Questo studio utilizza una tecnica di microscopia (LSFM) foglio di luce di fluorescenza-retro illuminazione combinata con compensazione ottica per studiare il cuore murino.
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Articolo metodologico
Questo studio utilizza una tecnica di microscopia (LSFM) foglio di luce di fluorescenza-retro illuminazione combinata con compensazione ottica per studiare il cuore murino.
Microscopia di fluorescenza di luce-foglio è stato ampiamente utilizzata per l'acquisizione rapida immagine con un'alta risoluzione assiale da micrometro scala del millimetro. Tecniche tradizionali di luce-foglio implicano l'uso di un fascio di illuminazione singola direzionato ortogonalmente al tessuto dell'esempio. Immagini di grandi campioni che sono prodotte utilizzando un fascio di illuminazione singola contengono strisce o artefatti e soffrono di una risoluzione ridotta dovuto la dispersione e l'assorbimento della luce da parte del tessuto. Questo studio utilizza un fascio di fronte-retro illuminazione e una semplificata chiarezza ottica, tecniche di taglio per il cuore murino. Queste tecniche permettono di imaging più profondo rimuovendo i lipidi dal cuore e producono un grande campo di formazione immagine, maggiore di 10 x 10 x 10 mm3. Di conseguenza, questa strategia permette di quantificare le dimensioni ventricolari, traccia la linea cardiaca e localizzare la distribuzione spaziale delle proteine cardiache specifiche e canali ionici da post-natali ai cuori di topo adulto con sufficiente contrasto e ad alta risoluzione.
Microscopia di fluorescenza di luce-foglio era una tecnica sviluppata nel 1903 ed è usata oggi come un metodo per studiare l'espressione genica ed anche a produrre modelli 3D o 4D di tessuto campioni1,2,3. Questo metodo di imaging utilizza un sottile foglio di luce per illuminare un unico piano di un campione in modo che solo quell'aereo è catturato dal rivelatore. Il campione può quindi essere spostato in direzione assiale per catturare ogni strato, una sezione alla volta e il rendering di un modello 3D dopo il post-processing delle immagini acquisite4
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Tutte le procedure che prevedono l'uso di animali sono state approvate da comitati di revisione istituzionale (IACUC) presso la University of California, Los Angeles, California.
1. imaging System Setup
Nota: Vedere Figura 1 e Figura 2.
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La tecnica descritta qui usato un fascio di fronte-retro illuminazione combinato con una compensazione ottica dei campioni di tessuto del cuore del mouse per ottenere una maggiore profondità di imaging e un più grande volume di imaging con sufficiente formazione immagine ad alta risoluzione (Figura 1). Per calibrare il sistema, perline fluorescenti sono stati collocati all'interno dei tubi di vetro e all'interno del sistema di imaging. Le perle sono stati poi.......
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Il sistema LSFM e la tecnica qui descritta utilizza un fascio di fronte-retro illuminazione combinato con una compensazione ottica a immagine del cuore del topo nelle fasi post-natali e adulti del suo sviluppo. Un fascio di illuminazione singola tradizionale soffre di photon scattering e assorbimento attraverso tessuti più spessi e più grandi campioni1,3. Le travi-retro forniscono un'illuminazione più uniforme del campione, riducendo al minimo l'effetto di stripi.......
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Gli autori non hanno nulla a rivelare.
Gli autori vorrebbero esprimere gratitudine a Thao Nguyen e Atsushi Nakano da UCLA per fornire il campione di topi all'immagine. Questo studio è stato sostenuto da sovvenzioni NIH HL118650 (per Tzung K. Hsiai), HL083015 (per Tzung K. Hsiai), HD069305 (per N. C. Chi e Tzung K. Hsiai.), HL111437 (per Tzung K. Hsiai e N. C. Chi), HL129727 (per Tzung K. Hsiai) e University of Texas System Star finanziamenti (per match Lee).
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| CW Laser | Laserglow Technologies | LMM-GBV1-PF3-00300-05 | Eccitazione dei fluorofori |
| Filtro a densità neutra | Thorlabs | NDC-50C-4M | Controlla la quantità di luce che entra nel sistema Espansore |
| fascio acromatico | Thorlabs | GBE05-A | Espande il fascio di luce |
| Fessura meccanica | Thorlabs | VA100C | Controlla la larghezza del fascio |
| Divisore di fascio | Thorlabs | BS013 | Forma un fascio di illuminazione |
| Stereomicroscopio con obiettivo 1X | Olympus | MVX10 | Utilizzato per l'osservazione del campione |
| ORCA-Flash4.0 LT sCMOS camera | Hamamatsu Photonics | C11440-42U | Utilizzato per acquisire immagini |
| Acrilonitrile butadiene stirene (ABS) | Stratasys | uPrint | Materiale utilizzato per stampare in 3D un portacampioni |
| Perle di polistirene fluorescente | Spherotech Inc | PP-05-10 | Utilizzato per la calibrazione del sistema di imaging |
| Tubo in vetro borosilicato | Corning | Pyrex 7740 | Tubo per l'inclusione del campione |
| Glicerolo | Fisher Scientific | BP229-4 | Riempimento per camera del campione |
| Soluzione salina tamponata con fosfato | Fisher Scientific | BP39920 | Soluzione di risciacquo per cuori di topo |
| Scienze della microscopia elettronica | paraformaldeide | RT-15700 | Prima soluzione di incubazione |
| Acrilammide | Wako Chemicals | AAL-107 | Miscelato con 2,2'-Azobis dicloridrato per la seconda soluzione di incubazione per cuori di topo |
| 2,2'-Azobis dicloridrato | Wako Chemicals | VA-044 | Miscelato con acrilammide per la seconda soluzione di incubazione per cuori |
| di topoSodio dodecil solfato | Sigma Aldrich | 71725 | Miscelato con acido borico per la terza soluzione di incubazione per cuori di topo |
| Acido borico | Fischer Scientific | A74-1 | Miscelato con sodio dodecil solfato per la terza soluzione di incubazione per cuori di topo |
| Sigma D2158 | Sigma Aldrich | D2158 | Miscelato con PB, Tween-20 e sodio azide come soluzione di corrispondenza dell'indice di rifrazione |
| Tween-20 | Sigma Aldrich | 11332465001 | Miscelato con Sigma D2158, PB e sodio azide come soluzione di corrispondenza dell'indice di rifrazione |
| Sodio azide | Sigma Aldrich | S2002 | Miscelato con Sigma D2158, PB e Tween-20 come soluzione di corrispondenza dell'indice di rifrazione |
| Vettore virale adeno-associato 9 con un promotore di troponina T specifico per il cuore etichettato con GFP | Vector Biolabs | VB2045 | Esprime GFP quando legato all'attuatore del |
| servomotore CC | Thorlabs | Z825B | Utilizzato per il movimento del campione in direzione assiale all'interno del foglio leggero |
| K-Cube Servomotore CC spazzolato Controller | Thorlabs | KDC101 | Si collega all'attuatore del motore e controlla il movimento dell'attuatore |
| Software Amira | FEI | N/A | Software di visualizzazione per la produzione di immagini 2D e 3D |
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