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Articolo metodologico

Microscopia di fluorescenza di luce-foglio per lo studio del cuore murino

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DOI:

10.3791/57769

15 settembre 2018

In questo articolo

Sommario

Questo studio utilizza una tecnica di microscopia (LSFM) foglio di luce di fluorescenza-retro illuminazione combinata con compensazione ottica per studiare il cuore murino.

Abstract

Microscopia di fluorescenza di luce-foglio è stato ampiamente utilizzata per l'acquisizione rapida immagine con un'alta risoluzione assiale da micrometro scala del millimetro. Tecniche tradizionali di luce-foglio implicano l'uso di un fascio di illuminazione singola direzionato ortogonalmente al tessuto dell'esempio. Immagini di grandi campioni che sono prodotte utilizzando un fascio di illuminazione singola contengono strisce o artefatti e soffrono di una risoluzione ridotta dovuto la dispersione e l'assorbimento della luce da parte del tessuto. Questo studio utilizza un fascio di fronte-retro illuminazione e una semplificata chiarezza ottica, tecniche di taglio per il cuore murino. Queste tecniche permettono di imaging più profondo rimuovendo i lipidi dal cuore e producono un grande campo di formazione immagine, maggiore di 10 x 10 x 10 mm3. Di conseguenza, questa strategia permette di quantificare le dimensioni ventricolari, traccia la linea cardiaca e localizzare la distribuzione spaziale delle proteine cardiache specifiche e canali ionici da post-natali ai cuori di topo adulto con sufficiente contrasto e ad alta risoluzione.

Introduzione

Microscopia di fluorescenza di luce-foglio era una tecnica sviluppata nel 1903 ed è usata oggi come un metodo per studiare l'espressione genica ed anche a produrre modelli 3D o 4D di tessuto campioni1,2,3. Questo metodo di imaging utilizza un sottile foglio di luce per illuminare un unico piano di un campione in modo che solo quell'aereo è catturato dal rivelatore. Il campione può quindi essere spostato in direzione assiale per catturare ogni strato, una sezione alla volta e il rendering di un modello 3D dopo il post-processing delle immagini acquisite4

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Protocollo

Tutte le procedure che prevedono l'uso di animali sono state approvate da comitati di revisione istituzionale (IACUC) presso la University of California, Los Angeles, California.

1. imaging System Setup

Nota: Vedere Figura 1 e Figura 2.

  1. Recuperare un laser ad onda continua (CW) con 3 lunghezze d'onda: 405 nm, 473 nm e 532 nm. Posto 2 specchi (M1 e M2) distanza di 150 mm e allinearli con i loro aerei di specchio a 45° alla trave.
    Nota: Questo passaggio viene eseguito per reindirizzare il laser lontano il setup di fronte-retro illuminazione. I....

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Risultati

La tecnica descritta qui usato un fascio di fronte-retro illuminazione combinato con una compensazione ottica dei campioni di tessuto del cuore del mouse per ottenere una maggiore profondità di imaging e un più grande volume di imaging con sufficiente formazione immagine ad alta risoluzione (Figura 1). Per calibrare il sistema, perline fluorescenti sono stati collocati all'interno dei tubi di vetro e all'interno del sistema di imaging. Le perle sono stati poi.......

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Discussione

Il sistema LSFM e la tecnica qui descritta utilizza un fascio di fronte-retro illuminazione combinato con una compensazione ottica a immagine del cuore del topo nelle fasi post-natali e adulti del suo sviluppo. Un fascio di illuminazione singola tradizionale soffre di photon scattering e assorbimento attraverso tessuti più spessi e più grandi campioni1,3. Le travi-retro forniscono un'illuminazione più uniforme del campione, riducendo al minimo l'effetto di stripi.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori vorrebbero esprimere gratitudine a Thao Nguyen e Atsushi Nakano da UCLA per fornire il campione di topi all'immagine. Questo studio è stato sostenuto da sovvenzioni NIH HL118650 (per Tzung K. Hsiai), HL083015 (per Tzung K. Hsiai), HD069305 (per N. C. Chi e Tzung K. Hsiai.), HL111437 (per Tzung K. Hsiai e N. C. Chi), HL129727 (per Tzung K. Hsiai) e University of Texas System Star finanziamenti (per match Lee).

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
CW LaserLaserglow TechnologiesLMM-GBV1-PF3-00300-05Eccitazione dei fluorofori
Filtro a densità neutraThorlabsNDC-50C-4MControlla la quantità di luce che entra nel sistema Espansore
fascio acromaticoThorlabsGBE05-AEspande il fascio di luce
Fessura meccanicaThorlabsVA100CControlla la larghezza del fascio
Divisore di fascioThorlabsBS013Forma un fascio di illuminazione
Stereomicroscopio con obiettivo 1XOlympusMVX10Utilizzato per l'osservazione del campione
ORCA-Flash4.0 LT sCMOS cameraHamamatsu PhotonicsC11440-42UUtilizzato per acquisire immagini
Acrilonitrile butadiene stirene (ABS)StratasysuPrintMateriale utilizzato per stampare in 3D un portacampioni
Perle di polistirene fluorescenteSpherotech IncPP-05-10Utilizzato per la calibrazione del sistema di imaging
Tubo in vetro borosilicatoCorningPyrex 7740Tubo per l'inclusione del campione
GliceroloFisher ScientificBP229-4Riempimento per camera del campione
Soluzione salina tamponata con fosfatoFisher ScientificBP39920Soluzione di risciacquo per cuori di topo
Scienze della microscopia elettronicaparaformaldeideRT-15700Prima soluzione di incubazione
AcrilammideWako ChemicalsAAL-107Miscelato con 2,2'-Azobis dicloridrato per la seconda soluzione di incubazione per cuori di topo
2,2'-Azobis dicloridratoWako ChemicalsVA-044Miscelato con acrilammide per la seconda soluzione di incubazione per cuori
di topoSodio dodecil solfato Sigma Aldrich71725Miscelato con acido borico per la terza soluzione di incubazione per cuori di topo
Acido boricoFischer ScientificA74-1Miscelato con sodio dodecil solfato per la terza soluzione di incubazione per cuori di topo
Sigma D2158Sigma AldrichD2158Miscelato con PB, Tween-20 e sodio azide come soluzione di corrispondenza dell'indice di rifrazione
Tween-20Sigma Aldrich11332465001Miscelato con Sigma D2158, PB e sodio azide come soluzione di corrispondenza dell'indice di rifrazione
Sodio azideSigma AldrichS2002Miscelato con Sigma D2158, PB e Tween-20 come soluzione di corrispondenza dell'indice di rifrazione
Vettore virale adeno-associato 9 con un promotore di troponina T specifico per il cuore etichettato con GFPVector BiolabsVB2045Esprime GFP quando legato all'attuatore del
servomotore CCThorlabsZ825BUtilizzato per il movimento del campione in direzione assiale all'interno del foglio leggero
K-Cube Servomotore CC spazzolato ControllerThorlabsKDC101Si collega all'attuatore del motore e controlla il movimento dell'attuatore
Software AmiraFEIN/ASoftware di visualizzazione per la produzione di immagini 2D e 3D
del della ROMK

Riferimenti

  1. Richardson, D. S., Lichtman, J. W. Clarifying tissue clearing. Cell. 162 (2), 246-257 (2015).
  2. Lee, J., et al. 4-Dimensional light-sheet microscopy to elucidate shear stress modulation of cardiac trabeculation. Journal of Clinical Investigation. 126 (5), 1679-1690 (2016).
  3. Huisken, J., Swo....

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Ristampe e permessi

Tag

Illuminazione a doppio latoImaging del cuore murinoClearing ottico CLARITYQuantificazione delle dimensioni ventricolariTracciamento della linea cellulare cardiacaLocalizzazione dei canali ionici proteiciImaging con camera sCMOSTavolo traslatore motorizzato 3DSoluzione per l adattamento dell indice di rifrazione