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Articolo metodologico

Generazione di neurosfere da neuroni ippocampali primari misti e corticali isolati da E14-E16 Sprague Dawley Rat Embryo

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DOI:

10.3791/59800

31 agosto 2019

In questo articolo

Sommario

Presentato qui è un protocollo per la generazione spontanea di neurosfere arricchite in cellule progenitrici neurali da neuroni placcati ad alta densità. Durante lo stesso esperimento, quando i neuroni sono placcati ad una densità inferiore, il protocollo si traduce anche in colture di neuroni ratti primari prolungati.

Abstract

La cultura primaria dei neuroni è una tecnica essenziale nel campo delle neuroscienze. Per ottenere approfondimenti meccanicistici nel cervello, è essenziale avere un robusto modello in vitro che può essere sfruttato per vari studi di neurobiologia. Anche se le colture neuronali primarie (cioè le colture ippocampali a lungo termine) hanno fornito agli scienziati modelli, non rappresentano ancora completamente la complessità della rete cerebrale. Sulla scia di queste limitazioni, è emerso un nuovo modello usando le neurosfere, che assomiglia più in sé al tessuto cerebrale. Il presente protocollo descrive la placcatura di densità alte e basse di neuroni corticali e ippocampali misti isolati dall'embrione dei ratti Sprague Dawley del giorno embrionale 14-16. Questo permette per la generazione di neurosfere e la cultura dei neuroni primari a lungo termine come due piattaforme indipendenti per condurre ulteriori studi. Questo processo è estremamente semplice e conveniente, in quanto riduce al minimo diversi passaggi e reagenti precedentemente ritenuti essenziali per la coltura dei neuroni. Questo è un protocollo robusto con requisiti minimi che possono essere eseguiti con risultati raggiungibili e ulteriormente utilizzati per una varietà di studi relativi alle neuroscienze.

Introduzione

Il cervello è un intricato circuito delle cellule neuronali e non neuronali. Per anni, gli scienziati hanno cercato di ottenere informazioni su questo complesso meccanismo. Per farlo, i neuroscienziati inizialmente hanno fatto ricorso a varie linee cellulari basate sui nervi trasformate per le indagini. Tuttavia, l'incapacità di queste linee cellulari clonali di formare forti connessioni sinaptiche e assoni o dendriti adeguati ha spostato l'interesse scientifico alle colture neuronali primarie1,2. L'aspetto più eccitante della cultura neuronale primaria è che crea l'opportunità di osservare e manipolare i neur....

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Protocollo

Tutte le procedure sperimentali che coinvolgono animali sono state approvate dal Comitato Etico Istituzionale degli Animali del CSIR-Indian Institute of Chemical Biology (IICB/AEC/Meeting/Apr/2018/1).

1. Preparazione del reagente e dei supporti

  1. Soluzione polid-lysina (PDL): preparare soluzioni PDL a concentrazioni di 0,1 mg/mL in acqua deionizzata e conservare in 4 gradi centigradi fino all'uso.
  2. Mezzo di dissociazione: A 1 L di acqua sterile, filtrata deionizzata, combinare i seguenti componenti nelle rispettive concentrazioni: cloruro di sodio (8 mg/mL), cloruro di potassio (0,4 mg/mL), fosfato di potassio monobasico (0....

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Risultati

In questo protocollo, è stata chiarita una semplice strategia in cui si ottengono densità di placcatura a cellule variabili da due diverse piattaforme di screening neurale. La figura 1A,B illustra l'aderenza delle cellule dopo 4 h di placcatura dei neuroni in cellule placcate ad alta e bassa densità, rispettivamente. Osservando la corretta aderenza dei neuroni, come mostrato nella Figura1, il mezzo di placcatura .......

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Discussione

Questo protocollo descrive che come alterando la densità di placcatura cellulare dei neuroni primari, si ottengono due piattaforme neuronali variabili. Anche se questo è un metodo semplice, ogni passo deve essere eseguita meticolosamente per ottenere i risultati desiderati. Altri metodi precedenti hanno segnalato colture di neuroni primari a lungo termine o culture della neurosfera. La maggior parte dei protocolli di coltura neuronale primaria hanno coinvolto la coltura dei neuroni ippocampali per 3-5 settimane, ma la ma.......

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Dichiarazioni

Gli autori non dichiarano interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Ringraziamo l'impianto per animali CSIR-IICB. G. D. ringrazia ICMR, J. K. e V. G. ringraziano DST Inspire, e D. M. ringrazia NOT, India per le loro borse di studio. S. G. riconosce gentilmente seRB (EMR/2015/002230) India per fornire sostegno finanziario.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Anti-GFAPAbcamAB7260
Anti-NestinAbcamAB92391
Anti-O4MilliporeMAB345
Anti-TauAbcamAB76128
Anti-Tuj1MilliporeMAB1637
B27 Integratore senza sieroGibco17504-044
Cell CounterLife technologiesCountess II FL
CO2 IncubatoreEppendorfGalaxy 170 R
D-glucosio SDFCL38450-K05
EtanoloMerck Millipore100983
Microscopio a fluorescenzaOlympusIX83 Modello
FormaldeideSigma Aldrich47608
GlutaMax-I SupplementoGibco35050-061
GtXM IgG FluorMilliporeAP1814
GtXM IgG (H + L)MilliporeAP124C
HEPESSRL16826
Hoechst 33258Calbiochem382061
Siero di CavalloHiMediaRM10674
Acido cloridricoRankemH0100
Cappa laminareBioBaseBBS-V1800
MEM Eagle' s con Earle' s BSS Sigma AldrichM-2279
MicroscopioDewinterVictory Model
Neurobasal Medium Gibco21103-049
Plasticware (piastra a 24 pozzetti, filtri cellulari e piastre a bassa aderenza)BD Falcon353047, 352350 e 3471
Petridish da 90 mmHimediaPW001
Penicillina/Streptomicina Gibco15140-122
Poli-D-lisinaMilliporeA.003.E
Cloruro di potassio Fisher ScientificBP366-500
Fosfato di potassio monobasico MerckMI6M562401
Cloruro di sodio Qualigem15918
Fosfato di sodio bibasicoMerckMI6M562328
StereomicrosopeDewinterZoomstar Modello
Triton-X 100SRL2020130
Trypan Blue SolutionGibco15250-061
0,25 % Tripsina-EDTAGibco25200-072

Riferimenti

  1. Lorsch, J. R., Collins, F. S., Lippincott-Schwartz, J. Fixing problems with cell lines. Science. 346 (6216), 1452-1453 (2014).
  2. Masters, J. R. W. Cell line misidentification: the beginning of the end. Nature Reviews Cancer. 10 (6), 441-448 (2010).
  3. Banker, G.

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Ristampe e permessi

Tag

Generazione di neurosferecoltura primaria di neuronineuroni corticali ippocampalidensit di semina cellularedigestione con tripsina EDTAvitalit con blu di trypanvitalit con saggio MTTcaratterizzazione tramite immunocolorazionenuclei con Hoechst 33258