Porcino come un modulo di formazione per ricostruzione microvascolare del collo e testa

Sommario

Qui presentiamo un protocollo per l'uso del maiale superiore dell'arteria epigastric perforator flap come un modulo di apprendimento per testa e collo ricostruzione microvascolare.

Abstract

Modelli dal vivo che assomigliano a condizioni chirurgiche degli esseri umani sono necessari per la formazione libero-falda raccolta e anastomosi. Modelli animali per gli scopi di addestramento sono stati disponibili per anni in molti campi della chirurgia. Abbiamo usato la femmina (perché sono facili da gestire per la procedura) Yorkshire maiali per la ricostruzione del collo e della testa raccogliendo il perforatore dell'arteria epigastrica inferiore profonda o la falda del perforatore dell'arteria epigastrica superiore. Il sito di anastomosi (difetto di pelle del collo o della trachea) è stato preparato tramite la dissezione dell'arteria carotica comune e la vena giugulare interna, in cui 3,5 × ingrandimento lente di ingrandimento è stato usato per anastomosi come si usa sui casi umani nella vita reale. Questa procedura viene illustrato un nuovo metodo di allenamento utilizzando un modello di apprendimento affidabile e fornisce un'anatomia dettagliata in uno scenario dal vivo. Ci siamo concentrati sul tempo di ischemia, raccolta, anastomosi di nave e progettare la falda per adattarsi sito del difetto. Questo modello migliora la gestione del tessuto e con l'uso di strumenti idonei può essere ripetuto molte volte, così che il chirurgo è pienamente fiducioso prima di iniziare l'intervento sugli esseri umani.

Introduzione

Ricostruzione dopo la chirurgia per le malattie maligne testa e del collo è una procedura difficile associata con la morbosità significativa. Ricostruzione microvascolare libero-falda è stato ben stabilito come l'approccio standard alla ricostruzione per oltre 20 anni^1,2,3. Trasferimento libero-falda svolge un ruolo significativo nel migliorare la gestione del collo e della testa in malati di cancro e in lesioni post-traumatiche quindi spingendo i confini dell'asportazione chirurgica della malattia di là di tecniche precedenti, con conseguente maggiore paziente qualità della vita e la sopravvivenza più lunga tariffe^1,2,3. I vari lembi per la ricostruzione sono rotazionali, innesto e gratuito lembi.

Ha ampliato il ruolo delle falde libere nella ricostruzione del collo e della testa. È il lembo più difficile da lavorare, che richiedono un trattamento specializzato e delicato. Fallimento di falda è un evento catastrofico, con morbosità significativa^4,5. Così, tempo di allenamento considerevole è necessaria per sviluppare la precisione necessaria per il successo risultati chirurgici^{3,4,5,6,7,8, 9}. La ripida curva di apprendimento connessa con tale una chirurgia può influenzare l'esito per i pazienti e interessano trattamento gestione^{3,4,5,6,7, 8,9}. Per ridurre il tempo di allenamento e curva di apprendimento per nuovi chirurghi, un modello di formazione è necessario che imita la biologia umana e fornisce condizioni campo chirurgico simile⁸.

L'obiettivo di questo studio è quello di mostrare la visibilità di porcino come un modulo di formazione buona per la testa ed il collo ricostruzione microvascolare che assomiglia il caso umano con miglioramento delle competenze in modo attivo.

Questo studio ha studiato l'uso di un modello porcino per nuovi colleghi di formazione nella ricostruzione microvascolare testa e del collo per trasferimento libero-falda a fornire un conveniente e meno stressante supplemento in modo affidabile per l'addestramento di campo clinico con simili caratteristiche per le procedure di libero-falda. Suini sono stati utilizzati per molti studi e come insegnamento modelli per varie ricostruzioni chirurgiche, ad esempio, la ricostruzione del seno; ⁵ tuttavia, maiali non sono mai stati utilizzati per la ricostruzione del collo e della testa tranne nel nostro studio per ricostruzione tracheale a causa di stenosi tracheale¹⁰.

L'idea è stata iniziata dopo Frederic Bodin⁷, che descrivono la falda simile per ricostruzione del seno. Il vantaggio principale per lo studio sull'altro modulo di formazione microvascolare è il modulo attivo vivacizzare con un risultato reale immediato della procedura.

Protocollo

Questo studio è stato guidato e approvato dal dipartimento di laboratorio animale risorse, Yonsei Biomedical Research Institute, Yonsei University College of Medicine, accreditato dall'associazione per la valutazione e l'accreditamento di laboratorio Animal Care Internazionale. Questo studio ha seguito le linee guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio dell'Istituto di laboratorio animale risorse Commissione il Consiglio nazionale delle ricerche Scienze della vita. Tutti i suini sono stati acclimatati per una settimana prima dell'operazione.

1. preparazione

1. Mantenere i maiali senza cibo per oltre 12 ore prima l'anestesia generale con accesso gratuito all'acqua.
   Nota: Sei femmina Yorkshire maiali sono stati utilizzati 25 – 30 kg ciascuno.
2. Utilizzare un ago di calibro 16 di 1 cm di lunghezza per iniettare per via intramuscolare azaperone (2 mg/kg), xilazina (2 mg/kg) e alfaxan (1 mg/kg), dietro e sotto l'orecchio per iniziare l'anestesia.
3. Radere il midline anteriore del collo e della parete addominale del maiale utilizzando un rasoio depilazione chirurgica.
4. Fissare un itinerario endovenoso (IV) attraverso la vena centrale o marginale dell'orecchio sul lato posteriore del padiglione auricolare con un ago 22-G. Iniettare Ketorolac (1 mg/kg) tramite una linea IV.
5. Poi iniettano atropina (0,04 mg/kg) per via intramuscolare come descritto in 1.2. Iniettare per via intramuscolare come descritto in 1.2 cefazolina (30 mg/kg).
6. Mettere il maiale sdraiati in posizione supina sul tavolo della sala operatoria.
7. Consentire il maiale al respiro 2 L di ossigeno con 5% di isoflurane attraverso l'anestesia suina maschera spontaneamente.
8. Esporre le corde vocali attraverso la bocca utilizzando un laringoscopio e spruzzarli con due sbuffi di soluzione topica di lidocaina 2% per evitare laryngospasm intubazione-indotto.
9. Intubare con tubo da 6,5 mm, gonfiare il tubo con 3-5 mL di aria utilizzando una siringa senza ago collegato ad esso.
   Nota: Eseguire la capnometria per assicurarsi che il tubo trachea, che è una parte della macchina di anestesia, è nella posizione corretta e c'è CO₂ torna alla macchina come un'indicazione di corretta ossigenazione.
10. Mantenere l'anestesia dopo l'intubazione con 2% isoflurane.
11. Usare l'unguento veterinario sugli occhi di maiale e chiuderla con una benda di copertura.

2. procedura: Luogo di ricezione

1. Disinfettare il collo e la parete addominale con il peeling a base di iodio soluzione 1%.
2. Avviare un'incisione verticale del midline nel collo anteriore usando la lama n. 23 fino allo sterno.
3. Sezionare i muscoli della cinghia e ritirarlo lateralmente usando Kelly tessuto forbice e riavvolgitore Lahey.
4. Esporre la trachea dal primo anello fino l'ingresso toracico.
5. Quindi, esporre l'arteria carotica comune e la vena giugulare interna per l'anastomosi.
6. Creare una finestra nella seconda o terza cartilagine trachea, ~ 1 cm di larghezza con lama n. 11.
7. Cercare il tubo endotracheale attraverso il difetto trachea generato e assicurarsi che è continuata l'aerazione attraverso il tubo utilizzando il ventilatore senza una perdita.

3. procedura: Falda sito

Nota: Il raccolto di falda del perforatore (SEAP) Arteria epigastrica superiore può essere eseguito, secondo il metodo descritto da Frederic Bodin⁷.

1. Progettare un lembo sulla parte superiore dell'addome di un pennarello chirurgico (Figura 1A).
2. Creare un'incisione ellittica di pelle 4 x 3 cm utilizzando un bisturi n. 23 per la guaina anteriore della parete addominale sul lato mediale del lembo disegnato (Figura 1B).
3. Elevare la guaina (buccia) il lembo dal muscolo retto dell'addome , cercando i perforatori andando al lembo di pelle mentre si tiene la fascia dalla allis.
4. Eseguire la dissezione intramuscolare e seguire i perforatori per i vasi epigastrici superiori (Figura 1B)
5. Ora eseguire l'incisione della pelle laterale sulla patta progettato (Figura 1A) usando un bisturi n. 23 (Figura 1)
6. Bloccare i vasi epigastrici superiori e vene comitantes con la pinza emostatica superiormente ed utilizzare Kelly tessuto forbici per tagliare sotto la pinza emostatica e legare la nave sopra la pinza emostatica da sutura 3-0. Quindi togliere la pinza emostatica.

4. anastomosi e chiusura

1. Mettere su una lente di ingrandimento chirurgico.
2. Bloccare l'arteria carotide utilizzando due emostatiche con 1-2 cm di distanza tra di loro.
3. Uso micro-forbici per tagliare tra l'arteria carotica e legare la parte superiore di doppia sutura non assicurano alcun stillicidio.
4. Utilizzare il morsetto doppio senza la cornice tra l'arteria carotidea e l'arteria patta.
5. Avviare l'anastomosi utilizzando 10-0 suturare semplice spessore completo interpretato.
6. Il primo soggiorno di due suture circa 120 gradi sulla circonferenza della nave poi tra posto 2-3 punti.
7. Allentare il blocco. Se c'è sangue stillano fare la sutura simile presso il sito di stillicidio.
8. Cercare il flusso venoso posteriore da vene comitantes.
9. Eseguire l'anastomosi come descritto al punto 4.1 a 4.7 per la vena giugulare interna e vene comitantes (Figura 1).
10. Utilizzare una dimensione dell'ago di siringa 18 per pungere la pelle per garantire redditività falda vedendo una goccia di sangue.
11. Chiudere la finestra trachea e sutura con la fascia del muscolo del PAES falda mediante sutura 3-0.
12. Esternare e suturare una pagaia di pelle della falda SEAP per l'incisione cutanea del midline cervicale (Figura 2A).
13. Chiudere l'incisione cutanea addominale (Figura 2B).

5. post-operatorio

1. Tornare il maiale in posizione prona.
2. Interrompere l'isoflurano e svezzare il maiale dal ventilatore.
3. Consentire il maiale recuperare nella gabbia animale e monitorare strettamente per assicurare la sua liscia ripresa dalla procedura.
4. Cercare lo sportello sul sito di ricostruzione dopo la guarigione (Figura 2).
5. Guardate il sito donatore nell'animale dopo la guarigione (Figura 2D).
6. Inizio del lattato della soneria al ritmo di 150 mL/h fino al completo recupero e amministrare 0,3 mg di buprenorfina per analgesia.
7. A seguito di extubation, monitorare il maiale attentamente finché ha ripreso conoscenza sufficiente per mantenere la posizione e la respirazione ed è in grado di bere spontaneamente.
8. Mantenere i maiali post-operatorio in luogo separato da animali non gestiti.
9. Avviare intramuscolare amoxicillina-acido clavulanico (14 mg/kg) per 1 settimana.
10. Avviare intramuscolare Meloxicam (0,2 mg/kg) per 1 settimana.

6. l'eutanasia

1. Iniziare l'anestesia per il maiale iniettando propofol attraverso i.v. (5-10 mL) e mantenerla con isoflurano 5%.
2. Intubare il maiale come descritto sul gradino (1.1, 1.2, 1.6-1.10).
3. Indurre l'arresto cardiaco tramite l'iniezione endovenosa di 40 mmol KCl.

Risultati

Abbiamo effettuato la procedura su sei suini: ricostruzione di difetto della pelle cervicale su due maiali, ricostruzione tracheale su due maiali e libero della falda per verificare l'anastomosi vascolare periferica in due maiali. I maiali sono stati monitorati per 3 mesi e non c'era alcun segno clinico di deficit neurologico.

Il tempo medio per ischemia era 50 min (range, min 35-80); il tempo è diminuito come la procedura è sta...

Discussione

Difetti e morbosità significativa possono verificarsi nella testa e del collo pazienti malignità durante l'amministrazione chirurgica. Trasferimento libero microvascolare del tessuto è diventato essenziale per la ricostruzione nella maggior parte dei casi. La vitalità della falda è un problema critico, che richiede fermezza, precisa movimentazione del pedicle, sensazione tattile, abilità visuospatial e flow operativo eccellente dal chirurgo⁸. Per sviluppare queste competenze, uno ha bisogno di pra...

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
Pigs XP Bio, Seoul, Corea
Rasoio chirurgico per la depilazione	3M
22 catetere	B.BRAUN
siringa con ago misura 18	Jung Rim Medical
Intramuscolare alfaxan	Careside		10ml/VAL
Intramuscularxylazine	Bayer
Azaperone intramuscolare	Sigma-aldrich		34223
Atropina intramuscolare	Daewon		0,5 mg / A
Cefazolina intramuscolare	Yuhan		1g
Ketorolac	Hana Pharm		30mg
Maschera per anestesia suina	DRE		1392
tubo del bracciale endotracheale 6,5 mm	SMITH medico		100/150/065
Macchina per anestesia	Drä ger		PRIMUS IE
2% lidocaina soluzione topica	Taejoon
	Terramicina Pfizer
cerotto per la copertura degli occhi	Innomed		S-universal010S
soluzione betadina 1%.	Corea Pharma
garza 4 * 4	First Medical		22 * 30CM 320S
lama n. 23	Paragon		23
divaricatore lahey	V.Mueller		SU3960
kelly tessuto forbici	SOLCO		05-1990
lama n. 11	Paragon		11
penna di marcatura chirurgica	Aspen Surgical		Regular #2750
allis	V.Mueller		SU4055
cravatta sutura	Covidein		senza ago
3.5× lente chirurgica	zeiss		eyemag
smart doppio morsetto senza cornice	V.Mueller		CH7155
microforbici	AESCULAP		FD038R
Lattato di Ringer	Daehan		500ml/1 bustina
di amoxicillina– clavulanato	Ilsung		0,6 g / V
Meloxicam	Samil		7,5 mg
propofol	Dong Kook		120 mg / V
soluzione KCl per via endovenosa	Daehan		20 ml / 50P
zanzara curva	SOLCO		013-0111
zanzara diritta	SOLCO		05-1050
ethilone 10-0 sutura	ethicone		10/0W1756
Vicryl 3-0.	ethicone		3/0W9890
buprenorfina	Hanlim		0,3mg