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Articolo metodologico

Elaborazione della coltura embrionale, del guscio d'uovo e fungina per la microscopia elettronica a scansione

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DOI:

10.3791/60018

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16 agosto 2019

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In questo articolo

Sommario

Qui presentiamo protocolli di elaborazione dettagliati per l'imaging di campioni di tessuti delicati utilizzando la microscopia elettronica a scansione (SEM). Per la preparazione di gusci d'uovo rigidi, embrioni nelle fasi iniziali dello sviluppo, l'essiccazione dell'aria semplice e l'essiccazione a punti critici, sono descritti per la preparazione di gusci d'uovo rigidi, embrioni nelle fasi iniziali dello sviluppo e colture fungine.

Abstract

Sebbene la microscopia elettronica a scansione (SEM) sia ampiamente utilizzata per l'analisi ultrastrutturale di vari campioni biologici e non biologici, i metodi coinvolti nell'elaborazione di diversi campioni biologici coinvolgono pratiche uniche. Tutte le pratiche convenzionali descritte nella letteratura per l'elaborazione dei campioni trovano ancora applicazioni utili, ma sottili cambiamenti nella preparazione dei campioni possono alterare la qualità dell'immagine, così come, introdurre artefatti. Pertanto, l'utilizzo di una tecnica di preparazione campione unica specifica per il tipo di tessuto analizzato è necessario per ottenere un'immagine di buona qualità con risoluzione ultrastrutturale. L'obiettivo di questo studio è fornire i protocolli ottimali di preparazione del campione per l'imaging di embrioni, gusci d'uovo rigidi e colture fungine utilizzando SEM. Le seguenti ottimizzazioni sono state raccomandate per produrre buoni risultati per i tre diversi delicati campioni biologici studiati. L'uso di fissativi più lievi come 4% paraformaldeide o 3% glutaraldeide seguita da disidratazione con serie di etanolo è obbligatorio. Il micelio fungino sui blocchi di agar ottenuti dalle colture di scorrimento produce una migliore integrità ultrastrutturale rispetto alle colture prese direttamente dalle piastre di agar. L'essiccazione chimica degli embrioni con HMDS fornisce l'essiccazione senza introdurre artefatti di tensione superficiale rispetto all'essiccazione a punti critici. HMDS previene la fessurazione causata dal restringimento poiché i campioni sono meno fragili durante l'essiccazione. Tuttavia, per la coltura fungina, l'essiccazione a punti critici fornisce una qualità dell'immagine accettabile rispetto all'essiccazione chimica. I gusci d'uovo possono essere immagini senza particolari passaggi di preparazione, ad eccezione del lavaggio completo e dell'essiccazione dell'aria prima del montaggio. Le metodologie di preparazione sono state standardizzate in base alla qualità accettabile dell'immagine ottenuta con ogni prova.

Introduzione

L'analisi ultrastrutturale del microscopio elettronico a scansione (SEM) e l'imaging intracellulare completano la microscopia luminosa per la profilazione tridimensionale di procadioti, piante e animali. L'elevata risoluzione spaziale di un SEM lo rende una delle tecniche più versatili e potenti disponibili per l'esame delle caratteristiche microstrutturali dei campioni su scala nanometrica a micrometro. Gli esemplari desicizzati sono deferiti a strutture compositive e topografiche con intensi dettagli, che forniscono le basi per lo sviluppo di valide conclusioni sulle relazioni funzionali1,2,

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Protocollo

NOTA: le uova di tartaruga dipinta (Chrysemys picta) utilizzate in questo studio sono state raccolte durante la stagione di nidificazione da maggio a giugno 2015-16 dalla Rice Creek Field Station, Oswego New York con il permesso ottenuto dal Dipartimento ambientale dello Stato di New York Conservazione (DEC).

1. Metodo di essiccazione chimica per la lavorazione degli embrioni per SEM

  1. Raccogli le uova di tartaruga dai campi durante la stagione della nidificazione. Preparare in anticipo le camere di incubazione, fatte di scatole di plastica con coperchi (L x W x H) 6,7 cm x 25,4 cm x 10,2 cm riempite con mezzo da letto prep....

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Risultati

La figura 1 mostra l'analisi micrografica elettronica a scansione degli embrioni della tartaruga dipinta (Chrysemys picta). Per l'imaging SEM sono state utilizzate uova di tartaruga verniciate raccolte e incubate su un supporto da letto, montate su mozziconi di alluminio a seguito di essiccazione chimica (Figura 1A-E). Una vista laterale di un embrione di fase 12 mostra le strutture craniofacciali; la prominenza mascellare si estende o.......

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Discussione

Nel nostro studio, diversi agenti di fissazione, metodi di disidratazione e essiccazione sono stati testati per preparare tre diversi campioni biologici delicati per l'imaging SEM: embrioni, gusci di uova e colture fungine. SeM è comunemente usato per l'analisi della superficie, quindi la penetrazione fissativa è meno preoccupante, ma bisogna capire che strutture interne scarsamente fissate causeranno restringimento verso l'interno o/e strutture superficiali collassate. Il tempo di fissazione prolungato deve essere consi.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare

Ringraziamenti

Gli autori desiderano ringraziare il Dr. Daniel Baldassarre, SUNY Oswego per le discussioni e i commenti utili sul manoscritto. Questo studio è stato sostenuto da Rice Creek Associate Grants, Oswego; Sfida concede SUNY Oswego e National Science Foundation (NSF) Small Grants a PGL e JG.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
AgarFischer ScientificS25127Aper colture di vetrini
Tronchetto in alluminioTedpella1611112,7 mm x 8 mm
BD Difco Terreni di coltura disidratati: Destrosio di patate AgarBD 213400DF0013-17-6Terreni per l'isolamento e la coltivazione di funghi, lieviti e muffe
CloramfenicoloFischer BioReagentsBP904-100Antibiotico per terreni
Serra in vermiculite grossolanaMegastoreSO-VER-12lettiera media
Piastra trasparente a 12 pozzettiCorning07-201-589per il fissaggio dell'embrione
Vetrini coprioggettiFischer ScientificS17525Bper la coltura di vetrini
Essiccatore per punti critici QuorumCPDEMS850essiccazione per punti critici
Piatti di colturaFischer Scientific08 747BPIATTO PETRI 100X10MM 12/PK
EtanoloFischer ScientificA406P 4agente di disidratazione
Pincipe - Aquarius PinzettaTedpella5804stile 4, lunghezza 108mm, larghezza x spessore 0,017 x 0,17 mm
GlutaraldeideFischer ScientificG151-1fissativo
Bersaglio d'oro per sputter coaterDENTON VACUUMTAR001-0158Obiettivo dell'oro, 2,375″ D X .002″
EsametildisilazanaFischer ScientificC19479-5000agente essiccante chimico
Salviette Kim KimtechS-8115pulizia
Vetrini per microscopioThermo Scientific67-762-16per la coltura di vetrini
Forbici per microscopiaTedpella1327Doppia punta, acciaio inossidabile, 100 mm L (3-5/8").
Micro-forbiciTedpella1346Tipo Vannas, dritto, 80mm
L Moria Cucchiaio per embrioni perforatoFine Science Tools10370-17Lunghezza 14,5 cm, diametro punta 20 mm, profondità cucchiaio 5 mm
Inserti Netwell Corning0330B09Inserti da 15 mm con 74 &; m La membrana in poliestere funge da pratici vettori durante la lavorazione dei campioni in diversi solventi
ParaformaldeideFischer ScientificT353 500fissativo
Muschio di torbaWalmart- Miracle Gro551705263lettiera media
linguette PELCO nastro conduttivo in carbonio a doppia astaTedpella500012 mm
OD Sputter coaterDENTON VACUUMDESK Vrivestimento metallico sottile
SEMJEOL USAJEOL JSM 6610LVmicroscopia elettronica
a scansione

Riferimenti

  1. Packard, M. J. Ultrastructural Morphology of the Shell and Shell Membrane of Eggs of Common Snapping Turtles (Chelydra serpentina). Journal of Morphology. 165 (2), 187-204 (1980).
  2. Solomon, S. E., Watt, J. M.

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Ristampe e permessi

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