Articolo metodologico

Movimento shootward di CFDA Tracer caricato nei tessuti lavello inferiore di Arabidopsis

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DOI:

10.3791/59606

11 maggio 2019

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

L'obiettivo di questo protocollo è quello di mostrare come caricare il CFDA in diversi siti delle parti inferiori di Arabidopsis. Presentiamo quindi il modello di distribuzione risultante di CF nei germogli.

Abstract

Il simplastico Tracer 5 (6)-carbossimetilfluoreina diacetato (CFDA) è stato ampiamente applicato in piante viventi per dimostrare la connessione intercellulare, il trasporto floema e il patterning vascolare. Questo protocollo Mostra il movimento da basso a superiore della carbossimetilfluoreina (CF) nell' Arabidopsis utilizzando rispettivamente la procedura di taglio radicale e di ipocotilizzazione. Queste due diverse procedure si traducono in diverse efficienze del movimento CF: circa il 91% dell'aspetto di CF nei germogli con la procedura di ipocotilio-pizzicamento, mentre solo circa 70% aspetto di CF con la procedura di root-Cutting. Il semplice cambiamento dei siti di carico, con conseguenti cambiamenti significativi nell'efficienza mobile di questo colorante simplastico, suggerisce che il movimento CF potrebbe essere soggetto alla regolazione simplastico, molto probabilmente dalla giunzione radice-ipocotyl.

Introduzione

Molti traccianti fluorescenti con una gamma di proprietà spettrali, come 5 (6)-carbossilfluoreina (CF) 1,8-idrossipirene-1, 3, 6-acido trisolfonico2, Lucifero giallo ch (Lych)3, esculin e CTER4, sono stati sviluppati e applicato nelle piante per monitorare il movimento simplastico e l'attività floema. Generalmente, un colorante simplastico viene caricato in un taglio nel tessuto bersaglio e la dispersione sequenziale del reporter in altre parti dell'impianto dimostrerà la comunicazione intercellulare. Anche se il meccanismo di assorbimento del colorante non è pienamente com....

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Protocollo

1. Arabidopsis crescita verticale in MS medio

  1. L'interno dell'armadio a flusso laminare deve essere trattato con 30 minuti di luce UV e 15 minuti di flusso d'aria prima dell'uso. Assicurarsi di chiudere la porta di vetro quando la luce UV è acceso. Spruzzare tutti gli utensili e le piastre con 70% di etanolo prima di metterli nel cabinet.
  2. Preparare il mezzo Murashige e Skoog (MS) in una piastra di Petri standard di 90 mm di diametro sotto un armadio a flusso laminare.
    Nota: il supporto MS contiene i seguenti componenti: 20,6 mM NH4No3, 18,8 mm kno3, 1,25 mm KH2po4, 1,5 mM MgSO4<....

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Risultati

Il movimento symplastic è spesso soggetto a fluttuazioni ambientali. Perturbazione dello stato vegetativo in crescita, e anche il processo di preparazione dei tessuti influenzerà il limite di esclusione di dimensioni di Plasmodesmata, influenzando così il trasporto simplastico22. Per migliorare l'efficienza di colorazione, confiniamo il nostro funzionamento nella sala di crescita, dove la temperatura e l'umidità è strettamente controllata, e anche eseguire l'intera.......

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Discussione

Studi emergenti hanno dimostrato che le piante possono reagire rapidamente agli stimoli esterni23, compresa la manipolazione introdotta nelle procedure sperimentali22. Nel nostro esperimento iniziale, la nostra supervisione di questa conoscenza spesso porta a un fallimento di colorazione. Con queste lezioni, suggeriamo di tenere a mente le seguenti precauzioni quando si esegue questo esperimento: (1) i semi dopo la raccolta devono essere conservati in un armadio di stoccagg.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato finanziato dalla Fondazione nazionale di scienze naturali della Cina (31671257) e dal centro di innovazione collaborativa di Hubei per l'industria del grano (LXT-16-18).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
KNO3   Reagente chimico Sinopharm10017218
KH2PO4 Reagente chimico Sinopharm10017608
MgSO4· 7H2OReagente chimico Sinopharm10013018
CaCl2· 2H2OReagente chimico Sinopharm20011160
MnSO4· H2Reagente chimico Sinopharm10013418
Na2MoO4· 2H2OReagente chimico Sinopharm10019818
Acido boricoReagente chimico Sinopharm10004818
ZnSO4· 7H2OReagente chimico Sinopharm10024018
CuSO4· 5H2OReagente chimico Sinopharm10008218
CoCl2· 6H2OReagente chimico Sinopharm10007216
Reagente chimico KISinopharm10017160
FeSO4· 7H2OReagente chimico Sinopharm10012118
EDTA Reagente chimico Sinopharm10009717
NaOHReagente chimico Sinopharm10019718
KOHReagente chimico Sinopharm10017018
saccarosioReagente chimico Sinopharm10021418
Myo-inositol   MACKLINI811835
Acido nicotinico MACKLINN814565
Piridossina HClMACKLINV820447
Tiamina HClMACKLINT818865
GlicinaMACKLING800880
Agar polvereNovonZZ14022
Microscopio a fluorescenzaZeissAxio Zoom V16
Microscopio da dissezioneSDPTOPSRE-1030
200μ l. pipettaDragon Laboratory Instruments713111110000-20-200ul
2.5μ l. pipettaEppendorf3120000011
Pinza fine PINZEST-15
ParafilmPARAFILMPM-996
Lama a doppia faccia in acciaio inossidabileGillettePlatinum-Plus Lama
a doppio taglio

Riferimenti

  1. Grignon, N., Touraine, B., Durand, M. 6(5)Carboxyfluorescein as a tracer of phloem sap translocation. American Journal of Botany. 76, 871-877 (1989).
  2. Wright, K. M., Oparka, K. J. The fluorescent ....

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Trasporto simplasticomovimento nel floemataglio della radicestrozzatura dell ipocotilepiante di Arabidopsissonda fluorescentetrasporto attraverso i plasmodesmicolorazione vascolare

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