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Articolo metodologico

Visualizzazione e analisi del trasporto intracellulare di organelli e di altri carichi in Astrociti

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DOI:

10.3791/60230

28 agosto 2019

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Qui descriviamo un metodo in vitro di imaging dal vivo per visualizzare il trasporto intracellulare di organelli e il traffico di proteine della membrana plasmatica negli astrociti murini. Questo protocollo presenta anche una metodologia di analisi delle immagini per determinare gli itinerari e la cinetica nel trasporto merci.

Abstract

Gli astrociti sono tra i tipi di cellule più abbondanti nel cervello adulto, dove svolgono ruoli chiave in una molteplicità di funzioni. Come un giocatore centrale nell'omeostasi del cervello, gli astrociti forniscono ai neuroni metaboliti vitali e tamponamento di acqua extracellulare, ioni e glutammato. Componente integrante della sinapsi "tri-partite", gli astrociti sono anche critici nella formazione, potatura, manutenzione e modulazione delle sinapsi. Per consentire queste funzioni altamente interattive, gli astrociti comunicano tra di loro e con altre cellule gliali, neuroni, la vascolatura cerebrale e l'ambiente extracellulare attraverso una moltitudine di proteine della membrana specializzate che includono cellule molecole di aderenza, acquaporine, canali ionici, trasportatori di neurotrasmettitori e molecole di giunzione gap. Per supportare questo flusso dinamico, gli astrociti, come i neuroni, si basano su un trasporto intracellulare strettamente coordinato ed efficiente. A differenza dei neuroni, dove il traffico intracellulare è stato ampiamente delineato, il trasporto basato su microtubuli negli astrociti è stato meno studiato. Tuttavia, il traffico eso- ed endocitico delle proteine della membrana cellulare e del trasporto di organelli intracellulari orchestra la biologia normale degli astrociti, e questi processi sono spesso colpiti dalla malattia o in risposta a lesioni. Qui presentiamo un protocollo semplice alla coltura astrociti murini di alta qualità, per etichettare fluorescentmente proteine astrociti e organelli di interesse, e per registrare la loro dinamica di trasporto intracellulare utilizzando la microscopia con time-lapse. Dimostriamo anche come estrarre e quantificare i parametri di trasporto rilevanti dai film acquisiti utilizzando i plug-in disponibili per il software di analisi delle immagini (ad esempio, ImageJ/FIJI).

Introduzione

Gli astrociti sono le cellule più abbondanti nel sistema nervoso centrale adulto, dove svolgono funzioni uniche di sviluppo e omeostatiche1. Gli astrociti modulano lo sviluppo sinaptico attraverso il contatto diretto con terminali pre e post-sinaptici come parte della sinapsi tri-partita, che contiene recettori del neurotrasmettitore, trasportatori e molecole di adesione cellulare che facilitano la formazione di sinapsi e comunicazione neurona-astrocito2. Inoltre, gli astrociti controllano attivamente la trasmissione sinaptica e prevengono l'eccitotossicità neuronale rimuovendo rapidamente i neurotrasmettitori eccitatori....

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Protocollo

Tutte le procedure sugli animali sono state eseguite con l'approvazione dell'Università della Carolina del Nord presso il Chapel Hill Animal Care and Use Committee (IACUC).

1. Dissezione cerebrale e cultura dei principali astrociti del topo

NOTA: il seguente protocollo è stato adattato dai metodi pubblicati, che segue la procedura originale sviluppata da McCarthy e deVellis13,14,15. Le colture cellulari miste di mcCarthy/deVellis (MD) sono preparate dal giorno postnatale 2-4 (P2-P4), trattate con un fattore anti-mitotico, ....

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Risultati

Il protocollo per la creazione di astrociti MD topi sopra descritti dovrebbe produrre culture riproducibili e di alta qualità. Sebbene le colture contengano inizialmente un mix di astrociti, fibroblasti e altre cellule gliali, tra cui microglia e oligodendrociti (Figura1Bi,Biv; punte di freccia rosse), l'aggiunta di AraC alla coltura mista tra DIV5-DIV7 riduce al minimo la proliferazione di queste cellule contaminanti. Il trattamento combinato AraC e la strategia di purifica.......

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Discussione

Qui, descriviamo un approccio sperimentale per esprimere, visualizzare e monitorare gli organelli etichettati fluorescentmente e le proteine della membrana di interesse utilizzando la microscopia video time-lapse in astrociclici corticali corticali di topo ad alta purezza. Illustreremo anche una metodologia per misurare la dinamica delle particelle. La visualizzazione diretta delle dinamiche di proteine e organelli negli astrociti primari fornisce un potente strumento per studiare la regolazione del trasporto intracellul.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

DNL è stato supportato dalla University of North Carolina a Chapel Hill (UNC) School of Medicine come Simmons Scholar. TWR è stata supportata da UNC PREP Grant R25 GM089569. Il lavoro che utilizza l'UNC Neuroscience Center Microscopy Core Facility è stato sostenuto, in parte, dal finanziamento del NIH-NINDS Neuroscience Center Support Grant P3 NS0 NS0 45892 e del NIH-NICHD Intellectual and Developmental Disabilities Research Center Support Grant U54 HD079124.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
2,5% tripsina (10x)Gibco15090-046
Centrifuga da bancoThermo Scientific75-203-637Sorvall ST8 Centrifuga
per colture cellulari CloneGen Clone25-511
Microscopio per colture cellulariZeissWSN-AXIOVERT A1Vert.A1 cannocchiale invertito, microscopio per colture tissutali invertito con capacità fluorescenti
Citosina ArabinosideSigmaC1768-100MG(AraC) Sciogliere la polvere liofilizzata in acqua sterile per colture cellulari per ottenere uno stock di 10 mM, aliquotare e congelare per la conservazione a lungo termine
DAPISigmaD9542-5MGSciogliere la polvere liofilizzata in acqua deionizzata a una concentrazione massima di 20 mg/ml, riscaldare o sonicare secondo necessità. Utilizzare a 300 nM per la controcolorazione.
Microscopio da dissezioneZeissStemi 305
Forbici da dissezioneFST14558-09
Dulbecco's Modified Eagle MediumGen Clone25-500
Fetale Siero bovinoGemini100-106Inattivato a caldo
FIJI (Fiji è solo l'immagine J)NIHVersione 1.52i
Pinzette a punta fineF.S.T11254-20Stile #5
Sorgente luminosa a fluorescenzaExcelitas012-63000X-Cite 120Q
GFAP Anticorpo Segnalazionecellulare3670SGFAP (GA5) Anticorpo monoclonale di topo
Piatti con fondo in vetroMattek corporationP35G-1.5-14-CPiatto da 35 mm | N. 1.5 Vetrino coprioggetti | Diametro del vetro 14 mm | Pinze Graefe non rivestite
F.S.T11054-10Pinze Graefe Iris con punte curve
Colorante fluorescente verde che colora i compartimenti acidi (endosomi tardivi e lisosomi)Life TechnologiesL7526LysoTracker Green DND 26. Pre-disciolto in DMSOS in una soluzione stock da 1 mM. Diluire fino alla concentrazione di lavoro finale nel terreno di coltura o nel tampone scelto.
Soluzione salina bilanciata di Hank (10x)Gibco14065-056Senza magnesio e calcio
Imaging MediaLife TechnologiesA14291DJSoluzione di imaging di cellule vive
Microscopio confocale invertitoZeissLSM 780
KymoToolBoxhttps://github.com/fabricecordelieres/IJ_KymoToolBox
Reagente per potenziare la lipofezioneLife Technologies11514015Plus
Reagente per lipofezioneTechnologies15338100Reagente per lipofectamina LTX Incubatore
agitazione orbitaleNew Brunswick Scientific8261-30-1008Innova 4230 , incubatore con agitazione orbitale con controllo della temperatura e della velocità
Soluzione di penicillina/strepomicina (100x)Gen Clone25-512
Soluzione salina tamponata con fosfato (10x)Gen Clone25-507x
Poli-D-lisina bromidratoSigmaP7405Sciogliere in tampone Tris, pH 8,5, a 1 mg/mL. Congelare per la conservazione a lungo termine. Evitare cicli di congelamento e scongelamento
Siero ridotto TerrenoGibco31985-062OPTI-MEM
Fiasche per colture tissutaliOlympus Plastics25-20975 cm^2. Accesso al collo angolato al 100%, tappo filtrante ventilato idrofobico da 0,22 um
Incubatore per colture tissutali ThermoScientific51030285HERAcell VIOS 160i, incubatore per colture tissutali con controllo
di temperatura, umidità e CO2Tris-BaseSigmaT15038,402 g disciolto in un litro in acqua con 4,829 g Tris HCl per fare 0,1 M di tampone Tris, pH 8,5
Tris-HClSigmaT32534,829 g disciolto in un litro in acqua con 8,402 g Tris Base per fare 0,1 M di tampone Tris, pH 8,5
Tripsina-EDTA (0,25%), rosso fenoloGibco25200072
Sistemi di filtraggio a vuotoOlympus Plastics25-227500 ml, membrana in PES, 0,22 & micro; m
Vannas forbici dritteRobozRS-5620
Water Life con di coltura

Riferimenti

  1. Barres, B. A. The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease. Neuron. 60 (3), 430-440 (2008).
  2. Araque, A., Parpura, V., Sanzgiri, R. P., Haydon, P. G. Tripartite synapses: Glia, the unacknowledged partner. Trends in Neurosciences<....

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