. aliquota della sospensione di cellule in 10 aliquote di 100 mL in beute Erlenmeyer da 500 mL.
    2. Diluire 1 mg di DNA plasmidico in medium essenziale minimo di 33 mL siero ridotto (MEM, Vedi Tabella materiali) di miscelazione delicata. In un tubo separato, diluire 1.330 µ l di reagente di transfezione in MEM di miscelazione delicata. Incubare per entrambe le soluzioni a temperatura ambiente per 5 min, aggiungere e mescolare il DNA diluito in MEM per il reagente di transfezione in MEM e incubare la miscela per 30 minuti a TA.
    3. Aggiungere il mix di reagente di transfezione del DNA per le cellule (coltivate nella sezione 1); aggiungere 6,6 mL della miscela ogni 500 mL beuta contenente 100 mL di cellule in terreno di coltura. Mantenere le cellule in condizioni di coltura menzionati in precedenza. Raccogliere il supernatante di coltura contenente secernuta proteina di fusione di IL4-10 tre giorni dopo la trasfezione.
    4. Determinare la concentrazione della proteina di fusione IL4-10 nel surnatante della cultura mediante l'esecuzione di un test ELISA IL10 secondo il protocollo del produttore (Vedi Tabella materiali).
      Nota: In condizioni di coltura ottimale, la concentrazione della proteina di fusione può essere devono essere compresi tra 2,5 e 5 µ g/mL.
  3. Purificazione della proteina di cromatografia di affinità
    Nota: La cromatografia di affinità è eseguita a temperatura ambiente. Tuttavia, tutte le frazioni (cultura surnatante, carico, flusso attraverso ed eluizione frazioni) sono mantenute sul ghiaccio durante la procedura.
    1. Coppia 10 mg di un in-house-made anticorpo monoclonale contro IL4 a 1 g di CNBr - attivato sepharose 4B, secondo il protocollo del produttore (Vedi Tabella materiali). Versare lentamente 2,5 mL di perline sepharose accoppiato la colonna di cromatografia di vetro (30 cm di lunghezza e 1,5 cm diametro interno, Vedi Tabella materiali).
    2. Bloccare i restanti siti dei branelli di legame passando 50 mL di tampone fosfato salino (PBS) contenente l'1% di sieroalbumina bovina attraverso la colonna. Lavare la colonna con 25 mL di PBS (pH = 7,4) seguita da 12,5 mL di tampone di glicina 0.1 M (pH = 2.5) e 25 mL di PBS (pH = 7.4).
    3. Passare 100 mL di coltura di cellule HEK293 concentrato 10 volte surnatante attraverso la colonna ad un flusso di 1 mL/min. lavare la colonna con 50 mL di PBS.
    4. Eluire la proteina di fusione di IL4-10 associata con 12,5 mL di tampone di glicina 0.1 M (pH = 2.5) ad un flusso di 1 mL/min e raccogliere le frazioni di 2,5 mL. Aggiungere 350 µ l di tampone Tris 1 M (pH = 9) per ogni frazione per portare il pH a 7. Dializzare neutralizzate frazioni durante la notte contro 2 L di PBS (pH = 7.4).
      1. Utilizzare tubi di dialisi con secco diametro 16 mm e un peso molecolare di 3,5 K cut-off. Sterile filtrare le frazioni dializzate utilizzando filtri monouso con 0,45 µM di diametro dei pori. Memorizzare la soluzione di proteine di fusione IL4-10 sterile in aliquote a-80 ° C.
    5. Valutare la purezza della proteina di fusione IL4-10 eluita di Coomassie macchiati di gel di SDS-PAGE 12% e HP-SEC (colonna 3 µm SEC-2000). Per analisi di HP-SEC, carico 40 µ l di proteina a concentrazione di ~ 1 mg/mL sulla colonna. Utilizzare 100 mM tampone sodio fosfato con 150 mM di cloruro di sodio (pH = 6,8) come fase mobile. Impostare la portata a 1 mL/min.
    6. Determinare la concentrazione di ciascun lotto di purificato della proteina di fusione di IL4-10 da ELISA IL10 e analisi della proteina di acido bicinconinico (BCA Protein Assay Kit, Vedi Tabella materiali) secondo i protocolli del produttore.
    7. Utilizzare IL10 umano ricombinante per creare una curva standard nel test ELISA. Per correggere la differenza di dimensioni tra IL10 ricombinante (18 kDA) e proteina di fusione di IL4-10 (34 kDa), moltiplicare la concentrazione ottenuta per un fattore pari a 1,8.
  4. Bioattività della proteina di fusione di IL4-10
    Nota: L'analisi di sangue intero viene eseguita per ogni batch di IL4-10 proteina di fusione prodotta e l'attività di diversi lotti è paragonata come parte del controllo di qualità. L'analisi di sangue intero viene eseguita nel sangue umano fresco raccolti il giorno del test in tubi di eparina. Sangue è stato ottenuto dai volontari sani nel nostro servizio di donatore in-House. I campioni devono essere manipolati come pericoli potenzialmente biologici.
    1. Preparare 3 volte pre-diluizioni seriali della proteina di fusione purificata IL4-10 nel medium RPMI (Vedi Tabella materiali) oltre una concentrazione intervallo 5-1.215 ng/mL.
    2. Preparare pre-diluizioni di LPS (100 ng/mL) e sangue umano che viene diluito 4 volte nel medium RPMI.
    3. Dispensare il pre-diluizioni della proteina di fusione di IL4-10, LPS e sangue umano in una piastra a 48 pozzetti. Aggiungere in ciascun pozzetto proteina di fusione di IL4-10 µ l 50 (concentrazione finale 1-243 ng/mL), 75 µ l RPMI media, 25 µ l LPS (concentrazione finale di 10 ng/mL) e 100 µ l di sangue umano (finale diluito).
      Nota: Il volume totale per pozzetto è 250 µ l.
    4. Incubare la piastra a 37 ° C, 8% CO2e 95% di umidità per 18 h.
    5. Valutare la concentrazione di TNFα in surnatanti usando un ELISA di TNFα, secondo il protocollo del produttore.
    6. Proteina di fusione di IL4-10 secondo la formula per calcolare l'inibizione della risposta infiammatoria: inibizione % = (1-(A-B)/(C-B)) x 100
      Nota: Qui A = livelli di TNFα nelle culture stimolate LPS trattate con proteina di fusione di IL4-10, B = livelli di TNFα in cultura non stimolata e C = livelli di TNFα in cultura stimolata LPS.

2. topo per persistente dolore infiammatorio

Nota: È importante utilizzare topi maschi e femminili (C57Bl/6) perché ciò consentirà l'identificazione degli effetti di sesso-dipendente. In generale, i topi utilizzati sono tra 8-16 settimane di vita. Per determinare il numero di animali necessari, calcolo della potenza deve essere eseguita. Strumenti Web-based per eseguire tali calcoli si trovano facilmente su internet (ad es., http://www.powerandsamplesize.com; http://www.sample-size.net).

  1. Induzione di dolore infiammatorio cronico
    Nota: Indurre persistente dolore infiammatorio in topi adulti con iniezioni intraplantar del carrageenano o adiuvante completo di Freud (CFA). I vari test non interferiscano tra loro.
    1. Carragenina (2% p/v) di preparare sciogliendo λ-carragenina (Vedi Tabella materiali) nello 0,9% NaCl passando la soluzione attraverso un ago di 23 gauge per garantire che la carragenina correttamente è dissolto. Preparare una soluzione fresca direttamente prima di eseguita l'iniezione.
    2. In alternativa, se viene utilizzato il CFA, mescolare la soluzione CFA correttamente prima di iniettarlo intraplantarly, perché il CFA è un'emulsione acqua in olio contenente 1 mg di Mycobacterium tubercolosi (H37Ra) calore uccise e secchi, 0,85 mL di olio di paraffina e 0,15 mL mannide sorbitano (Vedi Tabella materiali).
      Nota: Siringhe di vetro Hamilton con metallo stantuffi sono raccomandati per iniettando questo composto perché tuffatori di gomma possono reagire con l'olio in adiuvante.
    3. Iniezione intraplantar
      1. Mantenere il composto (passaggi 2.1.1 o 2.1.2) nella siringa a temperatura ambiente per almeno 15 minuti prima dell'iniezione per consentire la regolazione a RT. iniettare 20 µ l del composto (o solventi come un controllo) per via sottocutanea nella zampa posteriore del mouse non anestetizzati con un 30-calibro ago.
      2. Inserire l'ago alla base del pollice verso il tallone e iniettare il composto quando l'ago è inserito circa 0,5 cm. Dopo l'iniezione, ritirare lentamente l'ago mentre ruotando leggermente la siringa per evitare perdite di soluzione fuori del sito di iniezione.

3. dolore misure

Nota: Assicurarsi che i ricercatori eseguono esperimenti comportamentali sono ciechi per il trattamento del mouse. È importante acclimatare gli animali all'ambiente di prova prima di eseguire qualsiasi misurazione. Preferibilmente, la settimana prima di iniziare gli esperimenti, gli animali sono collocati 1 - 2 volte per 15-30 min in ciascuno dei diversi dispositivi utilizzati per effettuare le prove. Quando si gestiscono i maschi e le femmine nello stesso esperimento, valutare i maschi indipendentemente dalle femmine. Gabbie pulite e superfici ampiamente tra i diversi gruppi per evitare potenziali effetti indesiderati sul comportamento dei sessi differenti. Misurare le latenze di prelievo basale o soglie meccaniche due a tre volte per determinare le soglie della linea di base con precisione e identificare se questi sono stabili prima iniezione intraplantar di qualsiasi composto.

  1. Test di von Frey: sensibilità meccanica agli stimoli innocui
    1. Posizionare gli animali individualmente nelle gabbie acriliche su un banco della rete metallica e consentire i topi acclimatare per almeno 15 minuti prima della misurazione.
    2. Valutare la sensibilità meccanica misurando la soglia di ritiro di zampa in risposta ad una serie calibrata di peli di von Frey che variano da 0,02 a 4 g. considera qualsiasi movimento della zampa lontano dai capelli applicata come risposta positiva ritiro. Applicare i filamenti perpendicolarmente alla superficie di zampa con forza sufficiente da causare lieve flessione contro la pelle e tenere premuto per 3 ~ s. Make sicuro i capelli non si attorcigli durante l'applicazione per la zampa.
    3. Calcolare la soglia di zampa-ritiro 50% utilizzando il metodo altalenante15,21.
      Nota: Il primo filamento da applicare è 0,4 g (altri filamenti di partenza possono essere utilizzati a seconda delle soglie questi topi visualizzare al basale). Una mancanza di risposta ad un filamento indica che il prossimo filamento più spesso viene utilizzato nella stimolazione seguente, mentre una risposta positiva indica l'uso del filamento sottile successivo. Il numero di presentazioni dei capelli è determinato dalla prima risposta differenziale; Dopo di che, 5 altre applicazioni vengono eseguite. Calcolare che la soglia del 50% secondo i metodi descritti precedentemente15,21.
  2. Sensibilità termica: test di Hargreaves
    1. Sistemare gli animali in gabbie su una lastra di vetro pre-riscaldata (30 ° C) e consentire i topi acclimatare per almeno 15 min prima di misurazioni, in attesa fino a quando gli animali stare fermo.
    2. Determinare i tempi di latenza ritiro calore riscaldando la zampa degli animali da un fascio concentrato di luce visibile utilizzando un apparato di Hargreaves (Vedi Tabella materiali).
      Nota: L'intensità del fascio è impostato su 12%, poiché con questa impostazione intensità determinato sperimentalmente, il fascio di luce evoca una risposta di ritiro di un tempo medio di 8 s alla linea di base su topi C57Bl/6. L'impostazione di intensità deve essere determinata per singola macchina e topo. Orari di accettazione massima di 20 s o più vengono utilizzati per evitare lesioni agli animali.
    3. Misurare i tempi di latenza di ritiro ~ 4 volte per animale. Media di tutte le risposte misurate. Misurare ogni zampa in modo indipendente e con almeno 1 min intervalli tra le misurazioni successive nella stessa zampa.
  3. I deficit posturali: prova del cuscinetto di peso dinamico
    1. Misurare il peso corporeo di ciascun animale prima della prova, dal momento che richiede analisi del cuscinetto di peso il peso corporeo di ogni singolo animale come parametro di input.
    2. Sistemare gli animali individualmente in un sistema portante dinamico strumentati piano montato su una copertina sostenendo una telecamera che registra i movimenti del mouse. Lasciate che l'animale acclimatare per 0,5 a 1 min prima della registrazione per 5 min.
      Nota: In questa prova, un solo animale liberamente commovente può essere valutato in un momento.
    3. Regolare le impostazioni eseguire cuscinetto di peso e analizzare i dati.
      Nota: In questi esperimenti, utilizziamo i seguenti parametri: soglia di peso (i) bassa di 0,6 g: questo è il peso minimo necessario per attivare una delle celle del sensore. (ii) ad alto peso soglia di 1 g: questo numero indica il peso necessario per attivare completamente una cella. (iii) superficie soglia delle 2 cellule: questo numero indica il numero di celle adiacenti tra loro che devono essere attivati per essere prese in considerazione. (iv) minimo numero di immagini è 5: prende 0,1 s per catturare ogni immagine. Il numero indica il numero minimo di fotogrammi in cui il mouse non si muove. Come tale, deve essere stabile per un valore di 5 indica che il mouse posturale > 0,5 s per ottenere una misura che viene presa in considerazione per l'analisi.
    4. Eseguire l'analisi di ciascun video riproducendo il video e garantire che ogni arto è riconosciuta correttamente dal software presso il lasso di tempo indicato dal software.
      Nota: Un minimo di 1 minuto di tempo registrato deve essere convalidato. Il carico dinamico cuscinetto software calcola e fornisce i seguenti parametri: (i) il peso a carico di ogni zampa individuo in grammi e come percentuale del peso del corpo intero. (ii) il peso a carico della zampa anteriore combinata o le zampe posteriori combinate in grammi e in percentuale del peso del corpo intero. (iii) il rapporto di sinistra/destra zampe cuscinetto di peso o peso cuscinetto posteriore/anteriore. (iv) la superficie di ogni zampa o combinate zampe anteriore/posteriore che ha attivato il pad sensibile di pressione. (v) media e deviazione standard per ogni parametro. (vi) durata di diverse posture (allevamento, 3 zampe o 4 zampe) durante l'intero esperimento. (vii) tempo (s) ogni zampa ha un peso durante l'intero esperimento.

4. Intrathecal iniezione di IL4-10 proteina di fusione per analgesia

Nota: Verificare che la ventilazione della camera è aperta per assicurare il corretto flusso dell'aria. Per verificare l'efficacia della proteina di fusione IL4-10 (1 µ g/mouse; 5 µ l di volume di iniezione totale) dovrebbe essere esaminato contro veicolo iniezioni e iniezioni della combinazione delle singole citochine (IL4, 0,5 µ g + IL10 e 0,5 µ g/mouse, 5 µ l di volume di iniezione totale).

  1. Anestetizzare il mouse con isoflurano 3-4% con un tasso di flusso di ossigeno di 2 L/min nella camera di induzione. Controllare che il mouse è adeguatamente anestetizzato pizzicando la zampa per garantire che l'animale non è reattivo.
  2. Posto il mouse sul tavolo con la testa posta nel cono di naso dell'apparato e mantenere la sedazione del mouse con isoflurane 1.5-2% con un tasso di flusso di ossigeno di 2 L/min quando si esibiva l'iniezione intratecale.
  3. Retro-riempimento composti iniettabili in un bicchiere pulito 25 µ l siringa Hamilton collegato ad un ago calibro 27.
  4. Impugnare il mouse dalla spina dorsale posteriore alle costole e sollevare leggermente il mouse. Posizionare l'ago verticalmente tra le vertebre lombari L5 e L6 e inserire con attenzione attraverso la pelle proprio al centro delle vertebre lombari. Posizionare l'ago nello spazio intervertebrale.
    Nota: Trovare lo spazio intervertebrale può richiedere alcuni 'ricerca' di spostare l'ago lungo l'asse ventrale rostrale, premendo leggermente l'ago finché non si avverte una diminuzione della resistenza del tessuto osseo.
    1. Confermare la corretta destinazione verificando che si è verificato un colpo di coda. Iniettare lentamente 5 µ l del composto, attendere un paio di secondi e poi lentamente ritrarre l'ago. Se si osserva un colpo di zampa singolo, solo l'ago è probabile non posizionato correttamente.
  5. Dopo l'iniezione, è possibile controllare il mouse molto attentamente per i primi 30 min dopo il recupero dall'anestesia per garantire l'assenza di qualsiasi danno/paralisi motoria.
    Nota: I comportamenti di dolore possono essere misurati (come descritto nella sezione 3) 15 minuti dopo il recupero.

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Risultati

Un'immagine rappresentativa di un gel di SDS-PAGE che contiene diverse frazioni ottenute durante la purificazione di cromatografia di affinità è illustrata nella Figura 1A. Del carico (L) e il flusso attraverso le frazioni (FT), si osservano tutte le proteine presenti nel surnatante HEK293. Nessuna proteina è osservata nella frazione di lavaggio (W). Nella frazione di eluizione (E), due bande di kDa 35 e 37 sono osservate corrispondenti a due...

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Discussione

Questo manoscritto descrive metodi per la produzione e la caratterizzazione di un recombinant della proteina di fusione di IL4-10 e i metodi per testare la sua efficacia nell'inibire la iperalgia infiammatoria in modelli murini di dolore infiammatorio persistente. La produzione e purificazione della proteina di fusione IL4-10 viene eseguita su piccola scala. Cellule HEK293 sono selezionate come un sistema di espressione per la produzione di proteine perché permettono modifiche post-traduzionali che non possono essere rea...

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Parte di questo lavoro è stato finanziato da un Utrecht University Life Sciences concedere

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Cellule FreeStyle 293-FInvitrogenR790-07Cellule renali embrionali umane 
GIBCO FreeStyle 293 Expression MediumLife technologies12338018Terreno di coltura
293fectina ReagenteInvitrogen12347019Reagente di trasfezione
GIBCO Opti-MEM + GlutaMAXLife51985026Medium Siero ridotto per l'uso durante le trasfezioni lipidiche cationiche 
GIBCO RPMI Medium 1640 (1x)Life technologies52400-025
Sefarosio attivato da CNBr 4BGE Healthcare17-0430-01Terreno pre-attivato per l'accoppiamento di anticorpi o altre proteine di grandi dimensioni
Acido cloridrico fumante 37% Merck1003171000
Cloruro di sodioSigmaS7653-1kg
Bicarbonato di sodio Sigma31437
Trizma cloridratoSigmaT3253-500GTRIS cloridrato 
Acido acetico 100%                                                         Merck1.00063.1000 
Glicina-HCl                                                                               SigmaG2879                         
PBS                                                                                                     Farmacia, soluzionesalina tamponata con fosfato
10X TGSBIO-RAD161-0772Tris/Glycine/SDS Buffer per elettroforesi
SDS Gel Mini-PROTEAN TGXBIO-RAD456-104612% SDS Gel prefabbricati
Trans-Blot Turbo Transfer PackBIO-RAD170-4157Pacchetti di trasferimento Western blot
Colonna Yarra 3u SEC-2000Phenomenex
InstantBlue Protein StainExpedeonISB1Lpronto all'uso Colorazione proteica Coomassie per gel di poliacrilammide
Umano IL-10 DuoSet ELISAR& DDY217B
TNF umano&alfa; ELISA SetDiaclone851570020
Kit di analisi delle proteine BCA PierceThermoFisher Scientific23227
CarrageninaSigma-Aldrich22049mucopolisaccaride vegetale
CFASigma-AldrichF5881adiuvante del vaccino
siringa di HamiltonSigma-Aldrich20779siringa di vetro
Animal EnclosureIITC Life Science433Recinto per animali
Von Frey supporto in reteIITC Life Science410Mesh Stand
von Frey peli Stoelting58011touch test sonde sensoriali
Test plantare (metodo Hargreaves)IITC Life Science390Gtest plantare con vetro riscaldato
Test dinamico di portanzaBiosebBIO-DWB-AUTO-Mtest del deficit posturale
Colonne Econo-Colonna in vetro, 1,5 & 30 cmin vetro BIO-RAD7371532  
Tubo per dialisi SnakeSkin Thermo Scientific88242
Minisart NML Filtro per siringa Sartorius16555-Kunità filtrante monouso, 0,45 &;
M CASY Contatore e analizzatore di celleRoche
UMCU Colonna cromatografica

Riferimenti

  1. Breivik, H., Collett, B., Ventafridda, V., Cohen, R., Gallacher, D. Survey of chronic pain in Europe: prevalence, impact on daily life, and treatment. Eur J Pain. 10 (4), 287-333 (2006).
  2. Gerdle, B., et al. Prevalence of widespread pain and associations with work status: a population study. BMC Musculoskelet Disord. 9, 102(2008).
  3. Borsook, D., Aasted, C. M., Burstein, R., Becerra, L. Migraine Mistakes: Error Awareness. Neuroscientist. 20 (3), 291-304 (2014).
  4. Raoof, R., Willemen, H. L., Eijkelkamp, N. Divergent roles of immune cells and their mediators in pain. Rheumatology. , (2017).
  5. Ren, K., Dubner, R. Interactions between the immune and nervous systems in pain. Nat Med. 16 (11), 1267-1276 (2010).
  6. Milligan, E. D., Penzkover, K. R., Soderquist, R. G., Mahoney, M. J. Spinal interleukin-10 therapy to treat peripheral neuropathic pain. Neuromodulation. 15 (6), 520-526 (2012).
  7. Grace, P. M., et al. Behavioral assessment of neuropathic pain, fatigue, and anxiety in experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) and attenuation by interleukin-10 gene therapy. Brain Behav Immun. 59, 49-54 (2017).
  8. Kiguchi, N., et al. Peripheral administration of interleukin-13 reverses inflammatory macrophage and tactile allodynia in mice with partial sciatic nerve ligation. J Pharmacol Sci. 133 (1), 53-56 (2017).
  9. Eijkelkamp, N., et al. IL4-10 Fusion Protein Is a Novel Drug to Treat Persistent Inflammatory Pain. J Neurosci. 36 (28), 7353-7363 (2016).
  10. Schott, H. Affinity Chromatography: Template Chromatography of Nucleic Acids and Proteins. , Dekker. New York. (1984).
  11. Scopes, R. K. Strategies for protein purification. Curr Protoc Protein Sci. , Chapter 1 Unit 1 2 (2001).
  12. Gregory, N. S., et al. An overview of animal models of pain: disease models and outcome measures. J Pain. 14 (11), 1255-1269 (2013).
  13. Wang, H., et al. Balancing GRK2 and EPAC1 levels prevents and relieves chronic pain. J Clin Invest. 123 (12), 5023-5034 (2013).
  14. Willemen, H. L., et al. Microglial/macrophage GRK2 determines duration of peripheral IL-1beta-induced hyperalgesia: contribution of spinal cord CX3CR1, p38 and IL-1 signaling. Pain. 150 (3), 550-560 (2010).
  15. Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw. J Neurosci Methods. 53 (1), 55-63 (1994).
  16. Hargreaves, K., Dubner, R., Brown, F., Flores, C., Joris, J. A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutaneous hyperalgesia. Pain. 32 (1), 77-88 (1988).
  17. Robinson, I., Sargent, B., Hatcher, J. P. Use of dynamic weight bearing as a novel end-point for the assessment of Freund's Complete Adjuvant induced hypersensitivity in mice. Neurosci Lett. 524 (2), 107-110 (2012).
  18. He, Y., Tian, X., Hu, X., Porreca, F., Wang, Z. J. Negative reinforcement reveals non-evoked ongoing pain in mice with tissue or nerve injury. J Pain. 13 (6), 598-607 (2012).
  19. Bottros, M. M., Christo, P. J. Current perspectives on intrathecal drug delivery. J Pain Res. 7, 615-626 (2014).
  20. Eijkelkamp, N., et al. A role for Piezo2 in EPAC1-dependent mechanical allodynia. Nat Commun. 4, 1682(2013).
  21. Bradman, M. J., Ferrini, F., Salio, C., Merighi, A. Practical mechanical threshold estimation in rodents using von Frey hairs/Semmes-Weinstein monofilaments: Towards a rational method. J Neurosci Methods. 255, 92-103 (2015).
  22. Krukowski, K., et al. CD8+ T Cells and Endogenous IL-10 Are Required for Resolution of Chemotherapy-Induced Neuropathic Pain. J Neurosci. 36 (43), 11074-11083 (2016).

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