Sono state seguite regole disciplinate dalla legislazione tedesca per gli studi sugli animali, nonché i principi di laboratorio Animal Care (National Institutes of Health pubblicazione ed. 8, 2011). Ufficiale è permesso dall'ufficio governativo cura degli animali (Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Germania).
1. gli animali
- Utilizzare suini landrace tedesco femminile (25-30 kg di peso) alloggiati in gabbie aperte.
- Utilizzare 5 animali per gruppo (argon ed elio).
- Consentire agli animali di acclimatarsi all'ambiente circostante per almeno una settimana prima degli esperimenti. Animali veloci per 24 h prima dell'intervento chirurgico con libero accesso all'acqua.
2. anestesia
- Wow gli animali con un'iniezione intramuscolare di ketamina (15 mg/kg di peso corporeo [BW]), xilazina (10 mg/kg BW) e atropina (0,1 mg/kg BW) 10 min prima dell'induzione dell'anestesia.
- Accesso venoso periferico è stabilito dal posizionamento di una cannula di calibro 22 in una vena di orecchio.
- Indurre l'anestesia generale da i.v. iniezione di propofol 2 mg/kg di peso corporeo.
- Posizionare l'animale in posizione supina ed effettuare un'incisione longitudinale della pelle nella scanalatura giugulare sopra una lunghezza di 2 cm. Locate vena attraverso la preparazione smussata del tessuto sottocutaneo. Inserire la cannula, poi filo di Seldinger.
- Ritrarre la cannula e inserire 14 p. catetere sul filo guida. Ritirare il filo guida. Collegare il catetere per l'estensione e fissare il catetere di una cinghia o una sutura.
- Tirare fuori la linguetta e inserire laringoscopio diritta. Usare la punta del laringoscopio per tirare giù l'epiglottide. Inserire il tubo attraverso le corde vocali. Posizionare il bracciale sotto la glottide e gonfiare.
- Ventilare con 40% di ossigeno a 20-26 respiri/min e un volume corrente di 10 ml/kg per mantenere la tensione di biossido di carbonio parziale fine-di marea tra 36 e 42 mm Hg.
- Mantenere l'anestesia con isoflurano ad una concentrazione di 1-1,5% e fentanil ad una concentrazione di 3-4 µ g/kg/h.
- Fornire la soluzione di Ringer lattato a una velocità iniziale di 4 mL/kg/h e aumentare dopo la laparotomia per una velocità di infusione costante di 8 mL/kg/h.
3. chirurgia e coagulazione del Plasma
- Metti l'animale in posizione supina su un tavolo chirurgico standard.
- Disinfettare la pelle applicando un disinfettante chirurgico standard (2-propanolo 45 g/100 g, 1-Propanol 10 g / 100g, bifenil-2-olo 0,2 g/100 g) con un tampone chirurgico per ben 3 volte.
- Eseguire una laparotomia mediana ampia dal processo xifoideo al pube con un bisturi e installare Divaricatori chirurgici.
- Accendere il dispositivo di coagulazione del plasma, aprire la bottiglia di gas argon o elio, a seconda del gas usato motrice. Regolare il flusso del gas a 3 L/min potenza di uscita dispositivo selezionare coagulazione come desiderato.
Nota: Entrambi i gas nobili, Argon o elio, può essere utilizzati per la coagulazione del plasma. Effetti di coagulazione sono paragonabili. Vedere riferimento7 per i dettagli.
- Eseguire la coagulazione del plasma sul lobo sinistro del fegato come descritto in precedenza7. Utilizzare uno stampo di titanio (apertura quadrata 1 x 1 cm2) per standardizzare la zona di coagulazione. Coagulare per 5 s con una distanza della sonda di 1 cm. La pinza di coagulo con impostazioni di risparmio energia diverso può essere eseguita fianco a fianco con una distanza breve tra la pinza di coagulo di 5 mm (Figura 1).
- Per la raccolta del fegato, dividere tutti i collegamenti ligamentous al fegato. Isolare e dividere il pedicle epatico sopra la flessura duodenale superiore lasciando porzioni lunghe della vena portale e del dotto biliare comune. Dividere la vena cava sopra e sotto il fegato e recuperare l'organo.
- Dopo la raccolta il fegato, i maiali sono stati eutanasizzati dalla somministrazione i.v. di 0,16 g/kg BW pentobarbital.
- Per gli esperimenti di pressione di scoppio, resecare metà del lobo sinistro del fegato mediale con forbici affilate. Il taglio al plasma-coagulare (potenza di uscita 100W) di superficie o sigillare la superficie di taglio con fibrina (Figura 2).
4. microcircolazione misura
Nota: Spettroscopia Doppler Laser può determinare il flusso di sangue nel tessuto attraverso misurando lo spostamento Doppler causato dal movimento degli eritrociti. Il segnale Laser correla con il numero di eritrociti commoventi. Spettroscopia Doppler laser è in uso clinico (ad es. medicina dei trapianti) ed è stato convalidato più volte15.
- Accendere il laser Doppler flussimetro e spettrofotometro. Utilizzare una sonda piatta.
- Prendere le misure della linea di base per il flusso e velocità. Salvare o prendere nota dei valori.
- Eseguire la coagulazione come descritta al punto 3.5.
- Posizionare la sonda piatta su siti di coagulazione e misura di flusso e velocità. Ancora una volta, salvare o Nota valori.
- Ripetere per tutte le impostazioni di alimentazione del dispositivo coagulatore.
5. misurazione della temperatura
- Il passaggio del sistema (macchina fotografica termografica, notebook e termometro a infrarossi) e lasciar correre per almeno 1 h prima di eseguire le misurazioni.
- Regolare messa a fuoco e visualizzare frame su macchina fotografica termografica sul sito della coagulazione. Sequenze a infrarossi possono essere rilevati con la risoluzione spaziale di 1024 x 768 pixel con una risoluzione di temperatura più grande di 20 mK. Prendere in considerazione, che la regione di coagulazione e il tessuto circostante — interessate dal trasferimento di calore — si trova nel centro della vista.
Nota: Dovrebbe includere come numero di pixel del fotogramma possibile per un'ottimale risoluzione spaziale.
- Registrare il processo di coagulazione con il coagulatore del plasma sulla superficie del fegato con la macchina fotografica termografica su un periodo di 2 min.
- Analizzare le sequenze di immagini con il software di analisi di termografia: definire le aree di interesse.
Nota: Il Software calcola il corso della corrispondente temperatura media nel corso del tempo.
6. misurazione della profondità coagulazione
- Raccogliere il lobo di sinistra del fegato mediale con forbici affilate.
- Asportare i siti di coagulazione con 1 cm di spessore. Tagliato in segmenti longitudinali spesse 3 mm per l'ulteriore elaborazione.
- Campioni di tessuto di correzione a 4 ° C durante la notte con neutro 10% tamponata formalina. Calore 2 ° C sopra il punto di fusione della paraffina e incorporare fette. Processo durante la notte.
- Eseguire ematossilina/eosina.
- Deparaffinizzare e idratare il tessuto immergendo successivamente in 2 x xilene, 100% di etanolo (EtOH), 95% EtOH, 70% EtOH, deionizzata di H2O per 2 minuti ciascuno.
- Macchia il campione di tessuto con soluzione di ematossilina di Meyer per 3 min.
- Ora sciacquare in acqua corrente per 5 min.
- Macchiare il tessuto con soluzione di eosina per 3 min.
- Sciacquare in 2 x EtOH 95% e quindi in xilene per 3 minuti ciascuno. Montare con il mezzo di montaggio standard.
- Accendere il sistema (microscopio fotocamera collegata, software di imaging). Mostra tutte le sezioni con ingrandimento 40x.
- Acquisire l'immagine di un micrometro oggetto ad un ingrandimento di 40x. Ricalibrare il tasto nella finestra di obiettivi. Selezionare Calibrazione manuale. Tracciare una linea sull'immagine micrometro di 100 µm. invio 0,1 mm di nella finestra di dialogo e premere OK.
- Seleziona lunghezza nella visualizzazione > analisi controlli > finestra annotazioni e misure. Misurare dalla superficie del fegato per il margine di coagulazione con il mouse. Esportare o annotarsi il risultato. Ripetere la misurazione su un'altra posizione nella stessa diapositiva.
Nota: La profondità di coagulazione possono essere differenziati facilmente dal tessuto normale del fegato dal margine tagliente tra le corde dell'epatocita normale e la zona di necrosi con rattrappito citoplasma, nuclei picnotici e zone di emorragia.
- Calcolare la media di due misurazioni.
7. misurazione della pressione burst
- Accendere il sistema (pompe automatiche, misuratore di pressione). Preparare i campioni del fegato secondo il punto 3.7.
Nota: Utilizzare due pompe funzionanti in parallelo collegati tramite un rubinetto a 3 vie. La pressione massima di 1.500 mm Hg non può essere ottenuta con una sola pompa.
- Isolare la vena, arteria epatica comune e del dotto biliare con le forbici nel pedicle aptica. Morsetto della vena portale con un forcipe overholt e legare con una sutura monofilo 4-0. Bloccare l'arteria epatica comune un forcipe overholt e legare con una sutura monofilo 4-0.
- Inserire il catetere Ch-16 nel dotto biliare comune e legare con una sutura seta 2-0. Collegare il catetere alla pompe automatiche, installare il rubinetto a 3 vie con misuratore di pressione (Figura 3).
- Riempire la siringa di perfusione con soluzione fisiologica.
- Avviare pompe automatiche con un tasso di consegna di 99 mL/h.
- Monitoraggio del fegato taglio superficie e pressione tester per perdite e record di pressione di scoppio.
Nota: Per un più facile riconoscimento delle perdite, brevetto blu possono essere aggiunti alla soluzione fisiologica (2 mL brevetto blu + 18 mL di soluzione fisiologica). È più facile osservare la pressione di scoppio da notare il periodo di perdita di pressione sul manometro.