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Articolo metodologico

Valutazione delle risposte ospite-patogeno e l'efficacia del vaccino nei topi

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DOI:

10.3791/58930

22 febbraio 2019

In questo articolo

Sommario

Qui presentiamo un elegante protocollo per la valutazione in vivo di vaccino efficacia e host le risposte immunitarie. Questo protocollo può essere adattato per i modelli di vaccino che studiano virale, batterica o parassitari patogeni.

Abstract

I vaccini sono una meraviglia medica di 20th secolo. Hanno drasticamente ridotto la morbilità e la mortalità causata da malattie infettive e contribuito ad un aumento notevole nella speranza di vita intorno al globo. Tuttavia, determinare l'efficacia del vaccino rimane una sfida. La prova emergente suggerisce che l'attuale vaccino acellulare (aPV) per Bordetella pertussis (pertosse del b.) induce immunità non ottimali. Di conseguenza, una sfida importante è la progettazione di un vaccino di prossima generazione che induce immunità protettiva senza gli effetti collaterali di un vaccino a cellule intere (wPV). Qui descriviamo un protocollo che abbiamo usato per testare l'efficacia di un adiuvante promettente, romanzo che inclina le risposte immunitarie ad un fenotipo Th1/Th17 protettivo e promuove una migliore distanza di una sfida di b. pertussis dal tratto respiratorio murino. Questo articolo viene descritto il protocollo per l'immunizzazione del mouse, inoculazione batterica, tessuto raccolta e analisi delle risposte immunitarie. Utilizzando questo metodo, all'interno del nostro modello, abbiamo con successo Abbiamo delucidato meccanismi cruciali suscitate da un vaccino di pertosse acellulare promettente, generazione. Questo metodo può essere applicato a qualsiasi modello di malattia infettiva al fine di determinare l'efficacia del vaccino.

Introduzione

I vaccini rappresentano uno dei più grandi successi di salute pubblica del ventesimo secolo, ma noi ancora non comprendiamo pienamente i meccanismi da cui successo vaccini stimolano l'immunità protettiva. L'identificazione di marcatori molecolari (ad es., gli indicatori di attivazione delle cellule, espansione dei sottotipi cellulari e pattern di espressione genica) indotto dopo vaccinazione offre una pletora di informazioni per la previsione e generando un efficace risposta immunitaria. La complessità delle risposte ospite-patogeno non può essere replicata adeguatamente utilizzando in vitro delle cellule di coltura sistemi1. ....

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Protocollo

Tutti gli esperimenti con gli animali vivi sono stati condotti seguendo un protocollo approvato da The Ohio State University IACUC conformemente agli orientamenti IACUC. Topi C57BL/6 sono stati utilizzati in tutte le vaccinazioni e infezioni. Topi maschi e femminili sono utilizzati in ogni gruppo secondo le linee guida NIH. Il numero di animali per ogni gruppo è stato determinato dai calcoli di potere basati sulle differenze previste nel risultato fra gruppi sperimentali. Ad esempio, 8 topi per ogni gruppo produrrà 80% della potenza a α = 0.05 (2-sided) per un esempio di 2 t- test per rilevare differenze nel risultato di interesse di 1,33 deviazioni standard ....

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Risultati

Il modello descritto illustra un metodo per valutare l'efficienza del vaccino e le risposte immunitarie durante le interazioni ospite-patogeno. Figura 1 illustra la pianificazione rappresentante vaccino usata per immunizzare e infettare i topi e tessuti per l'analisi della raccolta. Figura 2 viene illustrato il programma di installazione del sistema di anestesia impiegato per indurre i topi, consentendo gli investigatori a conseg.......

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Discussione

Il protocollo completo descritto qui per studiare l'immunità indotta dal vaccino all'infezione di b. pertussis permetterà anche la valutazione della risposta ospite ad una varietà di altri agenti patogeni. Il protocollo viene descritto metodi per consegnare le immunizzazioni, determinare vaccino efficacia segue agente patogeno sfida e dissezione parallela della funzione immune. Adattare il protocollo al fine di studiare altri agenti patogeni, diversi parametri avrebbero bisogno di essere modificati. Questi inclu.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da fondi 1R01AI125560-01 e Start-up da The Ohio State University.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Camera di induzione da 2 litriVet Equip941444
qualsiasi marca è appropriata
Bordet Gengou Agar BaseBD bioscience248200
CaseinaSigmaC-7078
Acidi casaminoVWRJ851-500GFiltro Scholte (SS) componenti dei media
Acido L-glutammicoProdotti di ricerca IntG36020-500
L-ProlinaProdotti di ricerca IntP50200-500
Cloruro di sodioFisherBP358-10
Fosfato di potassio monobasicoFisherBP362-1
Cloruro di potassioFisherP217-500
Cloruro di magnesio esaidratoFisherM2670-500G
Cloruro di calcioFisherC75-500
Tris baseFisherBP153-1
L-cisteina HClFisherBP376-100SS media suplements
Solfato ferroso eptaidratoSigmaF-7002
NiacinaProdotti di ricerca IntN20080-100
GlutationeProdotti di ricerca IntG22010-25
Acido ascorbicoProdotti di ricerca IntA50040-500
RPMI 1640ThermoFisher Scientific11875093
FBSSigmaF2442-500mL  qualsiasi fonte statunitense, gentamicina non inattivata dal calore
ThermoFisher Scientific15710064
B-mercaptoetanoloFisherBP176-100
15mL dounce macina tessutiWheaton357544qualsiasi marca simile è appropriato
Omogeneizzatore manuale senza filiKontes/Sigma Z359971-1EAqualsiasi marca simile è appropriata
Strumenti - forbici, forbici curve, pinze, pinze fini, divaricatori triangolariqualsiasi marca è appropriata
Siringhe da 3 mlBD bioscience309657
tubi conici da 15 mlFisher
provette per microfuge da 1,5 mlDenvilleC2170
70um filtri cellulariFisher
piastre da 60 mmThermoFisher Scientific130181
piastre per coltura tissutale a 48 pozzettiThermoFisher Scientific08-772-1C
Siringa da insulina da 1 ml 28G1/2Fisher Scientific/Excel Int.14-841-31
Mouse IFN-gamma ELISA Ready-SET-Go! KitInvitrogen / eBioscience50-173-21
Mouse IL-17 ELISA Ready-SET-Go! KitInvitrogen / eBioscience50-173-77
Mouse IL-5 ELISA Ready-SET-Go! KitInvitrogen / eBioscience50-172-09
Fluriso Vet One V1 501017 33965122363548

Riferimenti

  1. Tacken, P. J., Figdor, C. G. Targeted antigen delivery and activation of dendritic cells in vivo: steps towards cost effective vaccines. Seminars in Immunology. 23 (1), 12-20 (2011).
  2. Kilgore, P. E., Salim, A. M., Zervos, M. J., Schmitt, H. J.

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Risposta ospite-patogenoimmunizzazione del topoinoculazione battericaprelievo di tessutienumerazione delle CFUcitometria a flussoanalisi ELISpotBordetella pertussispolarizzazione Th1 Th17