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Articolo metodologico

Isolamento dei capillari cerebrali da tessuto cerebrale umano fresco

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DOI:

10.3791/57346

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12 settembre 2018

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In questo articolo

Sommario

Capillari cerebrali isolate da tessuto cerebrale umano possono essere utilizzati come un modello preclinico per studiare la funzione di barriera in condizioni fisiologiche e fisiopatologiche. Qui, presentiamo un protocollo ottimizzato per isolare i capillari cerebrali da tessuto cerebrale umano fresco.

Abstract

Comprendere la funzione di barriera emato - encefalica in condizioni fisiologiche e fisiopatologiche è critica per lo sviluppo di nuove strategie terapeutiche che promettono di migliorare la fornitura di droga del cervello, migliorare la protezione del cervello e trattare il cervello disturbi. Tuttavia, studiare la funzione umana barriera emato - encefalica è impegnativo. Così, c'è un bisogno fondamentale per modelli appropriati. A questo proposito, capillari cerebrali isolati da tessuto cerebrale umano rappresentano uno strumento unico per studiare la funzione di barriera come vicino alla situazione umana in vivo come possibile. Qui, descriviamo un protocollo ottimizzato per isolare i capillari dal tessuto di cervello umano a un alto rendimento e con purezza e qualità costante. I capillari sono isolati dal tessuto di cervello umano fresco mediante filtrazione, centrifugazione in gradiente di densità e omogeneizzazione meccanica. Dopo l'isolamento, i capillari del cervello umano possono essere utilizzati per varie applicazioni tra cui saggi di perdite, live cell imaging e le analisi basate su immunitario per studiare l'espressione della proteina e funzione, l'attività enzimatica o segnalazione intracellulare. Cervello umano isolato capillari sono un modello unico per delucidare il regolamento della funzione umana barriera emato - encefalica. Questo modello può fornire intuizioni nella patogenesi del sistema nervoso centrale (SNC), che aiuterà lo sviluppo di strategie terapeutiche per il trattamento di disordini dello SNC.

Introduzione

La barriera emato - encefalica è un'interfaccia strettamente controllata tra il sangue e il cervello che determina ciò che entra ed esce dal cervello. Anatomicamente, cellule endoteliali compongono la barriera emato - encefalica e forma una complessa, continua rete capillare. Fisiologicamente, questa rete capillare fornisce il cervello con l'ossigeno e le sostanze nutrienti mentre contemporaneamente smaltimento dell'anidride carbonica e le scorie metaboliche. Cosa importante, la prova sostiene che le modifiche alla barriera contribuiscano a numerose patologie, tra cui il morbo di Alzheimer, epilessia e ictus1,2

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Protocollo

Le informazioni di seguito si basano su sicurezza attuale e gli standard normativi presso l'Università del Kentucky, Lexington, KY, Stati Uniti d'America. Come precauzione di sicurezza, consultare programma sicurezza biologica dell'istituzione e delle più attuali normative e raccomandazioni prima di lavorare con tessuti umani.

Attenzione: Il tessuto umano può essere una fonte di sangue agenti patogeni, tra cui il virus dell'immunodeficienza umana (HIV), virus dell'epatite B (HBV), virus dell'epatite C (HCV) e altri. Lavoro con tessuto umano comporta il rischio di infezione da patogeni presenti nel sangue. Di conseguenza, alcune considerazio....

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Risultati

Gli isolamenti da tessuto cerebrale umano resa una sospensione arricchita nei capillari del cervello umano (Figura 1B) con piccole quantità di navi più grandi, cellule di anima rosse, altre cellule singole e alcuni detriti cellulari. Alcuni capillari sono ramificati, e, in alcuni, globuli rossi sono intrappolate in lumen capillare. Il capillare tipico ha un diametro di 3 – 7 µm ed è circa 100-200 µm lungo con lumen aperta; la maggior parte delle estremità cap.......

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Discussione

Il presente protocollo descrive l'isolamento dei capillari del cervello umano intatta e vitale dal tessuto fresco. In questa sezione discutiamo dettagliatamente quanto segue: 1) modifiche al protocollo, 2) risoluzione dei problemi di errori comuni, 3) le limitazioni della tecnica, 4) il significato del modello rispetto alle esistenti e modelli alternativi barriera emato - encefalica, e 5). potenziali applicazioni per i capillari del cervello umano isolato.

Il protocollo descritto qui è ottimiz.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Ringraziamo e riconoscere Dr. Peter Nelson e Sonya Anderson presso la banca del tessuto di cervello UK-ADC per la fornitura di cervello umano tutti i campioni di tessuto (NIH concedere numero: P30 AG028383 dal National Institute on Aging). Ringraziamo Matt Hazzard e Tom Dolan, servizi di Information Technology, tecnologia accademico e impegno di facoltà, Università del Kentucky per assistenza grafica. Questo progetto è stato sostenuto dalla concessione numero 1R01NS079507 dall'Istituto nazionale dei disordini neurologici e colpo (a B.B.) e dalla concessione numero 1R01AG039621 dall'Istituto nazionale su invecchiamento (per A.M.S.H.). Il contenuto è di esclusiva respon....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Dispositivi di protezione individuale (DPI)
Diamond Grip Plus Guanti in lattice, Microflex MediumVWR, Radnor, PA, USA32916-636DPI
Camici protettivi monousoVWR, Radnor, PA, USA470146-214DPI; a causa della natura del materiale di origine umana, si consiglia l'uso di un camice da laboratorio monouso
Visiera, monousoThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA19460102DPI; a causa della natura del materiale di origine umana, si consiglia l'uso di una visiera monouso
Materiali
Clavies Sacchetti per autoclave ad alta temperatura 8 x 12Thermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA01-815-6
Versi Dry Bench Paper 18" x 20"Thermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA14-206-32per coprire le aree di lavoro
VWR Sharps Container SystemsThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA75800-272per bisturi usati
Candeggina 8,2% Clorox germicida 64 oz.Centro di approvvigionamento del Regno Unito, Lexington, KY, Stati Uniti323775
Equipment
4 ° C FrigoriferoThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA13-986-148
Accume BASIC AB15 Misuratore di pHThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USAAB15
Heidolph RZR 2102 ControlloHeidolph, Elk Grove Village, IL, USA501-21024-01-3
Sorvall LEGEND XTR CentrifugaThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA75004521
Leica L2 Microscopio da dissezioneLeica Microsystems Inc, Buffalo Grove IL, USAutilizzato per rimuovere le meningi
POLYTRON PT2500 OmogeneizzatoreKinematica AG, Lucerna, Svizzera9158168
Scala P-403Denver Instrument, Boemia, NY, USA0191392
Standard mini StirThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA1151050
Thermo-Flask Azoto Liquido DewarThermal Scientific, Mansfiled, TX, USA11-670-4Cusato per congelare il tessuto?
Bilancia analitica Voyager ProOHAUS, Parsippany, NJ, USAVP214CN
ZEISS Axiovert MicrocopeCarl Zeiss, Inc Thornwood, NY, USAutilizzato per controllare capillari isolati
Tools e vetreria
Finnpipette II Pipetta 1-5 mLThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA21377823T1lavare via i capillari filtro
Finnpipette II Pipette 100-1.000 µ LThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA21377821T1pellet di risospensione in BSA
PipetBoy Integra, Hudson, NH, USA739658
50 mL Provette Falcon 25/rack - 500/csVWR, Radnor, PA, USA21008-951
EISCO Scalpel BladesThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USAS95938Cper tritare il tessuto cerebrale
PARAFILMVWR, Radnor, PA, USA52858-000per coprire becher e pallone volumetrico
Thermo Scientific Finntip Pipet Tips 5 mLThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA21-377-304per lavare i capillari dal filtro
Siringa da 60 mL con Luer-LokThermo Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USABD309653utilizzato con anello di connessione per filtrare i capillari
Manico per bisturi #4Fine Science Tools, Foster City, CA, USA10060-13utilizzato per tritare
Dumont Forceps #5Fine Science Tools, Foster City, CA, USA11251-10utilizzato per rimuovere le meningi
Potter-Elvehjem Tissue GrinderThomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA3431E2550 mL volume, liquidazione: 150-230 μ m
Omogeneizzatore a dounceVWR, Radnor PA USA62400-64215 mL volume, liquidazione: 80-130 μ m
Filtri in tessuto Spectra/Mesh (300 &; micro; m)Spectrum Laboratories, Rancho Dominguez, CA, USA146424Utilizzato per filtrare la sospensione capillare per rimuovere eventuali meningi che possono essere rimaste
pluriFiltri (dimensione dei pori: 30 &; micro; m)pluriSelect Life Science, Lipsia, Germania43-50030-03
Anello connettorepluriSelect Life Science, Lipsia, Germania41-50000-03riutilizzo più volte
Palloneper la preparazione del tampone di isolamento
Bicchiereper la preparazione dell'1% di
Stir BarBSAper la preparazione di 1% BSA e Ficoll® Flacone
Schott (60 ml)per la preparazione di Ficoll®
Ice Bucketper mantenere tutto freddo
Petri da 100 mmper tritare il tessuto cerebrale
Raschietto cellulare per colture tissutaliVWR, Radnor, PA, USA89260-222per rimuovere il surnatante dopo la centrifugazione
Chemicals
BSA Fraction V, A-9647Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USAA9647-500gpreparare in DPBS con Ca2+ & Mg2+ il giorno prima. Evitare le bolle durante la preparazione. Conservare in frigorifero. Mescolare lentamente per 10 minuti prima dell'uso.
DPBS con Ca2+ & Mg2+HycloneSH30264.FSDPBS - parte del tampone di isolamento
Ficoll PM400Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USAF4375La misurazione esatta è importante qui. Pesare in bottiglia con ancoretta di combustione. Agitare viguramente dopo aver aggiunto DPBS. Conservare in frigo O/N. Sarà sereno al mattino. Mescolare delicatamente per 10-15 minuti prima dell'uso. Tenere in ghiaccio fino al momento dell'uso.
Glucosio (D-(+) destrosio)Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USAG7528Concentrazione di glucosio (D-(+) destrosio): 5 mM
Soluzione standard di idrossido di sodioSigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA71474per regolare il pH del DPBS
Piruvato di sodioSigma-Aldrich, St. Louis, MO, USAP2256Concentrazione: 1 mM
di sicurezza volumetrico da 1 L da 1 L Piastra di

Riferimenti

  1. Aronica, E., et al. Expression and cellular distribution of multidrug resistance-related proteins in the hippocampus of patients with mesial temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 45 (5), 441-451 (2004).
  2. Hartz, A. M., et al.

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